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Hamostaseologie 1994; 14(01): 7-15
DOI: 10.1055/s-0038-1660338
Übersichtsarbeit/Review Articles
Schattauer GmbH

Granulozyten-Endothel-Interaktion

Mechanismen der Abwehr und Autoaggression
F. Grimminger
1   Zentrum für Innere Medizin, Universität Gießen
,
H. D. Walmrath
1   Zentrum für Innere Medizin, Universität Gießen
,
W. Seeger
1   Zentrum für Innere Medizin, Universität Gießen
,
H.-G. Lasch
1   Zentrum für Innere Medizin, Universität Gießen
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Publikationsverlauf

Publikationsdatum:
26. Juni 2018 (online)

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Zusammenfassung

Die mikrovaskuläre Granulozytenkinetik ist abhängig von Änderungen der Zellflexibilität und von der Expression intrazellulärer Adhäsionsmoleküle. Unter inflammatorischen Bedingungen kommt es zu einer direkten Kontaktaufnahme zwischen zirkulierenden Granulozyten und vaskulärem Endothel. Über interzelluläre Synthesewege entstehen Lipidmediatoren, welche den komplexen Vorgang der Extravasation stimulierter Granulozyten steuern. In der Zellmembran und in den zytoplasmatischen Granula sind Faktoren angereichert, die im Rahmen einer immunologischen Konfrontation aktiviert bzw. sezerniert werden. Sie stehen im Dienste der antimikrobiellen Verteidigung, können aber unter verschiedenen Bedingungen zu einer Bedrohung für den Organismus selbst werden. Eine Fehlsteuerung des granulozytären Destruktionspotentials gegen das vaskuläre/perivaskuläre Gewebe ist induzierbar durch bakterielle Endo- und Exotoxine, durch Anti-Granulozyten-Antikörper, durch mikrovaskulär deponierte Immunkomplexe und durch Störungen der intra- und extrazellulären Signalsysteme.

Schlüsselwörter

Mikrovaskuläre Granulozytenkinetik - Integrine - Selectine - Lipidmediatoren - Neutrophilèn-Aktivierung - Endotoxin - Exotoxin - Anti-Neutrophilen-Antikörper
 

