Anästhesiol Intensivmed Notfallmed Schmerzther 2012; 47(6): 398-408
DOI: 10.1055/s-0032-1316482
Fachwissen
Anästhesiologie & Intensivmedizin Topthema: Rationaler Einsatz von Blutprodukten
© Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Rationaler Einsatz von Blutprodukten – Blut – eine besondere Ressource

Blood – a special resource
Christof Geisen
,
Michael Schmidt
,
Dieter Klarmann
,
Jörg Schüttrumpf
,
Markus M Müller
,
Erhard Seifried
Further Information

Publication History

Publication Date:
04 July 2012 (online)

Zusammenfassung

Hämotherapie ist ein integraler Bestandteil der modernen Hochleistungsmedizin. Ohne die Transfusion von Erythrozyten- und Thrombozytenkonzentraten sowie Plasma wären Hochdosis-Chemotherapien bei hämatologischen und soliden Tumoren, die Transplantation hämatopoetischer Stammzellen, Organtransplantationen, große operative Eingriffe sowie ein modernes Traumamanagement nicht denkbar. In diesem Beitrag wird der aktuelle Stand der Hämotherapie, das Risiko unverwünschter Wirkungen sowie Maßnahmen zur Risikovermeidung dargestellt. Auf die hämolytischen Transfusionsreaktionen (HTR), die transfusionsassoziierte akute Lungeninsuffizienz (TRALI) und transfusionsassoziierte Infektionen wird im Besonderen eingegangen. Mit der Einführung von Nukleinsäure-Amplifikations-Testen (NAT) für HIV-1 und Hepatitis-C-Virus (HCV) kann heute die HIV- und HCV-Transmission über Blutprodukte in Deutschland nahezu vollständig verhindert werden. Aktuelle Restinfektionsrisiken werden bezogen auf Blutpräparate des Deutschen Roten Kreuzes mit 1:10,8 Millionen für HCV, 1:4,3 Millionen für HIV-1 und 1:360.000 für Hepatitis-B-Viren (HBV) angegeben.

Abstract

Haemotherapy is an integral part of modern high-tech medicine. Without supportive care including red blood cell (RBC), platelet concentrate (PC) and fresh frozen plasma (FFP) transfusion, invasive therapies such as high-dose chemotherapy regimens for haematological and solid malignancies, haematopoietic stem cell (HSC) and solid organ transplantation as well as major surgery and modern trauma management would not be possible. In this article we describe the current state of haemotherapy, the risk of adverse effects and risk minimization measures, specifically focussing on haemolytic transfusion reactions (HTR), transfusion-related lung injury (TRALI) and transfusion-transmitted infections (TTI). Aided by the introduction of NAT technology for blood component screening, the residual risk of transfusion transmitted infections was reduced to 1:10.8 million for HCV, to 1:4.3 million for HIV-1, and to 1:360,000 for HBV for blood products of the German Red Cross Blood Service.

Kernaussagen

  • Die Anwendung von Blutpräparaten sollte auf Basis einer individuellen Nutzen-Risiko-Abwägung unter Berücksichtigung der vorliegenden Evidenz aus klinischen Studien gemäß konkreter Empfehlungen der Querschnittsleitlinien zur Therapie mit Blutprodukten und Plasmaderivaten der Bundesärztekammer erfolgen.

  • Bei der Indikationsstellung für die Substitution von Blutkomponenten müssen außer Laborwerten stets die Dauer, die Schwere und die Ursache der Erythrozyten-, Thrombozyten- bzw. Plasmafaktorendefizienz sowie die Vorgeschichte, das Alter und der klinische Zustand des Patienten berücksichtigt werden.

  • In Einrichtungen, die Blut und Blutbestandteile gewinnen, Blutprodukte herstellen, lagern und /oder abgeben, ist ein funktionierendes Qualitätssicherungssystem vorgeschrieben.

  • Die meisten schweren Transfusionsreaktionen entstehen durch Verwechslungen. Daher ist die Identitätssicherung und -kontrolle bei jedem Schritt der Transfusionsvorbereitung und -durchführung unerlässlich!

  • Das Risiko für eine immunogene transfusionsassoziierte akute Lungeninsuffizienz (TRALI) wurde seit 2009 durch den ausschließlichen Einsatz therapeutischer Einzelplasmen von männlichen Spendern oder von Frauen ohne Schwangerschaftsanamnese signifikant reduziert.

  • Das Restinfektionsrisiko für eine transfusionsassoziierte Virusinfektion (TTVI) wird mit

    • 1: 10,8 Mio. für Hepatites C,

    • 1: 4,3 Mio. für HIV-1 und

    • 1: 360 000 für Hepatites B

    bezogen auf Blutpräparate des DRK angegeben.

  • Durch Einführung des Pre-Donation-Sampling, Verkürzung der maximalen TK-Haltbarkeit von 5 auf 4 Tage sowie Einführung bakterieller Kulturverfahren, Schnelltestmethoden oder Pathogeninaktivierungsverfahren konnte das Risiko für eine transfusionsbedingte bakterielle Infektion (TBBI) deutlich reduziert werden.

  • Durch die prognostizierten demografischen Veränderungen wird bei Abnahme des Anteils spendefähiger, jüngerer Personen der Bedarf an Blutpräparaten für die gleichzeitig zunehmende Gruppe älterer Patienten kontinuierlich steigen.

Ergänzendes Material

 
  • Literatur

  • 1 Isbister JP. Risk management in transfusion medicine. Transfus Sci 1994; 15: 3-4
  • 2 Bundesärztekammer. Richtlinien zur Gewinnung von Blut und Blutbestandteilen und zur Anwendung von Blutprodukten (Hämotherapie) – Gesamtnovelle 2005 mit Richtlinienanpassung 2010. Köln: Deutscher Ärzte-Verlag; 2010
  • 3 Bundesärztekammer. Querschnitts-Leitlinien zur Therapie mit Blutkomponenten und Plasmaderivaten. Auflage. Köln: Deutscher Ärzteverlag; 2009. 4.
  • 4 Schrezenmeier H, Seifried E. Buffy-coat-derived pooled platelet concentrates and apheresis platelet concentrates: which product type should be preferred?. Vox Sang 2010; 99: 1-15
  • 5 Stellungnahme des Paul-Ehrlich-Instituts (PEI) zur Sicherheit von Pool-Thrombozytenkonzentraten (PTK) und Apherese-Thrombozytenkonzentraten (ATK). http://www.pei.de/DE/infos/fachkreise/am-infosablage/sik/2011-11-29-stellungnahme-sicherheit-ptk-atk.html 2011
  • 6 Stellungnahme der DGTI zur Therapie mit Thrombozytenkonzentraten. http://www.dgti.de/docs/doclink/10590/DGTI_Stellungnahme_TK_20111219.pdf 2011
  • 7 Bell WR, Braine HG, Ness PM, Kickler TS. Improved survival in thrombotic thrombocytopenic purpura-hemolytic uremic syndrome. Clinical experience in 108 patients. N Engl J Med 1991; 325: 398-403
  • 8 Rock GA, Shumak KH, Buskard NA, Blanchette VS, Kelton JG, Nair RC, Spasoff RA. Comparison of plasma exchange with plasma infusion in the treatment of thrombotic thrombocytopenic purpura. Canadian Apheresis Study Group. N Engl J Med 1991; 325: 393-397
  • 9 Shepard KV, Bukowski RM. The treatment of thrombotic thrombocytopenic purpura with exchange transfusions, plasma infusions, and plasma exchange. Semin Hematol 1987; 24: 178-193
  • 10 Alter HJ, Klein HG. The hazards of blood transfusion in historical perspective. Blood 2008; 112: 2617-2626
  • 11 Lippi G, Plebani M. Identification errors in the blood transfusion laboratory: a still relevant issue for patient safety. Transfus Apher Sci 2011; 44: 231-233
  • 12 Wallis JP. Preventing ABO incompatible blood transfusion. Br J Haematol 2006; 132: 531-531
  • 13 Stainsby D, Russell J, Cohen H, Lilleyman J. Reducing adverse events in blood transfusion. Br J Haematol 2005; 131: 8-12
  • 14 Taylor C, Cohen H, Mold D, Jones H et al. On behalf of the Serious Hazards of Transfusion (SHOT) Steering Group: The 2009 Annual SHOT Report. 2010;
  • 15 Funk MB et al. Hämovigilanz-Bericht des Paul-Ehrlich-Instituts 2009: Auswertung der Meldungen von schwerwiegenden Transfusionsreaktionen nach § 63c AMG. Langen http://www.pei.de/haemovigilanzbericht 2011;
  • 16 Ezidiegwu CN, Lauenstein KJ, Rosales LG, Kelly KC, Henry JB. Febrile nonhemolytic transfusion reactions. Management by premedication and cost implications in adult patients. Arch Pathol Lab Med 2004; 128: 991-995
  • 17 Keller-Stanislawski B, Reil A, Gunay S, Funk MB. Frequency and severity of transfusion-related acute lung injury – German haemovigilance data (2006–2007). Vox Sang 2010; 98: 70-77
  • 18 Sachs UJ, Hattar K, Weissmann N et al. Antibody-induced neutrophil activation as a trigger for transfusion-related acute lung injury in an ex vivo rat lung model. Blood 2006; 107: 1217-1219
  • 19 Sachs UJ, Wasel W, Bayat B et al. Mechanism of transfusion-related acute lung injury induced by HLA class II antibodies. Blood 2011; 117: 669-677
  • 20 Silliman CC, Curtis BR, Kopko PM et al. Donor antibodies to HNA-3a implicated in TRALI reactions prime neutrophils and cause PMN-mediated damage to human pulmonary microvascular endothelial cells in a two-event in vitro model. Blood 2007; 109: 1752-1755
  • 21 Toy P, Popovsky MA, Abraham E et al. Transfusion-related acute lung injury: definition and review. Crit Care Med 2005; 33: 721-726
  • 22 Bux J, Sachs UJ. Pulmonary Transfusion Reactions. Transfus Med Hemother 2008; 35: 337-345
  • 23 Reil A, Keller-Stanislawski B, Gunay S, Bux J. Specificities of leucocyte alloantibodies in transfusion-related acute lung injury and results of leucocyte antibody screening of blood donors. Vox Sang 2008; 95: 313-317
  • 24 Win N, Chapman CE, Bowles KM et al. How much residual plasma may cause TRALI?. Transfus Med 2008; 18: 276-280
  • 25 Odent-Malaure H, Quainon F, Ruyer-Dumontier P et al. Transfusion related acute lung injury (TRALI) caused by red blood cell transfusion involving residual plasma anti-HLA antibodies: a report on two cases and general considerations. Clin Dev Immunol 2005; 12: 243-248
  • 26 Nguyen XD, Flesch B, Sachs UJ et al. Rapid screening of granulocyte antibodies with a novel assay: flow cytometric granulocyte immunofluorescence test. Transfusion 2009; 49: 2700-2708
  • 27 Nguyen XD, Dengler T, Schulz-Linkholt M, Kluter H. A novel tool for high-throughput screening of granulocyte-specific antibodies using the automated flow cytometric granulocyte immunofluorescence test (Flow-GIFT). ScientificWorldJournal 2011; 11: 302-309
  • 28 van Stein D, Beckers EA, Sintnicolaas K et al. Transfusion-related acute lung injury reports in the Netherlands: an observational study. Transfusion 2010; 50: 213-220
  • 29 Funk MB, Guenay S, Lohmann A et al. Benefit of transfusion-related acute lung injury risk-minimization measures - German haemovigilance data (2006–2010). Vox Sang 2012; 102: 317-323
  • 30 Barker LF, Gerety RJ. The clinical problem of hepatitis transmission. Prog Clin Biol Res 1976; 11: 163-182
  • 31 Busch MP, Dodd RY. NAT and blood safety: what is the paradigm?. Transfusion 2000; 40: 1157-1160
  • 32 Roth WK, Buhr S, Drosten C, Seifried E. NAT and viral safety in blood transfusion. Vox Sang 2000; 78 (Suppl. 01) 257-259
  • 33 Roth WK, Weber M, Seifried E. Feasibility and efficacy of routine PCR screening of blood donations for hepatitis C virus, hepatitis B virus, and HIV-1 in a blood-bank setting. Lancet 1999; 353: 359-363
  • 34 Roth WK, Busch MP, Schuller A et al. International survey on NAT testing of blood donations: expanding implementation and yield from 1999 to 2009. Vox Sang 2012; 102: 82-90
  • 35 Schmidt M, Nubling CM, Scheiblauer H et al. Anti-HBc screening of blood donors: a comparison of nine anti-HBc tests. Vox Sang 2006; 91: 237-243
  • 36 Schmidt M, Korn K, Nubling CM et al. First transmission of human immunodeficiency virus Type 1 by a cellular blood product after mandatory nucleic acid screening in Germany. Transfusion 2009; 49: 1836-1844
  • 37 Chudy M, Weber-Schehl M, Pichl L et al. Blood screening nucleic acid amplification tests for human immunodeficiency virus Type 1 may require two different amplification targets. Transfusion 2012; 52: 431-439
  • 38 Blajchman MA, Goldman M. Bacterial contamination of platelet concentrates: incidence, significance, and prevention. Semin Hematol 2001; 38 (Suppl. 11) 20-26
  • 39 Schrezenmeier H, Walther-Wenke G, Muller TH et al. Bacterial contamination of platelet concentrates: results of a prospective multicenter study comparing pooled whole blood-derived platelets and apheresis platelets. Transfusion 2007; 47: 644-652
  • 40 Hourfar MK, Jork C, Schottstedt V et al. Experience of German Red Cross blood donor services with nucleic acid testing: results of screening more than 30 million blood donations for human immunodeficiency virus-1, hepatitis C virus, and hepatitis B virus. Transfusion 2008; 48: 1558-1566
  • 41 de Korte D, Marcelis JH, Verhoeven AJ, Soeterboek AM. Diversion of first blood volume results in a reduction of bacterial contamination for whole-blood collections. Vox Sang 2002; 83: 13-16
  • 42 de Korte D, Curvers J, de Kort WL et al. Effects of skin disinfection method, deviation bag, and bacterial screening on clinical safety of platelet transfusions in the Netherlands. Transfusion 2006; 46: 476-485
  • 43 de Korte D. 10 Years Experience with Bacterial Screening of Platelet Concentrates in the Netherlands. Transfus Med Hemother 2011; 38: 251-254
  • 44 Dreier J, Vollmer T, Kleesiek K. Novel flow cytometry-based screening for bacterial contamination of donor platelet preparations compared with other rapid screening methods. Clin Chem 2009; 55: 1492-1502
  • 45 Sireis W, Ruster B, Daiss C et al. Extension of platelet shelf life from 4 to 5 days by implementation of a new screening strategy in Germany. Vox Sang 2011; 101: 191-199
  • 46 Osselaer JC, Doyen C, Defoin L et al. Universal adoption of pathogen inactivation of platelet components: impact on platelet and red blood cell component use. Transfusion 2009; 49: 1412-1422
  • 47 Aubuchon JP, Herschel L, Roger J et al. Efficacy of apheresis platelets treated with riboflavin and ultraviolet light for pathogen reduction. Transfusion 2005; 45: 1335-1341
  • 48 Seltsam A, Muller TH. UVC Irradiation for Pathogen Reduction of Platelet Concentrates and Plasma. Transfus Med Hemother 2011; 38: 43-54
  • 49 Seifried E, Klueter H, Weidmann C et al. How much blood is needed?. Vox Sang 2011; 100: 10-21
  • 50 Lauscher P, Mirakaj V, Rosenberger P, Meier J. Rationaler Einsatz von Blutprodukten – Die wichtigsten Regeln für den transfundierenden Arzt. Anästhesiol Intensivmed Notfallmed Schmerzther 2012; 47: 410-416
  • 51 Weber CF. Rationaler Einsatz von Blutprodukten – Reduzierung des Blutprodukteverbrauchs durch ein modernes Gerinnungsmanagement. Anästhesiol Intensivmed Notfallmed Schmerzther 2012; 47: 418-423