  • LITERATUR

  • 1 Hogg JC, Doerschuk CM, Wiggs B, Minshall D. Erythrocyte transit and neutrophil concentration in the dog lung. J Appl Physiol 1988; 65: 1217-25.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 2 Lien DC, Worthen GS, Capen RL, Hanson WL, Checkley LL, Janke SJ, Henson PM, Wagner WW. Neutrophil kinetics in the pulmonary microcirculation. Effects of pressure and flow in the dependent lung. Am Rev Respir Dis 1990; 141: 953-9.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 3 Hogg JC. Neutrophil kinetics and lung injury. Physiol Rev 1987; 67: 1249-95.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 4 Worthen GS, Schwab BS, Elson EL, Downey GP. Mechanics in stimulated neutrophils: Cell stiffening induces retention in capillaries. Science 1989; 245: 183-6.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 5 Grimminger F, Sibelius U, Aktories K, Just I, Seeger W. Suppression of cytoskeletal rearrangement in activated human neutrophils by Botulinum C2 toxin impact on cellular signal transduction. J Biol Chem 1991; 266 (22) 14262-9.
    PubMedGoogle Scholar
  • 6 Hynes RO. Integrins, a family of cell surface receptors. Cell 1987; 48: 549-55.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 7 Rosen SD. The LEC-CAMS: An emerging family of cell-cell adhesion receptors based upon carbohydrate. Am Rev Respir Cell Mol Biol 1990; 03: 397-402.
    PubMedGoogle Scholar
  • 8 Kishimoto TK, Jutila MA, Berg EL, Butcher EC. Neutrophil MAC-1 and MEL14 adhesion proteins inversely regulated by chemotactic factors. Science 1989; 245: 1238-41.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 9 Rothlein R, Dustin ML, Marlin SD, Springer TA. A human intercellular adhesion molecule (ICAM-1) distinct from LFA-1. J Immunol 1986; 137: 1270-4.
    PubMedGoogle Scholar
  • 10 Wright SD, Detmers PA. Adhesion-promoting receptors on phagocytes. J Cell Sci Suppl 1988; 09: 99-120.
    PubMedGoogle Scholar
  • 11 Carrell RW. α1-Antitrypsin: molecular pathology, leukocytes, and tissue damage. J Clin Invest 1986; 78: 1427-31.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 12 Bretz U, Baggiolini M. Biochemical and morphological characterization of azurophil and specific granules of human neutrophil polymorphonuclear leukocytes. J Cell Biol 1974; 63: 251-6.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 13 Petrequin PR, Todd III RF, Devall LJ, Boxer LA, Curnutte III JT. Association between gelatinase release and increased plasma membrane expression of the Mol glycoprotein. Blood 1987; 69: 605-11.
    PubMedGoogle Scholar
  • 14 Weiss SJ, LoBuglio AF. Biology of disease. Phagocyte-generated oxygen metabolites and cellular injury. Lab Invest 1982; 47: 5-10.
    PubMedGoogle Scholar
  • 15 Sandborg RR, Smolen JE. Biology of disease. Early biochemical events in leukocyte activation. Lab Invest 1988; 59: 300-10.
    PubMedGoogle Scholar
  • 16 Grimminger F, Kreusler B, Schneider U, Becker G, Seeger W. Influence of microvascular adherence on neutrophil leukotriene generation evidence for cooperative eicosanoid synthesis. J Immunol 1990; 144: 1866-72.
    PubMedGoogle Scholar
  • 17 Grimminger F, Menger M, Becker G, Seeger W. Potentiation of leukotriene generation following sequestration of neutrophils in isolated lungs. Blood 1988; 72: 1687-92.
    PubMedGoogle Scholar
  • 18 Grimminger F, Becker G, Seeger W. High yield enzymatic conversion of intravascular leukotriene A4 in blood-free perfused lungs. J Immunol 1988; 141: 2431-6.
    PubMedGoogle Scholar
  • 19 Seeger W, Lasch HG. Septic lung. Rev Infect Dis 1987; 09: S570-S579.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 20 Brigham KL, Meyrick B. Endotoxin and lung injury. Am Rev Respir Dis 1986; 133: 913-27.
    PubMedGoogle Scholar
  • 21 Walmrath D, Grimminger F, Seeger W. Sepsis und ARDS. Mögliche Rolle bakterieller Exotoxine. Med Welt 1993; 44: 23.
    PubMedGoogle Scholar
  • 22 Grimminger F, Scholz C, Bhakdi S, Seeger W. Subhemolytic doses of Escherichia coli hemolysin evoke large quantities of 4and 5-series leukotrienes in human neutrophils in dependence on exogenous fatty acid supply. J Biol Chem 1991; 266: 14262-9.
    PubMedGoogle Scholar
  • 23 Grimminger F, Thomas M, Obernitz R, Walmrath D, Bhakdi S, Seeger W. Inflammatory lipid mediator generation elicited by viable hemolysin-forming Escherichia coli in lung vasculature. J Exp Med 1990; 172: 1115-25.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 24 Bhakdi S, Tranum-Jensen J. Damage to mammalian cells by proteins that form transmembrane pores. Rev Physiol Biochem Pharmacol 1987; 107: 147-223.
    PubMedGoogle Scholar
  • 25 Seeger W, Schneider U, Kreusler B, v. Witzleben E, Walmrath D, Grimminger F, Neppert J. Reproduction of transfusion related acute lung injury (TRALI) in an exvivo lung model. Blood 1990; 76: 1438-44.
    PubMedGoogle Scholar
  • 26 Brain SD, Camp RDR, Dowd PM. Psoriasis and leukotriene B4 . Lancet 1982; II: 762-3.
    PubMedGoogle Scholar
  • 27 Adkins WK, Taylor AE. Role of xanthine oxidase and neutrophils in ischemia-reperfusion injury in rabbit lung. J Appl Physiol 1990; 69: 2012-8.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar