CC BY-NC-ND 4.0 · Geburtshilfe Frauenheilkd 2019; 79(02): 160-176
DOI: 10.1055/a-0828-7722
GebFra Science
Guideline/Leitlinie
Georg Thieme Verlag KG Stuttgart · New York

Prävention des Zervixkarzinoms. Leitlinie der DGGG und DKG (S3-Level, AWMF-Register-Nummer 015/027OL, Dezember 2017) – Teil 2 mit Abklärung, Therapie und Nachbetreuung

Artikel in mehreren Sprachen: English | deutsch
Peter Hillemanns
1   Klinik für Frauenheilkunde und Geburtshilfe, Medizinische Hochschule Hannover, Hannover, Germany
,
Klaus Friese
2   Klinik Bad Trissl GmbH, Oberaudorf, Germany
,
Christian Dannecker
3   Klinik und Poliklinik für Frauenheilkunde und Geburtshilfe, München, Germany
,
Stefanie Klug
4   Lehrstuhl für Epidemiologie, Technische Universität München, München, Germany
,
Ulrike Seifert
5   Tumorepidemiologie, Universitäts KrebsCentrum (UCC), Universitätsklinikum Carl Gustav Carus an der Technischen Universität Dresden, Dresden, Germany
,
Thomas Iftner
6   Institut für Medizinische Virologie und Epidemiologie der Viruskrankheiten, Universitätsklinikum Tübingen, Tübingen, Germany
,
Juliane Hädicke
6   Institut für Medizinische Virologie und Epidemiologie der Viruskrankheiten, Universitätsklinikum Tübingen, Tübingen, Germany
,
Thomas Löning
7   Institut für Pathologie, Albertinen-Krankenhaus Hamburg, Hamburg, Germany
,
Lars Horn
8   Institut für Pathologie, Universitätsklinikum Leipzig, Leipzig, Germany
,
Dietmar Schmidt
9   Institut für Pathologie, Referenzzentrum für Gynäkopathologie, Mannheim, Germany
,
Hans Ikenberg
10   CytoMol – MVZ für Zytologie und Molekularbiologie, Frankfurt, Germany
,
Manfred Steiner
11   Facharzt für Frauenheilkunde und Geburtshilfe, Ihringen, Germany
,
Ulrich Freitag
12   Facharzt für Frauenheilkunde und Geburtshilfe, Wismar, Germany
,
Uwe Siebert
13   Institute of Public Health, Medical Decision Making and Health Technology Assessment, Department of Public Health, Health Services Research and Health Technology Assessment, UMIT – University for Health Sciences, Medical Informatics and Technology, Hall i.T., Austria
34   Division of Health Technology Assessment and Bioinformatics, ONCOTYROL – Center for Personalized Cancer Medicine, Innsbruck, Austria
,
Gaby Sroczynski
13   Institute of Public Health, Medical Decision Making and Health Technology Assessment, Department of Public Health, Health Services Research and Health Technology Assessment, UMIT – University for Health Sciences, Medical Informatics and Technology, Hall i.T., Austria
,
Willi Sauerbrei
14   Institut für Med. Biometrie und Statistik (IMBI), Universitätsklinikum Freiburg, Freiburg, Germany
,
Matthias W. Beckmann
15   Frauenklinik, Universitätsklinikum Erlangen, Erlangen, Germany
,
Marion Gebhardt
16   Frauenselbsthilfe nach Krebs, Forchheim, Germany
,
Michael Friedrich
17   Klinik für Frauenheilkunde und Geburtshilfe, Helios Klinikum Krefeld, Krefeld, Germany
,
Karsten Münstedt
18   Frauenklinik, Ortenau Klinikum Offenburg-Gengenbach, Offenburg, Germany
,
Achim Schneider
19   Medizinisches Versorgungszentrum im Fürstenberg-Karree, Berlin, Germany
,
Andreas Kaufmann
20   Klinik für Gynäkologie, Campus Benjamin Franklin, Charité – Universitätsmedizin Berlin, Berlin, Germany
,
K. Ulrich Petry
21   Frauenklinik, Klinikum Wolfsburg, Wolfsburg, Germany
,
Axel P. A. Schäfer
22   Facharzt für Frauenheilkunde und Geburtshilfe, Berlin, Germany
,
Michael Pawlita
23   Deutsches Krebsforschungszentrum, Heidelberg, Germany
,
Joachim Weis
24   Klinik für Tumorbiologie, Klinik für Onkologische Rehabilitation – UKF Reha gGmbH, Freiburg, Germany
,
Anja Mehnert
25   Abteilung für Medizinische Psychologie und Medizinische Soziologie, Universitätsklinikum Leipzig, Leipzig, Germany
,
Mathias Fehr
26   Gynäkologie & Geburtshilfe in Frauenfeld, Spital Thurgau AG, Frauenfeld, Switzerland
,
Christoph Grimm
27   Privatklinik Döbling, Wien, Austria
,
Olaf Reich
28   Privatklinik Graz Ragnitz, Graz, Austria
,
Marc Arbyn
29   Cancer Center, Sciensano, Brüssel, Belgium
,
Jos Kleijnen
30   Kleijnen Systematic Reviews Ltd, York, United Kingdom
,
Simone Wesselmann
31   Deutsche Krebsgesellschaft, Berlin, Germany
,
Monika Nothacker
32   AWMF-Institut für Medizinisches Wissensmanagement, Marburg, Germany
,
Markus Follmann
33   Leitlinienprogramm Onkologie, Deutsche Krebsgesellschaft, Berlin, Germany
,
Thomas Langer
33   Leitlinienprogramm Onkologie, Deutsche Krebsgesellschaft, Berlin, Germany
,
Matthias Jentschke
1   Klinik für Frauenheilkunde und Geburtshilfe, Medizinische Hochschule Hannover, Hannover, Germany
› Institutsangaben
Weitere Informationen

Correspondence/Korrespondenzadresse

Univ.-Prof. Dr. Peter Hillemanns
Klinik für Frauenheilkunde und Geburtshilfe
Medizinische Hochschule Hannover
Carl-Neuberg-Straße 1
30625 Hannover
Germany   

Publikationsverlauf

received 21. August 2018
revised 20. Dezember 2018

accepted 20. Dezember 2018

Publikationsdatum:
18. Februar 2019 (online)

 

Zusammenfassung

Ziele Seit 1971 erfolgt in Deutschland die jährliche, opportunistische Früherkennungsuntersuchung des Zervixkarzinoms. Durch die Etablierung dieser S3-Leitlinie wird zum einen eine wichtige Forderung des Nationalen Krebsplans zum Zervixkarzinom-Screening erfüllt. Zum anderen kann die S3-Leitlinie wesentliche Informationen und Hilfestellungen für das geplante organisierte Zervixkarzinomscreening in Deutschland geben.

Methoden Mit finanzieller Unterstützung durch die Deutsche Krebshilfe wurden durch 21 Fachgesellschaften evidenzbasierte Statements und Empfehlungen (GRADE-System) zu Screening, Management und Behandlung von Zervixkarzinom-Vorstufen erarbeitet. Zwei unabhängige wissenschaftliche Institute haben systematische Reviews für diese Leitlinie erarbeitet.

Empfehlungen Der zweite Teil dieser Kurzzusammenfassung behandelt u. a. Abklärung, Therapie und Nachbetreuung zervikaler Dysplasien. Im Hinblick auf Nichtteilnehmerinnen am Screening empfiehlt die Leitliniengruppe erneute Einladungsschreiben oder eine HPV-Selbstabnahme. Ab einer Zytologie von Pap II-p in Kombination mit einem positiven HPV-Befund sollte eine Kolposkopie zur weiteren Abklärung durchgeführt werden, ebenso bei einem positiven HPV 16 oder HPV 18 Screening Test. Ein alleiniger auffälliger Pap-Abstrich sollte eine Triage mittels HPV-Test oder p16/Ki67 Dual-stain zur Folge haben.


#

I  Leitlinieninformationen

Leitlinienprogramm Onkologie der Arbeitsgemeinschaft der Wissenschaftlichen Medizinischen Fachgesellschaften e. V. (AWMF), Deutschen Krebsgesellschaft e. V. (DKG) und Deutschen Krebshilfe (DKH).

Leitlinienprogramm der DGGG, OEGGG und SGGG.

Informationen dazu am Ende des Artikels.

Zitationsformat

Prevention of Cervical Cancer – Guideline of the DGGG and the DKG (S3 Level, AWMF Register Number 015/027OL, December 2017) – Part 2 on Triage, Treatment and Follow-up. Geburtsh Frauenheilk 2019; 79: 160–176


#

Leitliniendokumente

Die vollständige Langversion mit einer Aufstellung der Interessenkonflikte aller Autoren und eine Kurzversion können auf der Homepage der AWMF eingesehen werden: https://www.awmf.org/leitlinien/detail/ll/015-027OL.html oder www.leitlinienprogramm-onkologie.de


#

Leitliniengruppe

Federführende Fachgesellschaft bei der Leitlinienerstellung ist die Deutsche Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe (DGGG, Mandatsträger Univ.-Prof. Dr. Peter Hillemanns, Hannover). Herausgeber der Leitlinie ist das Onkologische Leitlinienprogramm. Jede beteiligte Fachgesellschaft hat einen Mandatsträger benannt, der schriftlich vom jeweiligen Vorstand bestätigt wurde. In [Tab. 1] sind die an der Leitlinienerstellung beteiligten Fachgesellschaften und andere Organisationen sowie deren mandatierte Vertreter aufgeführt. Stimmberechtigt in den Abstimmungsprozessen (Konsensusverfahren) waren nur die von den teilnehmenden Fachgesellschaften und Organisationen benannten Mandatsträger nach Offenlegung und Ausschluss von Interessenkonflikten. Die Leitlinie wurde unter direkter Beteiligung einer Patientenvertreterin erstellt. Frau Marion Gebhardt (Frauenselbsthilfe nach Krebs e. V.) war von Beginn an in die Erstellung der Leitlinie eingebunden und nahm mit eigenem Stimmrecht an den Konsensuskonferenzen teil.

Tab. 1 Beteiligte Fachgesellschaften und andere Organisationen.

beteiligte Fachgesellschaften und Organisationen

Mandatsträger

*  AG-CPC, AZÄD, BVF und DGZ traten am 12.05.2014 von der Mitarbeit an der Leitlinie zurück. Nach den konstruktiven Diskussionen in der Ad-hoc-Kommission ist der BVF der Leitliniengruppe am 04.09.2017 wieder beigetreten.

**  Die internationalen Fachgesellschaften nahmen ohne Stimmrecht im Konsensusprozess teil.

***  Die ESGO hat zwar einen Mandatsträger und einen Stellvertreter benannt, diese haben sich jedoch nicht an der Leitlinienarbeit beteiligt.

Deutsche Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe (DGGG)

Christian Dannecker

Deutsche Gesellschaft für Epidemiologie (DGEpi)

Stefanie Klug

Deutsche Gesellschaft für Virologie e. V. (GfV)

Thomas Iftner

Deutsche Gesellschaft für Pathologie e. V. (DGP)

Thomas Löning

Lars Horn (Stellvertreter)

Dietmar Schmidt (Stellvertreter)

Deutsche STI-Gesellschaft e. V. (DSTIG)

Hans Ikenberg

Deutsche Gesellschaft für Zytologie (DGZ)*

Heinrich Neumann (bis 14.08.2013)

Volker Schneider (bis 12.05.2014)

Deutsche Gesellschaft für Medizinische Informatik, Biometrie und Epidemiologie e. V. (GMDS)

Uwe Siebert

Willi Sauerbrei (Stellvertreter)

Arbeitsgemeinschaft für gynäkologische Onkologie der DKG, AGO

Matthias Beckmann

Frauenselbsthilfe nach Krebs e. V.

Marion Gebhardt

Heidemarie Haase (Stellvertreterin)

Berufsverband der Frauenärzte e. V., BVF*

Manfred Steiner

Ulrich Freitag (Stellvertreter)

Arbeitsgemeinschaft Leitender Ärztinnen und Ärzte in der Frauenheilkunde und Geburtshilfe e. V. (BLFG)

Michael Friedrich

Berufsverband zytologisch tätiger Ärzte in Deutschland e. V. (AZÄD)*

Klaus Neis

Bodo Jordan (Stellvertreter)

Arbeitsgemeinschaft Zervixpathologie und Kolposkopie der DGGG*

Wolfgang Kühn

Michael Menton (Stellvertreter)

Arbeitsgemeinschaft Prävention und integrative Onkologie (PRIO), DKG Sektion B

Karsten Münstedt

HPV-Management-Forum (Paul-Ehrlich-Gesellschaft für Chemotherapie PEG e. V.)

Achim Schneider

Andreas Kaufmann (Stellvertreter)

Studiengruppe Kolposkopie e. V.

K. Ulrich Petry

Arbeitsgemeinschaft für Infektionen und Infektionsimmunologie der DGGG (AGII)

Axel P. A. Schäfer

DKFZ

Magnus von Knebel-Doeberitz (bis 25.06.2013)

Michael Pawlita

internationale Organisationen

Arbeitsgemeinschaft für gynäkologische Onkologie und Brustgesundheit (AGO) der (SGGG)**

Mathias Fehr

Arbeitsgemeinschaft für gynäkologische Onkologie (AGO) der (OEGGG)**

Christoph Grimm

Olaf Reich (Stellvertreter)

European Society of Gynaecological Oncology (ESGO)***

Rainer Kimmig

Martin Heubner (Stellvertreter)


#
#

II  Leitlinienverwendung

Fragen und Ziele

Durch die Etablierung dieser S3-Leitlinie wird zum einen eine wichtige Forderung des Nationalen Krebsplans zum Zervixkarzinom-Screening erfüllt. Zum anderen kann die S3-Leitlinie wesentliche Informationen und Hilfestellungen für das geplante organisierte Zervixkarzinomscreening in Deutschland geben.

Die Ziele der alten S2k-Leitlinie „Prävention, Diagnostik und Therapie der HPV-Infektion und präinvasiver Läsionen des weiblichen Genitale“ werden fokussiert auf den Gebärmutterhals. Leitlinienempfehlungen zur primären Prävention werden aus der aktualisierten S3-Leitlinie „082/002 Impfprävention HPV-assoziierter Neoplasien“ übernommen, allerdings ergänzt bezüglich der Auswirkungen, die eine HPV-Impfung auf das Screening haben kann. Die 2014 fertig gestellte S3-Leitlinie „032/033OL Zervixkarzinom: Diagnostik, Therapie und Nachsorge“ umfasst alle Aspekte des invasiven Zervixkarzinoms.


#

Versorgungsbereich

Diese S3-Leitlinie zur Prävention des Zervixkarzinoms legt die Aspekte zur Prävention des Zervixkarzinoms und zu Diagnostik, Therapie und Nachsorge bis einschließlich der hochgradigen präinvasiven Läsionen dar. Wesentliche Ziele der Leitlinie sind die Analyse der vorhandenen Daten nach Optimierung der Krebsfrüherkennung des Zervixkarzinoms hinsichtlich der Testverfahren, der Organisationsstruktur, des Abklärungsalgorithmus, der Therapie und die Klärung der Frage, wie die Vorsorgeverweigererinnen zur Teilnahme stimuliert werden können. Daneben gilt es, die Auswirkung der HPV-Impfung auf die Krebsfrüherkennung-Strategie zu untersuchen.


#

Patienten/innenzielgruppe

Diese S3-Leitlinie richtet sich an alle Frauen ab einem Alter von 20 Jahren.


#

Anwenderzielgruppe/Adressaten

Die Empfehlungen der Leitlinie richten sich an alle Ärzte und Angehörigen von Berufsgruppen, die mit der Früherkennung des Zervixkarzinoms befasst sind, vor allem an Gynäkologen, Pathologen bzw. Zytologen, sowie alle Mitarbeiter von Dysplasiesprechstunden und -zentren.

Weitere Adressaten sind:

  • medizinisch-wissenschaftliche Fachgesellschaften und Berufsverbände, die mit der Früherkennung des Zervixkarzinoms befasst sind,

  • Interessenvertretungen von Frauen (Frauengesundheitsorganisationen, Patienten- und Selbsthilfeorganisationen),

  • Qualitätssicherungseinrichtungen und -projekte auf Bundes- und Länderebene,

  • gesundheitspolitische Einrichtungen und Entscheidungsträger auf Bundes- und Länderebene,

  • Kostenträger,

  • die Öffentlichkeit zur Information über gute medizinische Vorgehensweise.


#

Verabschiedung und Gültigkeitsdauer

Diese Leitlinie besitzt eine Gültigkeitsdauer vom 31.12.2017 bis 31.12.2020. Diese Dauer ist aufgrund der inhaltlichen Zusammenhänge geschätzt. Der Bedarf zur Aktualisierung der Leitlinie ergibt sich zudem aus der Existenz neuer wissenschaftlicher Erkenntnisse und der Weiterentwicklung in der Leitlinienmethodik. Zudem ist in regelmäßigen Abständen eine redaktionelle und inhaltliche Prüfung und Überarbeitung der Kernaussagen und Empfehlungen der Leitlinie erforderlich.


#
#

III  Leitlinienmethodik

Grundlagen

Die Methodik zur Erstellung dieser Leitlinie wird durch die Vergabe der Stufenklassifikation vorgegeben. Das AWMF-Regelwerk (Version 1.0) gibt entsprechende Regelungen vor. Es wird zwischen der niedrigsten Stufe (S1), der mittleren Stufe (S2) und der höchsten Stufe (S3) unterschieden. Die niedrigste Klasse definiert sich durch eine Zusammenstellung von Handlungsempfehlungen, erstellt durch eine nicht repräsentative Expertengruppe. Im Jahr 2004 wurde die Stufe S2 in die systematische evidenzrecherchebasierte (S2e) oder strukturelle konsensbasierte Unterstufe (S2k) gegliedert. In der höchsten Stufe S3 vereinigen sich beide Verfahren. Diese Leitlinie entspricht der Stufe: S3.


#

Evidenzgraduierung

Zur Graduierung der identifizierten Studien wurde in dieser Leitlinie das von der GRADE Working Group [1] (www.gradeworkinggroup.org) entwickelte System (GRADE = Grading of Recommendations Assessment, Development and Evaluation) angewendet ([Tab. 2]).

Tab. 2 Schema der Evidenzgraduierung nach GRADE.

GRADE

Beschreibung

Symbol

hohe Qualität

Wir sind uns sehr sicher, dass der wahre Effekt nah an der Schätzung liegt.

„We are very confident that the true effect lies close to that of the estimate of the effect.“

⊕⊕⊕⊕

moderate Qualität

Wir sind uns relativ sicher mit der Abschätzung des Effekts: Der wahre Effekt liegt wahrscheinlich nah an der Schätzung, allerdings besteht auch die Möglichkeit eines substanziellen Unterschieds.

„We are moderately confident in the effect estimate: The true effect is likely to be close to the estimate of the effect, but there is a possibility that it is substantially different.“

⊕⊕⊕⊖

niedrige Qualität

Unser Vertrauen in den Effektschätzer ist eingeschränkt: Der wahre Effekt könnte sich substanziell vom Effektschätzer unterscheiden.

„Our confidence in the effect estimate is limited: The true effect may be substantially different from the estimate of the effect.“

⊕⊕⊖⊖

sehr niedrige Qualität

Wir haben nur sehr geringes Vertrauen in den Effektschätzer: Der wahre Effekt unterscheidet sich wahrscheinlich substanziell vom Effektschätzer.

„We have very little confidence in the effect estimate: The true effect is likely to be substantially different from the estimate of effect.“

⊕⊖⊖⊖


#

Empfehlungsgraduierung

Die Methodik des Leitlinienprogramms Onkologie sieht eine Vergabe von Empfehlungsgraden durch die Leitlinienautoren im Rahmen eines formalen Konsensusverfahrens vor. Dementsprechend wurden strukturierte Konsensuskonferenzen durchgeführt [2] (Details im Leitlinienreport). Im Rahmen dieser Prozesse wurden die Empfehlungen von den stimmberechtigten Mandatsträgern formal abgestimmt.

In der Leitlinie werden zu allen evidenzbasierten Statements und Empfehlungen Angaben zur Evidenzgraduierung der zugrunde liegenden Studien sowie bei Empfehlungen zusätzlich die Stärke der Empfehlung (Empfehlungsgrad) ausgewiesen. Hinsichtlich der Stärke der Empfehlung werden in dieser Leitlinie entsprechend dem AWMF-Regelwerk [2] 3 Empfehlungsgrade unterschieden, die sich auch in der Formulierung der Empfehlungen jeweils widerspiegeln ([Tab. 3]).

Tab. 3 Schema der Empfehlungsgraduierung.

Empfehlungsgrad

Beschreibung

Ausdrucksweise

A

starke Empfehlung

soll

B

Empfehlung

sollte

0

Empfehlung offen

kann

Die Entscheidungskriterien für die Festlegung der Empfehlungsgrade werden im Leitlinienreport zu dieser Leitlinie erläutert.


#

Statements

Als Statements werden Darlegungen oder Erläuterungen von spezifischen Sachverhalten oder Fragestellungen ohne unmittelbare Handlungsaufforderung bezeichnet. Sie werden entsprechend der Vorgehensweise bei den Empfehlungen im Rahmen eines formalen Konsensusverfahrens verabschiedet und können entweder auf Studienergebnissen oder auf Expertenmeinungen beruhen ([Tab. 4]).

Tab. 4 Konsensstärke.

Konsensstärke

prozentuale Zustimmung

starker Konsens

> 95% der Stimmberechtigten

Konsens

> 75 – 95% der Stimmberechtigten

mehrheitliche Zustimmung

> 50 – 75% der Stimmberechtigten

Dissens

< 50% der Stimmberechtigten


#

Expertenkonsens (EK)

Statements/Empfehlungen, für die eine Bearbeitung auf der Grundlage von Expertenkonsens der Leitliniengruppe beschlossen wurde, sind als Expertenkonsens ausgewiesen. Für die Graduierung der Expertenkonsens wurden keine Symbole bzw. Buchstaben verwendet, die Stärke des Konsenspunktes ergibt sich aus der verwendeten Formulierung (soll/sollte/kann) entsprechend der Abstufung in [Tab. 3].


#
#

IV  Leitlinie

1  Differenzialdiagnostik und Abklärungsalgorithmus

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

10.1.

Bei einem zytologischen Befund der Gruppe IIa sollte der behandelnde Gynäkologe darauf hingewiesen werden, dass in der Vergangenheit (2 Jahre) ein auffälliger Befund vorlag und die Patientin weiterhin beobachtet werden soll. Weitere differenzialdiagnostische Abklärungen sollen nur dann indiziert werden, wenn dies aufgrund der aktuellen Konstellation notwendig ist, um eine Überbehandlung zu vermeiden.

EK

1.1  Indikation zur Koloskopie in Abhängigkeit der Wahrscheinlichkeit für eine CIN 3

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

10.2.

Die Indikation zur kolposkopischen Abklärung sollte ab einer Post-Test-Wahrscheinlichkeit für ein durchschnittliches kumulatives CIN-3+-Risiko von 10% gestellt werden.

EK


#

1.2  Welche Abklärungsmethoden sind geeignet bei auffälliger Zytologie?

1.2.1  Grenzwertige zytologische Auffälligkeiten (Pap II-p, II-g)

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

10.3.

Bei Befunden der Gruppe II-p ~ ASC-US und II-g ~ AGUS im organisierten zytologischen Screening sollte ein HR-HPV-Test in 6 Monaten durchgeführt werden. Ist dieser HR-HPV-Test positiv, sollte eine kolposkopische Abklärung innerhalb von 3 Monaten erfolgen.

Bei HPV-Negativität sollte eine zytologische und HPV-Kontrolle nach 12 Monaten durchgeführt werden.

⊕⊕⊕⊖

B

[3], [4], [5], [6], [7], [8], [9], [10], [11], [12], [13], [14], [15], [16], [17], [18], [19], [20], [21], [22], [23], [24], [25], [26], [27], [28], [29], [30], [31], [32], [33], [34], [35], [36], [37], [38], [39], [40], [41], [42], [43], [44], [45], [46], [47], [48], [49], [50], [51], [52], [53]

10.4.

Bei Befunden der Gruppe II-p ~ ASC-US und II-g ~ AGUS im organisierten zytologischen Screening kann eine p16/Ki-67-Testung in 6 Monaten durchgeführt werden. Ist dieser p16/Ki-67-Nachweis positiv, sollte eine kolposkopische Abklärung innerhalb von 3 Monaten erfolgen.

Bei p16/Ki-67-Negativität sollte eine zytologische und HPV-Kontrolle nach 12 Monaten durchgeführt werden.

⊕⊖⊖⊖

0

[43], [54], [55], [56]


#

1.2.2  Zytologischer Verdacht auf leichte Dysplasie (Pap IIID1)

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

10.5.

Bei Befunden der Gruppe IIID1~ LSIL im organisierten zytologischen Screening sollte eine Abklärung mittels HR-HPV-Test in 6 Monaten erfolgen. Ist dieser HR-HPV-Test positiv, sollte eine kolposkopische Abklärung innerhalb von 3 Monaten erfolgen. Bei HPV-Negativität sollte eine zytologische und HPV-Kontrolle nach 12 Monaten durchgeführt werden.

⊕⊕⊕⊖

B

[4], [5], [8], [10], [13], [17], [23], [26], [27], [28], [29], [31], [32], [35], [39], [41], [42], [43], [45], [46], [47], [48], [49], [51], [52], [53], [57], [58], [59], [60], [61], [62], [63], [64], [65], [66], [67], [68]

10.6.

Bei Befunden der Gruppe IIID1~ LSIL im organisierten zytologischen Screening kann eine Abklärung mittels p16/
Ki-67-Testung in 6 Monaten erfolgen. Ist dieser p16/Ki-67-Nachweis positiv, sollte eine kolposkopische Abklärung innerhalb von 3 Monaten erfolgen. Bei p16/Ki-67-Negativität sollte eine zytologische und HPV-Kontrolle nach 12 Monaten durchgeführt werden.

⊕⊖⊖⊖

0

[43], [55], [56], [68], [69]


#

1.2.3  Unklare zytologische Befunde mit Pap III-p, III-g, III-x

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

10.7.

a) Bei Befunden der Gruppe III-p, III-x, III-e oder III-g im organisierten zytologischen Screening kann eine Abklärung mittels HR-HPV-Test oder p16/Ki-67-Immunzytochemie innerhalb von 3 Monaten erfolgen. Ist dieser HR-HPV-Test oder der p16/Ki-67-Nachweis positiv, sollte eine kolposkopische Abklärung innerhalb von 3 Monaten erfolgen. Bei Negativität der Abklärungstests sollte eine zytologische und HPV-Kontrolle nach 12 Monaten durchgeführt werden.

b) Bei Befunden der Gruppe III-x, III-e und III-g sollte eine endometriumsspezifische Abklärung zum Ausschluss einer endometrialen Neoplasie erfolgen (Vaginalsonografie, Hysteroskopie, fraktionierte Abrasio etc.).

EK


#

1.2.4  Mittel- und höhergradige zytologische Auffälligkeiten (Pap IIID2, Pap IVa, Pap IVb, Pap V)

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

10.8.

Bei Befunden der Gruppen IIID2, IVa – p, IVa – g, IVb – p, IVb – g, V-p, V-g, V-e und V-x im organisierten zytologischen Screening soll eine kolposkopische Abklärung erfolgen.

EK


#
#

1.3  Welche Abklärungsmethoden sind geeignet bei positivem HPV-Test im Screening > 30 Jahre?

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

10.9.

Bei einem positiven HPV-Screeningtest sollte eine weiterführende zytologische Abklärung erfolgen.

⊕⊕⊖⊖

B

[70], [71], [72], [73], [74], [75], [76], [77], [78], [79]

10.10.

Bei einem positiven HPV-Screeningtest kann eine weiterführende Abklärung mittels p16/Ki-67-Testung erfolgen.

⊕⊖⊖⊖

0

[72], [73]

10.11.

Bei einem positiven HPV-16/18 Testergebnis im HPV-basierten Screening sollte eine kolposkopische Abklärung erfolgen.

⊕⊖⊖⊖

B

[77], [79]

10.12.

Bei einem positiven HPV-Screeningtest und einem Befund ab II-p in der Abklärungszytologie bzw. im kombinierten HPV-Pap-Screening sollte eine kolposkopische Abklärung erfolgen.

EK


#
#

2  Kolposkopie

2.1  Einsatz der Abklärungskolposkopie

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

*  Post-Test-Wahrscheinlichkeit

11.1.

Die Kolposkopie soll nicht als Screeningmethode eingesetzt werden.

EK

11.2.

Bei hohem Verdacht auf CIN 3+ bzw. ACis/Adeno-Ca (Risiko ≥ 10%*) soll eine Abklärungskolposkopie durchgeführt werden,

  • zur histologischen Sicherung von squamösen und glandulären Atypien/Neoplasien,

  • zur Festlegung der operativen Strategie.

EK

11.3.

Bei der Abklärungskolposkopie sollten bei Typ 1 und Typ 2 TZ kolposkopisch gesteuerte Biopsien aus der/den schwerstgradigen Läsion/en entnommen werden, bei Typ 3 TZ sollte eine endozervikale Curettage erfolgen.

EK


#

2.2  Qualitätsmerkmale einer Abklärungskolposkopie bzw. einer Dysplasiesprechstunde

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

11.4.

Die Kolposkopie soll als Abklärungskolposkopie in einer gemäß den Anforderungen der DKG/DGGG/AGO/AG-CPC/EFC zertifizierten Dysplasiesprechstunde/Dysplasieeinheit erfolgen.

EK


#
#

3  Versorgungsstrukturen

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

12.1.

An der seit 1971 empfohlenen Krebsfrüherkennungsuntersuchung (KFU) des Gebärmutterhalskrebses in Deutschland beteiligen sich jährlich ca. 50% der Frauen. Rund 70% der Frauen beteiligten sich an der Vorsorge mindestens einmal innerhalb eines 3-jährlichen Intervalls.

EK

12.2.

Bei der deutschen Zervixkarzinom-Krebsfrüherkennungsuntersuchung (KFU) weisen Frauen mit niedrigem Sozialstatus und/oder hohem Alter eine geringere Teilnahmerate auf.

EK

12.3.

Ein organisiertes Screening mit populationsbasierter Einladung und stringenter Qualitätssicherung kann zu einer effektiveren und sozial- wie altersbezogen ausgewogeneren Vorsorge führen.

EK


#

4  Strategie bei Nichtinanspruchnahme der Vorsorge

4.1  Einladungsschreiben

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

13.1.

Wiederholte Einladungsschreiben im Rahmen eines organisierten Screenings erhöhen die Teilnahmerate von den Frauen, welche die reguläre Früherkennungsuntersuchung nicht in Anspruch genommen haben, geringfügig.

⊕⊕⊖⊖

[80], [81], [82], [83], [84]


#

4.2  HPV-Selbstabnahme

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

13.2.

Mit dem HPV-Selbstabstrich lässt sich die Teilnahmerate bei den Frauen verdoppeln, die mittels Einladung nicht an der Krebsfrüherkennung teilgenommen haben.

⊕⊕⊕⊖

B

[85], [86], [87], [88], [89], [90], [91], [92], [93], [94]

13.3.

Diesen Frauen (Non-Respondern) sollte daher die Möglichkeit zum Selbstabstrich gegeben werden.

⊕⊕⊕⊖

B

[85], [86], [87], [88], [89], [90], [91], [92], [93], [94]

13.4.

Der HPV-Selbstabstrich im Screening soll den Frauen vorbehalten bleiben, die sich nicht an der Krebsvorsorgeuntersuchung beteiligen.

⊕⊕⊕⊖

A

[89], [95], [96], [97], [98], [99], [100], [101], [102], [103], [104], [105], [106], [107], [108], [109], [110], [111], [112], [113], [114], [115], [116], [117], [118], [119], [120], [121], [122], [123], [124], [125], [126], [127]


#
#

5  Therapie

5.1  Geeignete Therapieverfahren für die Behandlung der squamösen und glandulären zervikalen intraepithelialen Neoplasien

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

14.1.

Schlingenexzision und Laserexzision sollen die Methoden der Wahl für die Behandlung der squamösen und glandulären zervikalen intraepithelialen Neoplasie sein.

⊕⊖⊖⊖

A

[128], [129], [130]

14.2.

Die Messerkonisation kann bei der Behandlung glandulärer intraepithelialer Neoplasien als Alternative gewählt werden.

⊕⊖⊖⊖

0

[128]

14.3.

Die Laservaporisation zur Behandlung von CIN 1, CIN 2 oder CIN 3 soll nach histologischer Abklärung durch Knipsbiopsien nur durchgeführt werden, wenn alle folgenden Bedingungen erfüllt sind:

  • die komplette Transformationszone ist einsehbar (T-Zone Typ 1),

  • kein Anhalt für Veränderungen des Drüsenepithels,

  • kein Anhalt für ein invasives Geschehen,

  • keine Diskrepanz zwischen zytologischer, kolposkopischer und histologischer Einschätzung der Biologie der Veränderung,

  • die Patientin ist nicht älter als 50 Jahre.

EK


#

5.2  Therapie unter kolposkopischer Kontrolle

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

14.4.

Eine Therapie, ob Exzisions- oder Ablationsverfahren, soll unter kolposkopischer Kontrolle erfolgen.

EK


#

5.3  Management der CIN

5.3.1  Abwarten, Kontrolle oder Therapie der CIN 1

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

*  Kommt eine exspektative Verlaufsbeobachtung oder ein rein ablatives Therapieverfahren zum Einsatz, wird empfohlen, dass eine kolposkopische Expertise mit einem positiven Vorhersagewert für CIN 2 oder CIN 3 von mindestens 65% besteht [130].

14.5.

Bei histopathologisch gesicherter CIN 1 soll abgewartet und die Patientin nach 6 Monaten wieder evaluiert werden*.

EK

14.6.

Wenn eine CIN 1 mit einer Pap-Gruppe IVa oder schwergradiger assoziiert ist und die Läsion kolposkopisch nicht adäquat beurteilbar ist und sich in die Endozervix ausdehnt, soll eine histopathologische Evaluierung des Endozervikalkanals erfolgen.

EK


#

5.3.2  Kontrolle oder Therapie der CIN 2

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

*  Kommt eine exspektative Verlaufsbeobachtung oder ein rein ablatives Therapieverfahren zum Einsatz, wird empfohlen, dass eine kolposkopische Expertise mit einem positiven Vorhersagewert für CIN 2 oder CIN 3 von mindestens 65% besteht [130].

14.7.

Ist bei histopathologisch gesicherter CIN 2 durch komplettes Einsehen der Platten-Zylinderepithelgrenze die gesamte Läsion beurteilbar, soll abgewartet und die Patientin nach 6 Monaten wieder untersucht werden*.

EK

14.8.

Ist die Platten-Zylinderepithelgrenze bei histopathologisch gesicherter CIN 2 nicht komplett einsehbar und/oder liegt mind. ein Pap IV a vor, soll eine histopathologische Evaluierung des Endozervikalkanals erfolgen.

EK


#

5.3.3  Therapie der CIN 3

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

14.9.

Die histopathologisch gesicherte CIN 3 soll entfernt werden.

EK


#

5.3.4  Therapieempfehlungen für Adoleszentinnen

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

*  Kommt eine exspektative Verlaufsbeobachtung oder ein rein ablatives Therapieverfahren zum Einsatz, wird empfohlen, dass eine kolposkopische Expertise mit einem positiven Vorhersagewert für CIN 2 oder CIN 3 von mindestens 65% besteht [130].

14.10.

Bei Frauen bis 24 Jahren mit histopathologisch gesicherter CIN 2 soll, bei CIN 3 kann eine konservative Strategie verfolgt werden, vorausgesetzt

  • die Läsion ist in ihrer gesamten Ausdehnung kolposkopisch überwachbar und

  • enthält keine atypische glanduläre Komponente und

  • ein invasives Geschehen ist mit hoher Sicherheit ausgeschlossen.

Bei Persistenz der CIN 2 für mehr als 24 Monate bzw. der CIN 3 für mehr als 12 Monate oder Ausdehnung der Läsion nach endozervikal sollte eine Therapie erfolgen.

Die Therapie soll gewebeschonend durchgeführt werden*.

EK

14.11.

Die konservative Behandlung der CIN 3 sollte bei Frauen bis 24 Jahren in einer zertifizierten Dysplasiesprechstunde (s. Kapitel 2 Kolposkopie) stattfinden.

EK


#

5.3.5  Exzisionsverfahren vs. Hysterektomie beim zervikalen Adenocarcinoma in situ (ACIS)

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

14.12.

Die definitive histopathologische Diagnose des ACIS (in Differenzialdiagnose zum invasiven Adenokarzinom) soll mittels eines Exzisionsverfahrens erfolgen.

Für die definitive Behandlung des ACIS sollte bei abgeschlossener Familienplanung eine Hysterektomie durchgeführt werden.

Bei nicht abgeschlossener Familienplanung soll eine Entfernung im Gesunden gefolgt von Nachbeobachtung mittels Kolposkopie, Zytologie und HPV-Nachweis erfolgen.

EK


#

5.3.6  R0-Resektion und Vorgehen bei R1-Resektion

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

14.13.

Die R0-Resektion der CIN 3 soll angestrebt werden.

EK

14.14.

Bei einer R1-Situation nach chirurgischer Entfernung einer CIN 3 und fehlendem Verdacht auf ein invasives Karzinom soll primär die zytologische und HPV-basierte Nachkontrolle nach 6 Monaten erfolgen.

Zeigen die Befunde der Nachbetreuung, dass eine Persistenz der CIN 3 vorliegt, soll erneut operiert werden.

EK


#
#
#

6  Schwangerschaft

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

15.1.

Die Indikationen einer Kolposkopie (und ggf. Biopsie) im Rahmen einer Schwangerschaft sind dieselben wie die außerhalb einer Schwangerschaft.

EK

15.2.

Eine Abklärung auffälliger Gebärmutterhalskrebsscreening-Befunde sollte während einer Schwangerschaft in einer DKG/AG-CPC-zertifizierten Dysplasiesprechstunde stattfinden.

EK

15.3.

Eine endozervikale Kürettage soll während einer Schwangerschaft nicht durchgeführt werden.

Ein tiefer endozervikaler Abstrich sollte während einer Schwangerschaft nicht durchgeführt werden.

EK

15.4.

Schließt die Abklärung (zytologisch, kolposkopisch, ggf. histologisch) das Vorliegen einer hochgradigen Dysplasie und eines Karzinoms aus, sind weitere kolposkopische und/oder zytologische Untersuchungen in der Schwangerschaft nicht erforderlich.

EK

6.1  Vorgehen bei CIN 2/3 oder ACIS in der Schwangerschaft

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

15.5.

Während einer Schwangerschaft soll bei einer CIN 2/3 oder einem ACIS keine operative Therapie erfolgen, wenn das Vorliegen eines invasiven Karzinoms mit hoher Sicherheit ausgeschlossen wurde.

EK

15.6.

Während einer Schwangerschaft sollen bei einer CIN 2/3 oder einem ACIS kolposkopische Kontrollen erfolgen. Das Intervall sollte 3 Monate betragen.

EK

15.7.

Nur wenn in der Schwangerschaft ein invasives Karzinom durch Zytologie, Kolposkopie und Biopsie nicht mit hoher Sicherheit ausgeschlossen werden kann, besteht die Indikation zur histologischen Abklärung durch ein Exzisionsverfahren.

EK


#

6.2  Geburtsmodus bei CIN 2/3

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

15.8.

Das Vorliegen einer CIN 2/3 soll keinen Einfluss auf die Entscheidungsfindung hinsichtlich des Geburtsmodus haben.

EK


#

6.3  Geburtshilfliche Komplikationen nach CIN-Therapie

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

15.9.

Exzisionsverfahren in der Schwangerschaft sind mit erheblichen geburtshilflichen Risiken wie Frühgeburt assoziiert. Vorangegangene Exzisionsverfahren sind auch für nachfolgende Schwangerschaften mit diesen Risiken assoziiert.

EK

15.10.

Da die Messerkonisation mit dem höchsten geburtshilflichen Risiko assoziiert ist, soll sie bei Frauen mit noch nicht abgeschlossener Familienplanung nicht durchgeführt werden.

EK


#
#

7  Nachbetreuung

7.1  HPV-Test und Zytologie in der Nachbetreuung nach Therapie einer CIN

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

16.1.

In der Nachbetreuung nach Therapie einer CIN/ACIS soll eine kombinierte Untersuchung mit HPV-Test und Zytologie durchgeführt werden.

⊕⊕⊖⊖

A

[131], [132], [133], [134], [135], [136], [137], [138], [139], [140], [141], [142], [143], [144], [145], [146]

16.2.

Bei auffälligen Befunden (mindestens 1 Testverfahren positiv) sollte eine differenzierte Kolposkopie durchgeführt werden.

⊕⊕⊖⊖

B

[131], [132], [133], [134], [135], [136], [137], [138], [139], [140], [141], [142], [143], [144], [145], [146]

7.1.1  Zeitpunkt und Dauer der Nachbetreuung

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

16.3.

Die kombinierte Nachbetreuungsuntersuchung mit HPV-Test und Zytologie sollte 6, 12 und 24 Monate nach Therapie erfolgen. Bei unauffälligen Befunden soll die Patientin weiterhin an den Vorsorgeuntersuchungen teilnehmen.

EK


#
#

7.2  Stellenwert der Biomarker in der Nachbetreuung nach CIN-Therapie

7.2.1  Absetzungsrand als Prädiktor für ein Rezidiv einer therapierten CIN-Läsion

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

16.4.

In der Nachbetreuung nach Therapie einer CIN/ACIS soll eine kombinierte Untersuchung mit HPV-Test und Zytologie durchgeführt werden.

⊕⊖⊖⊖

[134], [135], [136], [147], [148], [149], [150], [151], [152]


#

7.2.2  Weitere Biomarker als Prädiktoren für ein Rezidiv einer therapierten CIN-2/3-Läsion

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

16.5.

Biomarker (5-HPV-Typen mRNA, HPV-typenspezifische Persistenz) sollen in der Nachbetreuung von therapierten CIN-2/3-Läsionen nicht eingesetzt werden.

⊕⊖⊖⊖

A

[134], [137], [151], [153], [154], [155], [156], [157]


#
#
#

8  Komplementäre, alternative und integrative Medizin

8.1  Alternativmedizinische Diagnostik

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

17.1.

Eine alternativmedizinische Diagnostik bei der Erkennung von Zervixdysplasien oder einer Disposition dazu soll nicht eingesetzt werden.

EK


#

8.2  Alternativmedizinische Therapie

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

17.2.

Die alternativmedizinische Therapie von Dysplasien sollte abgelehnt werden.

EK


#

8.3  Komplementärmedizinische Therapie

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

17.3.

Komplementärmedizinische Behandlungsempfehlungen lassen sich aufgrund des Mangels an aussagekräftigen Studien nicht aussprechen.

EK


#
#

9  Aufklärung und Information, Umgang mit psychischer Belastung

9.1  Aufklärung und Information von Teilnehmerinnen an der Zervixkarzinomfrüherkennung

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

18.1.

Bei der Aufklärung von Teilnehmerinnen an der Früherkennung des Zervixkarzinoms sollen folgende Aspekte berücksichtigt werden:

  • Erklärung der Krankheit,

  • natürlicher Infektionsverlauf bei HPV und der assoziierten Zellveränderungen,

  • die verschiedenen HPV-Typen,

  • Risikofaktoren für das Zervixkarzinom,

  • Auswirkung auf Partner,

  • Beschreibung der Früherkennungsmaßnahme,

  • Angaben zu Nutzen und Schaden der Früherkennungsmaßnahme,

  • Angaben zur Qualität der Früherkennungsmaßnahme.

EK


#

9.2  Aufklärung über die Diagnose, Behandlungsmöglichkeiten und Nachbetreuung

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

18.2.

Aufklärungsinhalte für Frauen mit abklärungsbedürftigem Screeningbefund sollen folgende Erläuterung enthalten:

  • Befundergebnisse

  • Differenzialdiagnostik

  • Therapieoptionen

  • angestrebte Behandlungsziele

  • Dauer und die Durchführung der einzelnen Therapiemaßnahmen

  • Notwendigkeit zur Nachbetreuung

EK


#
#

10  Kosteneffektivität

Nr.

Empfehlungen/Statements

GRADE

Quellen

19.1.

Ein HPV-basiertes Screening alle 3 Jahre besitzt ein relativ günstiges Schaden-Nutzen-Verhältnis. Es erzeugt im Vergleich zum jährlichen zytologischen Screening einen vergleichbaren erwarteten Nutzen bei geringerem erwarteten Schaden (z. B. operative Eingriffe, Kolposkopien, psychische Belastung durch auffällige Befunde und Nachfolgeuntersuchungen).

⊕⊖⊖⊖

[s. Leitlinienreport und Evidenzbericht]

19.2.

Ein HPV-basiertes Screening mit Intervallen von 3 – 5 Jahren ist in Deutschland als kosteneffektiv zu bewerten. HPV-basierte Screeningverfahren mit Intervallen von 2 Jahren haben ein ungünstigeres Kosteneffektivitätsverhältnis. Screeningverfahren mit jährlichen Intervallen erhöhen deutlich die Kosten, ohne einen maßgeblichen Zusatznutzen zu generieren.

⊕⊖⊖⊖

[158]


#
#
Leitlinienprogramm

Herausgeber


Federführende Fachgesellschaften

Zoom Image

Deutsche Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe e. V. (DGGG)
Repräsentanz der DGGG und Fachgesellschaften
Hausvogteiplatz 12, DE-10117 Berlin
info@dggg.de
http://www.dggg.de/


Präsident der DGGG


Prof. Dr. med. Anton Scharl
Direktor der Frauenkliniken
Klinikum St. Marien Amberg
Mariahilfbergweg 7, DE-92224 Amberg
Kliniken Nordoberpfalz AG
Söllnerstraße 16, DE-92637 Weiden


DGGG-Leitlinienbeauftragte


Prof. Dr. med. Matthias W. Beckmann
Universitätsklinikum Erlangen, Frauenklinik
Universitätsstraße 21 – 23, DE-91054 Erlangen


Prof. Dr. med. Erich-Franz Solomayer
Universitätsklinikum des Saarlandes
Geburtshilfe und Reproduktionsmedizin
Kirrberger Straße, Gebäude 9, DE-66421 Homburg


Leitlinienkoordination


Dr. med. Paul Gaß, Dr. med. Gregor Olmes, Christina Meixner
Universitätsklinikum Erlangen, Frauenklinik
Universitätsstraße 21 – 23, DE-91054 Erlangen
fk-dggg-leitlinien@uk-erlangen.de
http://www.dggg.de/leitlinienstellungnahmen

Zoom Image

Österreichische Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe (OEGGG)
Frankgasse 8, AT-1090 Wien
stephanie.leutgeb@oeggg.at
http://www.oeggg.at


Präsidentin der OEGGG


Prof. Dr. med. Petra Kohlberger
Universitätsklinik für Frauenheilkunde Wien
Währinger Gürtel 18–20, AT-1090 Wien


OEGGG-Leitlinienbeauftragte


Prof. Dr. med. Karl Tamussino
Universitätsklinik für Frauenheilkunde und Geburtshilfe Graz
Auenbruggerplatz 14, AT-8036 Graz


Prof. Dr. med. Hanns Helmer
Universitätsklinik für Frauenheilkunde Wien
Währinger Gürtel 18–20, AT-1090 Wien

Zoom Image

Schweizerische Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe (SGGG)
Gynécologie Suisse SGGG
Altenbergstraße 29, Postfach 6, CH-3000 Bern 8
sekretariat@sggg.ch
http://www.sggg.ch/


Präsident der SGGG


Dr. med. David Ehm
FMH für Geburtshilfe und Gynäkologie
Nägeligasse 13, CH-3011 Bern


SGGG-Leitlinienbeauftragte


Prof. Dr. med. Daniel Surbek
Universitätsklinik für Frauenheilkunde
Geburtshilfe und feto-maternale Medizin
Inselspital Bern
Effingerstraße 102, CH-3010 Bern


Prof. Dr. med. René Hornung
Kantonsspital St. Gallen, Frauenklinik
Rorschacher Straße 95
CH-9007 St. Gallen


#

Conflict of Interest/Interessenkonflikt

See guideline report:/Siehe Leitlinienreport: https://www.awmf.org/uploads/tx_szleitlinien/015-027OLm_Praevention_Zervixkarzinom_2018-01.pdf/

  • References/Literatur

  • 1 Balshem H, Helfand M, Schunemann HJ. et al. GRADE guidelines: 3. Rating the quality of evidence. J Clin Epidemiol 2011; 64: 401-406
  • 2 Arbeitsgemeinschaft der Wissenschaftlichen Medizinischen Fachgesellschaften (AWMF) – Ständige Kommission Leitlinien. AWMF-Regelwerk „Leitlinien“. 2012. Online: http://www.awmf.org/leitlinien/awmf-regelwerk.html last access: 10.11.2015
  • 3 Manos MM, Kinney WK, Hurley LB. et al. Identifying women with cervical neoplasia: using human papillomavirus DNA testing for equivocal Papanicolaou results. JAMA 1999; 281: 1605-1610
  • 4 Bergeron C, Jeannel D, Poveda J. et al. Human papillomavirus testing in women with mild cytologic atypia. Obstet Gynecol 2000; 95 (6 Pt 1): 821-827
  • 5 Lytwyn A, Sellors JW, Mahony JB. et al. Comparison of human papillomavirus DNA testing and repeat Papanicolaou test in women with low-grade cervical cytologic abnormalities: a randomized trial. HPV Effectiveness in Lowgrade Paps (HELP) Study No. 1 Group. CMAJ 2000; 163: 701-707
  • 6 Shlay JC, Dunn T, Byers T. et al. Prediction of cervical intraepithelial neoplasia grade 2-3 using risk assessment and human papillomavirus testing in women with atypia on papanicolaou smears. Obstet Gynecol 2000; 96: 410-416
  • 7 Morin C, Bairati I, Bouchard C. et al. Managing atypical squamous cells of undetermined significance in Papanicolaou smears. J Reprod Med 2001; 46: 799-805
  • 8 Rebello G, Hallam N, Smart G. et al. Human papillomavirus testing and the management of women with mildly abnormal cervical smears: an observational study. BMJ 2001; 322: 893-894
  • 9 Solomon D, Schiffman M, Tarone R. Comparison of three management strategies for patients with atypical squamous cells of undetermined significance: Baseline results from a randomized trial. J Natl Cancer Inst 2001; 93: 293-299
  • 10 Kulasingam SL, Hughes JP, Kiviat NB. et al. Evaluation of human papillomavirus testing in primary screening for cervical abnormalities: comparison of sensitivity, specificity, and frequency of referral. JAMA 2002; 288: 1749-1757
  • 11 Pretorius RG, Belinson JL, Burchette RJ. et al. Regardless of skill, performing more biopsies increases the sensitivity of colposcopy. J Low Genit Tract Dis 2011; 15: 180-188
  • 12 Cuzick J, Szarewski A, Cubie H. et al. Management of women who test positive for high-risk types of human papillomavirus: the HART study. Lancet 2003; 362: 1871-1876
  • 13 Guyot A, Karim S, Kyi MS. et al. Evaluation of adjunctive HPV testing by Hybrid Capture II in women with minor cytological abnormalities for the diagnosis of CIN2/3 and cost comparison with colposcopy. BMC Infect Dis 2003; 3: 23
  • 14 Lonky NM, Felix JC, Naidu YM. et al. Triage of atypical squamous cells of undetermined significance with hybrid capture II: colposcopy and histologic human papillomavirus correlation. Obstet Gynecol 2003; 101: 481-489
  • 15 Ordi J, Puig-Tintore LM, Torne A. et al. [Contribution of high risk human papillomavirus testing to the management of premalignant and malignant lesions of the uterine cervix]. Med Clin (Barc) 2003; 121: 441-445
  • 16 Wensveen C, Kagie M, Veldhuizen R. et al. Detection of cervical intraepithelial neoplasia in women with atypical squamous or glandular cells of undetermined significance cytology: a prospective study. Acta Obstet Gynecol Scand 2003; 82: 883-889
  • 17 Andersson S, Dillner L, Elfgren K. et al. A comparison of the human papillomavirus test and Papanicolaou smear as a second screening method for women with minor cytological abnormalities. Acta Obstet Gynecol Scand 2005; 84: 996-1000
  • 18 Dalla Palma P, Pojer A, Girlando S. HPV triage of women with atypical squamous cells of undetermined significance: a 3-year experience in an Italian organized programme. Cytopathology 2005; 16: 22-26
  • 19 Davis-Devine S, Day SJ, Freund GG. Test performance comparison of inform HPV and hybrid capture 2 high-risk HPV DNA tests using the SurePath liquid-based Pap test as the collection method. Am J Clin Pathol 2005; 124: 24-30
  • 20 Giovannelli L, Capra G, Lama A. et al. Atypical squamous cells of undetermined significance-favour reactive compared to atypical squamous cells of undetermined significance-favour dysplasia: association with cervical intraepithelial lesions and human papillomavirus infection. J Clin Virol 2005; 33: 281-286
  • 21 Nieh S, Chen SF, Chu TY. et al. Is p 16(INK4A) expression more useful than human papillomavirus test to determine the outcome of atypical squamous cells of undetermined significance-categorized Pap smear? A comparative analysis using abnormal cervical smears with follow-up biopsies. Gynecol Oncol 2005; 97: 35-40
  • 22 Bergeron C, Cas F, Fagnani F. et al. [Assessment of human papillomavirus testing on liquid-based Cyto-screen system for women with atypical squamous cells of undetermined significance. Effect of age]. Gynecol Obstet Fertil 2006; 34: 312-316
  • 23 Holladay EB, Logan S, Arnold J. et al. A comparison of the clinical utility of p 16(INK4a) immunolocalization with the presence of human papillomavirus by hybrid capture 2 for the detection of cervical dysplasia/neoplasia. Cancer 2006; 108: 451-461
  • 24 Kelly D, Kincaid E, Fansler Z. et al. Detection of cervical high-grade squamous intraepithelial lesions from cytologic samples using a novel immunocytochemical assay (ProEx C). Cancer 2006; 108: 494-500
  • 25 Kiatpongsan S, Niruthisard S, Mutirangura A. et al. Role of human papillomavirus DNA testing in management of women with atypical squamous cells of undetermined significance. Int J Gynecol Cancer 2006; 16: 262-265
  • 26 Monsonego J, Pintos J, Semaille C. et al. Human papillomavirus testing improves the accuracy of colposcopy in detection of cervical intraepithelial neoplasia. Int J Gynecol Cancer 2006; 16: 591-598
  • 27 Ronco G, Cuzick J, Segnan N. et al. HPV triage for low grade (L-SIL) cytology is appropriate for women over 35 in mass cervical cancer screening using liquid based cytology. Eur J Cancer 2007; 43: 476-480
  • 28 De Francesco MA, Gargiulo F, Schreiber C. et al. Comparison of the AMPLICOR human papillomavirus test and the hybrid capture 2 assay for detection of high-risk human papillomavirus in women with abnormal PAP smear. J Virol Methods 2008; 147: 10-17
  • 29 Monsonego J, Pollini G, Evrard MJ. et al. Detection of human papillomavirus genotypes among high-risk women: a comparison of hybrid capture and linear array tests. Sex Transm Dis 2008; 35: 521-527
  • 30 Siddiqui MT, Hornaman K, Cohen C. et al. ProEx C immunocytochemistry and high-risk human papillomavirus DNA testing in papanicolaou tests with atypical squamous cell (ASC-US) cytology: correlation study with histologic biopsy. Arch Pathol Lab Med 2008; 132: 1648-1652
  • 31 Szarewski A, Ambroisine L, Cadman L. et al. Comparison of predictors for high-grade cervical intraepithelial neoplasia in women with abnormal smears. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2008; 17: 3033-3042
  • 32 Cattani P, Zannoni GF, Ricci C. et al. Clinical performance of human papillomavirus E6 and E7 mRNA testing for high-grade lesions of the cervix. J Clin Microbiol 2009; 47: 3895-3901
  • 33 Silverloo I, Andrae B, Wilander E. Value of high-risk HPV-DNA testing in the triage of ASCUS. Acta Obstet Gynecol Scand 2009; 88: 1006-1010
  • 34 Del Mistro A, Frayle-Salamanca H, Trevisan R. et al. Triage of women with atypical squamous cells of undetermined significance (ASC-US): results of an Italian multicentric study. Gynecol Oncol 2010; 117: 77-81
  • 35 Denton KJ, Bergeron C, Klement P. et al. The sensitivity and specificity of p 16(INK4a) cytology vs. HPV testing for detecting high-grade cervical disease in the triage of ASC-US and LSIL pap cytology results. Am J Clin Pathol 2010; 134: 12-21
  • 36 Halfon P, Benmoura D, Agostini A. et al. Stepwise algorithm combining HPV high-risk DNA-based assays and RNA-based assay for high grade CIN in women with abnormal smears referred to colposcopy. Cancer Biomark 2010; 7: 133-139
  • 37 Alameda F, Pijuan L, Lloveras B. et al. The value of p 16 in ASCUS cases: a retrospective study using frozen cytologic material. Diagn Cytopathol 2011; 39: 110-114
  • 38 Belinson JL, Wu R, Belinson SE. et al. A population-based clinical trial comparing endocervical high-risk HPV testing using hybrid capture 2 and Cervista from the SHENCCAST II Study. Am J Clin Pathol 2011; 135: 790-795
  • 39 Clad A, Reuschenbach M, Weinschenk J. et al. Performance of the Aptima high-risk human papillomavirus mRNA assay in a referral population in comparison with Hybrid Capture 2 and cytology. J Clin Microbiol 2011; 49: 1071-1076
  • 40 Dufresne S, Sauthier P, Mayrand MH. et al. Human papillomavirus (HPV) DNA triage of women with atypical squamous cells of undetermined significance with Amplicor HPV and Hybrid Capture 2 assays for detection of high-grade lesions of the uterine cervix. J Clin Microbiol 2011; 49: 48-53
  • 41 Monsonego J, Hudgens MG, Zerat L. et al. Evaluation of oncogenic human papillomavirus RNA and DNA tests with liquid-based cytology in primary cervical cancer screening: the FASE study. Int J Cancer 2011; 129: 691-701
  • 42 Ratnam S, Coutlee F, Fontaine D. et al. Aptima HPV E6/E7 mRNA test is as sensitive as Hybrid Capture 2 Assay but more specific at detecting cervical precancer and cancer. J Clin Microbiol 2011; 49: 557-564
  • 43 Schmidt D, Bergeron C, Denton KJ. et al. p 16/ki-67 dual-stain cytology in the triage of ASCUS and LSIL papanicolaou cytology: results from the European equivocal or mildly abnormal Papanicolaou cytology study. Cancer Cytopathol 2011; 119: 158-166
  • 44 Stoler MH, Wright jr. TC, Sharma A. et al. High-risk human papillomavirus testing in women with ASC-US cytology: results from the ATHENA HPV study. Am J Clin Pathol 2011; 135: 468-475
  • 45 Szarewski A, Mesher D, Cadman L. et al. Comparison of seven tests for high-grade cervical intraepithelial neoplasia in women with abnormal smears: the Predictors 2 study. J Clin Microbiol 2012; 50: 1867-1873
  • 46 Alaghehbandan R, Fontaine D, Bentley J. et al. Performance of ProEx C and PreTect HPV-Proofer E6/E7 mRNA tests in comparison with the hybrid capture 2 HPV DNA test for triaging ASCUS and LSIL cytology. Diagn Cytopathol 2013; 41: 767-775
  • 47 Oliveira A, Verdasca N, Pista A. Use of the NucliSENS EasyQ HPV assay in the management of cervical intraepithelial neoplasia. J Med Virol 2013; 85: 1235-1241
  • 48 Denise Zielinski G, Snijders PJF, Rozendaal L. et al. High-risk HPV testing in women with borderline and mild dyskaryosis: long-term follow-up data and clinical relevance. J Pathol 2001; 195: 300-306
  • 49 Chen HS, Su TH, Yang YC. et al. Human Papillomavirus Testing (Hybrid Capture Ii) to Detect High-Grade Cervical intraepithelial Neoplasia in Women with Mildly Abnormal Papanicolaou Results. Taiwanese Journal of Obstetrics and Gynecology 2005; 44: 252-257
  • 50 Cuschieri KS, Graham C, Moore C. et al. Human Papillomavirus testing for the management of low-grade cervical abnormalities in the UK–Influence of age and testing strategy. J Clin Virol 2007; 38: 14-18
  • 51 You K, Liang X, Qin F. et al. High-risk human papillomavirus DNA testing and high-grade cervical intraepithelial lesions. Aust N Z J Obstet Gynaecol 2007; 47: 141-144
  • 52 Huang S, Erickson B, Tang N. et al. Clinical performance of Abbott RealTime High Risk HPV test for detection of high-grade cervical intraepithelial neoplasia in women with abnormal cytology. J Clin Virol 2009; 45 (Suppl. 01) S19-S23
  • 53 Lee JK, Kim MK, Song SH. et al. Comparison of Human Papillomavirus Detection and Typing by Hybrid Capture 2, Linear Array, DNA Chip, and Cycle Sequencing in Cervical Swab Samples. Int J Gynecol Cancer 2009; 19: 266-272
  • 54 Edgerton N, Cohen C, Siddiqui MT. Evaluation of CINtec PLUS® testing as an adjunctive test in ASC-US diagnosed SurePath® preparations. Diagn Cytopathol 2013; 41: 35-40
  • 55 Wentzensen N, Schwartz L, Zuna RE. et al. Performance of p 16/Ki-67 immunostaining to detect cervical cancer precursors in a colposcopy referral population. Clin Cancer Res 2012; 18: 4154-4162
  • 56 Loghavi S, Walts AE, Bose S. CINtec® PLUS dual immunostain: a triage tool for cervical pap smears with atypical squamous cells of undetermined significance and low grade squamous intraepithelial lesion. Diagn Cytopathol 2013; 41: 582-587
  • 57 Lee NW, Kim D, Park JT. et al. Is the human papillomavirus test in combination with the Papanicolaou test useful for management of patients with diagnoses of atypical squamous cells of undetermined significance/low-grade squamous intraepithelial lesions?. Arch Pathol Lab Med 2001; 125: 1453-1457
  • 58 Pretorius RG, Peterson P, Novak S. et al. Comparison of two signal-amplification DNA tests for high-risk HPV as an aid to colposcopy. J Reprod Med 2002; 47: 290-296
  • 59 Sherman ME, Schiffman M, Cox JT. et al. Effects of age and human papilloma viral load on colposcopy triage: data from the randomized Atypical Squamous Cells of Undetermined Significance/Low-Grade Squamous Intraepithelial Lesion Triage Study (ALTS). J Natl Cancer Inst 2002; 94: 102-107
  • 60 Meyer JL, Hanlon DW, Andersen BT. et al. Evaluation of p 16INK4a expression in ThinPrep cervical specimens with the CINtec p 16INK4a assay: correlation with biopsy follow-up results. Cancer 2007; 111: 83-92
  • 61 Castle PE, Fetterman B, Thomas Cox J. et al. The age-specific relationships of abnormal cytology and human papillomavirus DNA results to the risk of cervical precancer and cancer. Obstet Gynecol 2010; 116: 76-84
  • 62 Halford JA, Batty T, Boost T. et al. Comparison of the sensitivity of conventional cytology and the ThinPrep Imaging System for 1,083 biopsy confirmed high-grade squamous lesions. Diagn Cytopathol 2010; 38: 318-326
  • 63 Voss JS, Kipp BR, Campion MB. et al. Assessment of fluorescence in situ hybridization and hybrid capture 2 analyses of cervical cytology specimens diagnosed as low grade squamous intraepithelial lesion for the detection of high grade cervical intraepithelial neoplasia. Anal Quant Cytol Histol 2010; 32: 121-130
  • 64 Wu R, Belinson SE, Du H. et al. Human papillomavirus messenger RNA assay for cervical cancer screening: the Shenzhen Cervical Cancer Screening Trial I. Int J Gynecol Cancer 2010; 20: 1411-1414
  • 65 Heider A, Austin RM, Zhao C. HPV test results stratify risk for histopathologic follow-up findings of high-grade cervical intra-epithelial neoplasia in women with low-grade squamous intra-epithelial lesion Pap results. Acta Cytol 2011; 55: 48-53
  • 66 Levi AW, Harigopal M, Hui P. et al. Use of high-risk human papillomavirus testing in patients with low-grade squamous intraepithelial lesions. Cancer Cytopathol 2011; 119: 228-234
  • 67 Tsoumpou I, Valasoulis G, Founta C. et al. High-risk human papillomavirus DNA test and p 16(INK4a) in the triage of LSIL: a prospective diagnostic study. Gynecol Oncol 2011; 121: 49-53
  • 68 Ziemke P, Marquardt K. [Immunocytochemistry of p 16(INK4a) and Ki-67 as adjunctive method for routine gynecological cytology of mild and moderate dysplasia]. Pathologe 2013; 34: 323-328
  • 69 Waldstrom M, Christensen RK, Ornskov D. Evaluation of p 16(INK4a)/Ki-67 dual stain in comparison with an mRNA human papillomavirus test on liquid-based cytology samples with low-grade squamous intraepithelial lesion. Cancer Cytopathol 2013; 121: 136-145
  • 70 Ronco G, Segnan N, Giorgi-Rossi P. et al. Human papillomavirus testing and liquid-based cytology: results at recruitment from the new technologies for cervical cancer randomized controlled trial. J Natl Cancer Inst 2006; 98: 765-774
  • 71 Ronco G, Giorgi-Rossi P, Carozzi F. et al. Human papillomavirus testing and liquid-based cytology in primary screening of women younger than 35 years: results at recruitment for a randomised controlled trial. Lancet Oncol 2006; 7: 547-555
  • 72 Carozzi F, Confortini M, Palma PD. et al. Use of p 16-INK4A overexpression to increase the specificity of human papillomavirus testing: a nested substudy of the NTCC randomised controlled trial. Lancet Oncol 2008; 9: 937-945
  • 73 Carozzi F, Gillio-Tos A, Confortini M. et al. Risk of high-grade cervical intraepithelial neoplasia during follow-up in HPV-positive women according to baseline p 16-INK4A results: a prospective analysis of a nested substudy of the NTCC randomised controlled trial. Lancet Oncol 2013; 14: 168-176
  • 74 Kitchener HC, Almonte M, Gilham C. et al. ARTISTIC: a randomised trial of human papillomavirus (HPV) testing in primary cervical screening. Health Technol Assess (Rockv) 2009; 13: 1-150 iii–iv
  • 75 Naucler P, Ryd W, Törnberg S. et al. Efficacy of HPV DNA Testing With Cytology Triage and/or Repeat HPV DNA Testing in Primary Cervical Cancer Screening. J Natl Cancer Inst 2009; 101: 88-99
  • 76 Rijkaart DC, Berkhof J, Rozendaal L. et al. Human papillomavirus testing for the detection of high-grade cervical intraepithelial neoplasia and cancer: Final results of the POBASCAM randomised controlled trial. Lancet Oncol 2012; 13: 78-88
  • 77 Dijkstra MG, van Niekerk D, Rijkaart DC. et al. Primary hrHPV DNA Testing in Cervical Cancer Screening: How to Manage Screen-Positive Women? A POBASCAM Trial Substudy. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2014; 23: 55-63
  • 78 Leinonen MK, Anttila A, Malila N. et al. Type- and age-specific distribution of human papillomavirus in women attending cervical cancer screening in Finland. Br J Cancer 2013; 109: 2941-2950
  • 79 Castle PE, Stoler MH, Wright jr. TC. et al. Performance of carcinogenic human papillomavirus (HPV) testing and HPV16 or HPV18 genotyping for cervical cancer screening of women aged 25 years and older: a subanalysis of the ATHENA study. Lancet Oncol 2011; 12: 880-890
  • 80 Black ME, Yamada J, Mann V. A systematic literature review of the effectiveness of community-based strategies to increase cervical cancer screening. Can J Public Health 2002; 93: 386-393
  • 81 Camilloni L, Ferroni E, Cendales BJ. et al. Methods to increase participation in organised screening programs: a systematic review. BMC Public Health 2013; 13: 464
  • 82 Ferroni E, Camilloni L, Jimenez B. et al. How to increase uptake in oncologic screening: a systematic review of studies comparing population-based screening programs and spontaneous access. Prev Med 2012; 55: 587-596
  • 83 Tseng DS, Cox E, Plane MB. et al. Efficacy of patient letter reminders on cervical cancer screening: a meta-analysis. J Gen Intern Med 2001; 16: 563-568
  • 84 Stone EG, Morton SC, Hulscher ME. et al. Interventions that increase use of adult immunization and cancer screening services: A meta-analysis. Ann Intern Med 2002; 136: 641-651
  • 85 Bais AG, van Kemenade FJ, Berkhof J. et al. Human papillomavirus testing on self-sampled cervicovaginal brushes: An effective alternative to protect nonresponders in cervical screening programs. Int J Cancer 2007; 120: 1505-1510
  • 86 Gök M, Heideman DA, van Kemenade FJ. et al. HPV testing on self collected cervicovaginal lavage specimens as screening method for women who do not attend cervical screening: cohort study. BMJ 2010; 340: c1040
  • 87 Castle PE, Rausa A, Walls T. et al. Comparative community outreach to increase cervical cancer screening in the Mississippi Delta. Prev Med 2011; 52: 452-455
  • 88 Giorgi-Rossi P, Marsili LM, Camilloni L. et al. The effect of self-sampled HPV testing on participation to cervical cancer screening in Italy: a randomised controlled trial (ISRCTN96071600). Br J Cancer 2011; 104: 248-254
  • 89 Lazcano-Ponce E, Lorincz AT, Cruz-Valdez A. et al. Self-collection of vaginal specimens for human papillomavirus testing in cervical cancer prevention (MARCH): A community-based randomised controlled trial. Lancet 2011; 378: 1868-1873
  • 90 Szarewski A, Cadman L, Mesher D. et al. HPV self-sampling as an alternative strategy in non-attenders for cervical screening – a randomised controlled trial. Br J Cancer 2011; 104: 915-920
  • 91 Virtanen A, Nieminen P, Luostarinen T. et al. Self-sample HPV tests as an intervention for nonattendees of cervical cancer screening in Finland: a randomized trial. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2011; 20: 1960-1969
  • 92 Gok M, van Kemenade FJ, Heideman DA. et al. Experience with high-risk human papillomavirus testing on vaginal brush-based self-samples of non-attendees of the cervical screening program. Int J Cancer 2012; 130: 1228-1235
  • 93 Darlin L, Borgfeldt C, Forslund O. et al. Comparison of use of vaginal HPV self-sampling and offering flexible appointments as strategies to reach long-term non-attending women in organized cervical screening. J Clin Virol 2013; 58: 155-160
  • 94 Sancho-Garnier H, Tamalet C, Halfon P. et al. HPV self-sampling or the Pap-smear: A randomized study among cervical screening nonattenders from lower socioeconomic groups in France. Int J Cancer 2013; 133: 2681-2687
  • 95 Morrison EAB, Goldberg GL, Hagan RJ. et al. Self-administered home cervicovaginal lavage: A novel tool for the clinical-epidemiologic investigation of genital human papillomavirus infections. Am J Obstet Gynecol 1992; 167: 104-107
  • 96 Hillemanns P, Kimmig R, Hüttemann U. et al. Screening for cervical neoplasia by self-assessment for human papillomavirus DNA. Lancet 1999; 354: 1970
  • 97 Sellors JW, Lorincz AT, Mahony JB. et al. Comparison of self-collected vaginal, vulvar and urine samples with physician-collected cervical samples for human papillomavirus testing to detect high-grade squamous intraepithelial lesions. CMAJ 2000; 163: 513-518
  • 98 Wright jr. TC, Denny L, Kuhn L. et al. HPV DNA testing of self-collected vaginal samples compared with cytologic screening to detect cervical cancer. JAMA 2000; 283: 81-86
  • 99 Belinson J, Qiao YL, Pretorius R. et al. Shanxi province cervical cancer screening study: A cross-sectional comparative trial of multiple techniques to detect cervical neoplasia. Gynecol Oncol 2001; 83: 439-444
  • 100 Lorenzato FR, Singer A, Ho L. et al. Human papillomavirus detection for cervical cancer prevention with polymerase chain reaction in self-collected samples. Am J Obstet Gynecol 2002; 186: 962-968
  • 101 Nobbenhuis MAE, Helmerhorst TJM, Van den Brule AJC. et al. Primary screening for high risk HPV by home obtained cervicovaginal lavage is an alternative screening tool for unscreened women. J Clin Pathol 2002; 55: 435-439
  • 102 Garcia F, Barker B, Santos C. et al. Cross-sectional study of patient- and physician-collected cervical cytology and human papillomavirus. Obstet Gynecol 2003; 102: 266-272
  • 103 Salmerón J, Lazcano-Ponce E, Lorincz A. et al. Comparison of HPV-based assays with Papanicolaou smears for cervical cancer screening in Morelos State, Mexico. Cancer Causes Control 2003; 14: 505-512
  • 104 Brink AATP, Meijer CJLM, Wiegerinck MAHM. et al. High concordance of results of testing for human papillomavirus in cervicovaginal samples collected by two methods, with comparison of a novel self-sampling device to a conventional endocervical brush. J Clin Microbiol 2006; 44: 2518-2523
  • 105 Daponte A, Pournaras S, Mademtzis I. et al. Evaluation of HPV 16 PCR detection in self- compared with clinician-collected samples in women referred for colposcopy. Gynecol Oncol 2006; 103: 463-466
  • 106 Girianelli VR, Thuler LCS, Szklo M. et al. Comparison of human papillomavirus DNA tests, liquid-based cytology and conventional cytology for the early detection of cervix uteri cancer. Eur J Cancer Prev 2006; 15: 504-510
  • 107 Holanda jr. F, Castelo A, Veras TM. et al. Primary screening for cervical cancer through self sampling. Int J Gynaecol Obstet 2006; 95: 179-184
  • 108 Seo SS, Song YS, Kim JW. et al. Good correlation of HPV DNA test between self-collected vaginal and clinician-collected cervical samples by the oligonucleotide microarray. Gynecol Oncol 2006; 102: 67-73
  • 109 Szarewski A, Cadman L, Mallett S. et al. Human papillomavirus testing by self-sampling: Assessment of accuracy in an unsupervised clinical setting. J Med Screen 2007; 14: 34-42
  • 110 Qiao YL, Sellors JW, Eder PS. et al. A new HPV-DNA test for cervical-cancer screening in developing regions: a cross-sectional study of clinical accuracy in rural China. Lancet Oncol 2008; 9: 929-936
  • 111 Bhatla N, Dar L, Patro AR. et al. Can human papillomavirus DNA testing of self-collected vaginal samples compare with physician-collected cervical samples and cytology for cervical cancer screening in developing countries?. Cancer Epidemiol 2009; 33: 446-450
  • 112 Balasubramanian A, Kulasingam SL, Baer A. et al. Accuracy and cost-effectiveness of cervical cancer screening by high-risk human papillomavirus DNA testing of self-collected vaginal samples. J Low Genit Tract Dis 2010; 14: 185-195
  • 113 Gustavsson I, Sanner K, Lindell M. et al. Type-specific detection of high-risk human papillomavirus (HPV) in self-sampled cervicovaginal cells applied to FTA elute cartridge. J Clin Virol 2011; 51: 251-254
  • 114 Taylor S, Wang C, Wright TC. et al. A comparison of human papillomavirus testing of clinician-collected and self-collected samples during follow-up after screen-and-treat. Int J Cancer 2011; 129: 879-886
  • 115 Twu NF, Yen MS, Lau HY. et al. Type-specific human papillomavirus DNA testing with the genotyping array: A comparison of cervical and vaginal sampling. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2011; 156: 96-100
  • 116 Wikström I, Lindell M, Sanner K. et al. Self-sampling and HPV testing or ordinary Pap-smear in women not regularly attending screening: A randomised study. Br J Cancer 2011; 105: 337-339
  • 117 Belinson JL, Du H, Yang B. et al. Improved sensitivity of vaginal self-collection and high-risk human papillomavirus testing. Int J Cancer 2012; 130: 1855-1860
  • 118 Dijkstra MG, Heideman DAM, van Kemenade FJ. et al. Brush-based self-sampling in combination with GP5+/6+-PCR-based hrHPV testing: High concordance with physician-taken cervical scrapes for HPV genotyping and detection of high-grade CIN. J Clin Virol 2012; 54: 147-151
  • 119 Longatto-Filho A, Naud P, Derchain SFM. et al. Performance characteristics of Pap test, VIA, VILI, HR-HPV testing, cervicography, and colposcopy in diagnosis of significant cervical pathology. Virchows Archiv 2012; 460: 577-585
  • 120 Van Baars R, Bosgraaf RP, Ter Harmsel BWA. et al. Dry storage and transport of a cervicovaginal self-sample by use of the Evalyn Brush, providing reliable human papillomavirus detection combined with comfort for women. J Clin Microbiol 2012; 50: 3937-3943
  • 121 Zhao FH, Lewkowitz AK, Chen F. et al. Pooled analysis of a self-sampling HPV DNA test as a cervical cancer primary screening method. J Natl Cancer Inst 2012; 104: 178-188
  • 122 Darlin L, Borgfeldt C, Forslund O. et al. Vaginal self-sampling without preservative for human papillomavirus testing shows good sensitivity. J Clin Virol 2013; 56: 52-56
  • 123 Geraets DT, van Baars R, Alonso I. et al. Clinical evaluation of high-risk HPV detection on self-samples using the indicating FTA-elute solid-carrier cartridge. J Clin Virol 2013; 57: 125-129
  • 124 Guan Y, Gravitt PE, Howard R. et al. Agreement for HPV genotyping detection between self-collected specimens on a FTA cartridge and clinician-collected specimens. J Virol Methods 2013; 189: 167-171
  • 125 Jentschke M, Lange V, Soergel P. et al. Enzyme-linked immunosorbent assay for p 16INK4a – A new triage test for the detection of cervical intraepithelial neoplasia?. Acta Obstet Gynecol Scand 2013; 92: 160-164
  • 126 Jentschke M, Soergel P, Hillemanns P. Evaluation of a multiplex real time PCR assay for the detection of human papillomavirus infections on self-collected cervicovaginal lavage samples. J Virol Methods 2013; 193: 131-134
  • 127 Nieves L, Enerson CL, Belinson S. et al. Primary cervical cancer screening and triage using an mRNA human papillomavirus assay and visual inspection. Int J Gynecol Cancer 2013; 23: 513-518
  • 128 World Health Organization. WHO Guidelines for Treatment of cervical intraepithelial Neoplasia 2 – 3 and Adenocarcinoma in situ: Cryotherapy, large Loop Excision of the Transformation Zone, and Cold Knife Conization. Geneva: World Health Organization; 2014
  • 129 Massad LS, Einstein MH, Huh WK. et al. 2012 updated consensus guidelines for the management of abnormal cervical cancer screening tests and cancer precursors. J Low Genit Tract Dis 2013; 17 (5 Suppl. 1): S1-S27
  • 130 Luesley D, Leeson S. Colposcopy and programme management Guidelines for the NHS Cervical Screening Programme. 2010; 2: [NHSCSP Publication No 20]. Online: https://www.gov.uk/government/uploads/system/uploads/attachment_data/file/436873/nhscsp20.pdf last access: 15.01.2016
  • 131 Alonso I, Torné A, Puig-Tintoré LM. et al. Pre- and post-conization high-risk HPV testing predicts residual/recurrent disease in patients treated for CIN 2–3. Gynecol Oncol 2006; 103: 631-636
  • 132 Melnikow J, McGahan C, Sawaya GF. et al. Cervical Intraepithelial Neoplasia Outcomes After Treatment: Long-term Follow-up From the British Columbia Cohort Study. J Natl Cancer Inst 2009; 101: 721-728
  • 133 Strander B, Hällgren J, Sparén P. Effect of ageing on cervical or vaginal cancer in Swedish women previously treated for cervical intraepithelial neoplasia grade 3: population based cohort study of long term incidence and mortality. BMJ 2014; 348: f7361
  • 134 Tropé A, Jonassen CM, Sjøborg KD. et al. Role of high-risk human papillomavirus (HPV) mRNA testing in the prediction of residual disease after conisation for high-grade cervical intraepithelial neoplasia. Gynecol Oncol 2011; 123: 257-262
  • 135 Ryu A, Nam K, Kwak J. et al. Early human papillomavirus testing predicts residual/recurrent disease after LEEP. J Gynecol Oncol 2012; 23: 217-225
  • 136 Verguts J, Bronselaer B, Donders G. et al. Prediction of recurrence after treatment for high-grade cervical intraepithelial neoplasia: the role of human papillomavirus testing and age at conisation. BJOG 2006; 113: 1303-1307
  • 137 Kang WD, Oh MJ, Kim SM. et al. Significance of human papillomavirus genotyping with high-grade cervical intraepithelial neoplasia treated by a loop electrosurgical excision procedure. Am J Obstet Gynecol 2010; 203: 72.e1-72.e6
  • 138 Cecchini S, Carozzi F, Confortini M. et al. Persistent human papilloma virus infection as an indicator of risk of recurrence of high-grade cervical intraepithelial neoplasia treated by the loop electrosurgical excision procedure. Tumori 2004; 90: 225-228
  • 139 Ang C, Mukhopadhyay A, Burnley C. et al. Histological recurrence and depth of loop treatment of the cervix in women of reproductive age: incomplete excision versus adverse pregnancy outcome. BJOG 2011; 118: 685-692
  • 140 Flannelly G, Bolger B, Fawzi H. et al. Follow up after LLETZ: could schedules be modified according to risk of recurrence?. BJOG 2001; 108: 1025-1030
  • 141 Prato B, Ghelardi A, Gadducci A. et al. Correlation of recurrence rates and times with posttreatment human papillomavirus status in patients treated with loop electrosurgical excision procedure conization for cervical squamous intraepithelial lesions. Int J Gynecol Cancer 2008; 18: 90-94
  • 142 Castle PE, Schiffman M, Herrero R. et al. A prospective study of age trends in cervical human papillomavirus acquisition and persistence in Guanacaste, Costa Rica. J Infect Dis 2005; 191: 1808-1816
  • 143 Aerssens A, Claeys P, Garcia A. et al. Natural history and clearance of HPV after treatment of precancerous cervical lesions. Histopathology 2008; 52: 381-386
  • 144 Sarian LO, Derchain SF, Pitta Dda R. et al. Factors associated with HPV persistence after treatment for high-grade cervical intra-epithelial neoplasia with large loop excision of the transformation zone (LLETZ). J Clin Virol 2004; 31: 270-274
  • 145 Strander B, Andersson-Ellström A, Milsom I. et al. Long term risk of invasive cancer after treatment for cervical intraepithelial neoplasia grade 3: population based cohort study. BMJ 2007; 335: 1077
  • 146 Jeong NH, Lee NW, Kim HJ. et al. High-risk human papillomavirus testing for monitoring patients treated for high-grade cervical intraepithelial neoplasia. J Obstet Gynaecol Res 2009; 35: 706-711
  • 147 Chua KL, Hjerpe A. Human papillomavirus analysis as a prognostic marker following conization of the cervix uteri. Gynecol Oncol 1997; 66: 108-113
  • 148 Houfflin Debarge V, Collinet P, Vinatier D. et al. Value of human papillomavirus testing after conization by loop electrosurgical excision for high-grade squamous intraepithelial lesions. Gynecol Oncol 2003; 90: 587-592
  • 149 Chao A, Lin CT, Hsueh S. et al. Usefulness of human papillomavirus testing in the follow-up of patients with high-grade cervical intraepithelial neoplasia after conization. Am J Obstet Gynecol 2004; 190: 1046-1051
  • 150 Fambrini M, Penna C, Pieralli A. et al. PCR detection rates of high risk human papillomavirus DNA in paired self-collected urine and cervical scrapes after laser CO2 conization for high-grade cervical intraepithelial neoplasia. Gynecol Oncol 2008; 109: 59-64
  • 151 Aerssens A, Claeys P, Beerens E. et al. Prediction of recurrent disease by cytology and HPV testing after treatment of cervical intraepithelial neoplasia. Cytopathology 2009; 20: 27-35
  • 152 Torné A, Fusté P, Rodriguez-Carunchio L. et al. Intraoperative post-conisation human papillomavirus testing for early detection of treatment failure in patients with cervical intraepithelial neoplasia: a pilot study. BJOG 2013; 120: 392-399
  • 153 Persson M, Brismar Wendel S, Ljungblad L. et al. High-risk human papillomavirus E6/E7 mRNA and L1 DNA as markers of residual/recurrent cervical intraepithelial neoplasia. Oncol Rep 2012; 28: 346-352
  • 154 Tinelli A, Guido M, Zizza A. et al. The mRNA-HPV test utilization in the follow up of HPV related cervical lesions. Curr Pharm Des 2013; 19: 1458-1465
  • 155 Kreimer AR, Guido RS, Solomon D. et al. Human papillomavirus testing following loop electrosurgical excision procedure identifies women at risk for posttreatment cervical intraepithelial neoplasia grade 2 or 3 disease. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2006; 15: 908-914
  • 156 Brismar S, Johansson B, Borjesson M. et al. Follow-up after treatment of cervical intraepithelial neoplasia by human papillomavirus genotyping. Am J Obstet Gynecol 2009; 201: 17.e1-17.e8
  • 157 Heymans J, Benoy IH, Poppe W. et al. Type-specific HPV geno-typing improves detection of recurrent high-grade cervical neoplasia after conisation. International journal of cancer. Int J Cancer 2011; 129: 903-909
  • 158 Sroczynski G, Siebert U. Evidence Report: Decision Analysis to evaluate Benefits, Harms and Cost-effectiveness of different cervical Cancer Screening Strategies to inform the S3 clinical Guideline “Prevention of Cervical Cancer” in the Context of the German Health Care System. Hall i.T., Austria: UMIT – University for Health Sciences, Medical Informatics and Technology; 2015

Correspondence/Korrespondenzadresse

Univ.-Prof. Dr. Peter Hillemanns
Klinik für Frauenheilkunde und Geburtshilfe
Medizinische Hochschule Hannover
Carl-Neuberg-Straße 1
30625 Hannover
Germany   

  • References/Literatur

  • 1 Balshem H, Helfand M, Schunemann HJ. et al. GRADE guidelines: 3. Rating the quality of evidence. J Clin Epidemiol 2011; 64: 401-406
  • 2 Arbeitsgemeinschaft der Wissenschaftlichen Medizinischen Fachgesellschaften (AWMF) – Ständige Kommission Leitlinien. AWMF-Regelwerk „Leitlinien“. 2012. Online: http://www.awmf.org/leitlinien/awmf-regelwerk.html last access: 10.11.2015
  • 3 Manos MM, Kinney WK, Hurley LB. et al. Identifying women with cervical neoplasia: using human papillomavirus DNA testing for equivocal Papanicolaou results. JAMA 1999; 281: 1605-1610
  • 4 Bergeron C, Jeannel D, Poveda J. et al. Human papillomavirus testing in women with mild cytologic atypia. Obstet Gynecol 2000; 95 (6 Pt 1): 821-827
  • 5 Lytwyn A, Sellors JW, Mahony JB. et al. Comparison of human papillomavirus DNA testing and repeat Papanicolaou test in women with low-grade cervical cytologic abnormalities: a randomized trial. HPV Effectiveness in Lowgrade Paps (HELP) Study No. 1 Group. CMAJ 2000; 163: 701-707
  • 6 Shlay JC, Dunn T, Byers T. et al. Prediction of cervical intraepithelial neoplasia grade 2-3 using risk assessment and human papillomavirus testing in women with atypia on papanicolaou smears. Obstet Gynecol 2000; 96: 410-416
  • 7 Morin C, Bairati I, Bouchard C. et al. Managing atypical squamous cells of undetermined significance in Papanicolaou smears. J Reprod Med 2001; 46: 799-805
  • 8 Rebello G, Hallam N, Smart G. et al. Human papillomavirus testing and the management of women with mildly abnormal cervical smears: an observational study. BMJ 2001; 322: 893-894
  • 9 Solomon D, Schiffman M, Tarone R. Comparison of three management strategies for patients with atypical squamous cells of undetermined significance: Baseline results from a randomized trial. J Natl Cancer Inst 2001; 93: 293-299
  • 10 Kulasingam SL, Hughes JP, Kiviat NB. et al. Evaluation of human papillomavirus testing in primary screening for cervical abnormalities: comparison of sensitivity, specificity, and frequency of referral. JAMA 2002; 288: 1749-1757
  • 11 Pretorius RG, Belinson JL, Burchette RJ. et al. Regardless of skill, performing more biopsies increases the sensitivity of colposcopy. J Low Genit Tract Dis 2011; 15: 180-188
  • 12 Cuzick J, Szarewski A, Cubie H. et al. Management of women who test positive for high-risk types of human papillomavirus: the HART study. Lancet 2003; 362: 1871-1876
  • 13 Guyot A, Karim S, Kyi MS. et al. Evaluation of adjunctive HPV testing by Hybrid Capture II in women with minor cytological abnormalities for the diagnosis of CIN2/3 and cost comparison with colposcopy. BMC Infect Dis 2003; 3: 23
  • 14 Lonky NM, Felix JC, Naidu YM. et al. Triage of atypical squamous cells of undetermined significance with hybrid capture II: colposcopy and histologic human papillomavirus correlation. Obstet Gynecol 2003; 101: 481-489
  • 15 Ordi J, Puig-Tintore LM, Torne A. et al. [Contribution of high risk human papillomavirus testing to the management of premalignant and malignant lesions of the uterine cervix]. Med Clin (Barc) 2003; 121: 441-445
  • 16 Wensveen C, Kagie M, Veldhuizen R. et al. Detection of cervical intraepithelial neoplasia in women with atypical squamous or glandular cells of undetermined significance cytology: a prospective study. Acta Obstet Gynecol Scand 2003; 82: 883-889
  • 17 Andersson S, Dillner L, Elfgren K. et al. A comparison of the human papillomavirus test and Papanicolaou smear as a second screening method for women with minor cytological abnormalities. Acta Obstet Gynecol Scand 2005; 84: 996-1000
  • 18 Dalla Palma P, Pojer A, Girlando S. HPV triage of women with atypical squamous cells of undetermined significance: a 3-year experience in an Italian organized programme. Cytopathology 2005; 16: 22-26
  • 19 Davis-Devine S, Day SJ, Freund GG. Test performance comparison of inform HPV and hybrid capture 2 high-risk HPV DNA tests using the SurePath liquid-based Pap test as the collection method. Am J Clin Pathol 2005; 124: 24-30
  • 20 Giovannelli L, Capra G, Lama A. et al. Atypical squamous cells of undetermined significance-favour reactive compared to atypical squamous cells of undetermined significance-favour dysplasia: association with cervical intraepithelial lesions and human papillomavirus infection. J Clin Virol 2005; 33: 281-286
  • 21 Nieh S, Chen SF, Chu TY. et al. Is p 16(INK4A) expression more useful than human papillomavirus test to determine the outcome of atypical squamous cells of undetermined significance-categorized Pap smear? A comparative analysis using abnormal cervical smears with follow-up biopsies. Gynecol Oncol 2005; 97: 35-40
  • 22 Bergeron C, Cas F, Fagnani F. et al. [Assessment of human papillomavirus testing on liquid-based Cyto-screen system for women with atypical squamous cells of undetermined significance. Effect of age]. Gynecol Obstet Fertil 2006; 34: 312-316
  • 23 Holladay EB, Logan S, Arnold J. et al. A comparison of the clinical utility of p 16(INK4a) immunolocalization with the presence of human papillomavirus by hybrid capture 2 for the detection of cervical dysplasia/neoplasia. Cancer 2006; 108: 451-461
  • 24 Kelly D, Kincaid E, Fansler Z. et al. Detection of cervical high-grade squamous intraepithelial lesions from cytologic samples using a novel immunocytochemical assay (ProEx C). Cancer 2006; 108: 494-500
  • 25 Kiatpongsan S, Niruthisard S, Mutirangura A. et al. Role of human papillomavirus DNA testing in management of women with atypical squamous cells of undetermined significance. Int J Gynecol Cancer 2006; 16: 262-265
  • 26 Monsonego J, Pintos J, Semaille C. et al. Human papillomavirus testing improves the accuracy of colposcopy in detection of cervical intraepithelial neoplasia. Int J Gynecol Cancer 2006; 16: 591-598
  • 27 Ronco G, Cuzick J, Segnan N. et al. HPV triage for low grade (L-SIL) cytology is appropriate for women over 35 in mass cervical cancer screening using liquid based cytology. Eur J Cancer 2007; 43: 476-480
  • 28 De Francesco MA, Gargiulo F, Schreiber C. et al. Comparison of the AMPLICOR human papillomavirus test and the hybrid capture 2 assay for detection of high-risk human papillomavirus in women with abnormal PAP smear. J Virol Methods 2008; 147: 10-17
  • 29 Monsonego J, Pollini G, Evrard MJ. et al. Detection of human papillomavirus genotypes among high-risk women: a comparison of hybrid capture and linear array tests. Sex Transm Dis 2008; 35: 521-527
  • 30 Siddiqui MT, Hornaman K, Cohen C. et al. ProEx C immunocytochemistry and high-risk human papillomavirus DNA testing in papanicolaou tests with atypical squamous cell (ASC-US) cytology: correlation study with histologic biopsy. Arch Pathol Lab Med 2008; 132: 1648-1652
  • 31 Szarewski A, Ambroisine L, Cadman L. et al. Comparison of predictors for high-grade cervical intraepithelial neoplasia in women with abnormal smears. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2008; 17: 3033-3042
  • 32 Cattani P, Zannoni GF, Ricci C. et al. Clinical performance of human papillomavirus E6 and E7 mRNA testing for high-grade lesions of the cervix. J Clin Microbiol 2009; 47: 3895-3901
  • 33 Silverloo I, Andrae B, Wilander E. Value of high-risk HPV-DNA testing in the triage of ASCUS. Acta Obstet Gynecol Scand 2009; 88: 1006-1010
  • 34 Del Mistro A, Frayle-Salamanca H, Trevisan R. et al. Triage of women with atypical squamous cells of undetermined significance (ASC-US): results of an Italian multicentric study. Gynecol Oncol 2010; 117: 77-81
  • 35 Denton KJ, Bergeron C, Klement P. et al. The sensitivity and specificity of p 16(INK4a) cytology vs. HPV testing for detecting high-grade cervical disease in the triage of ASC-US and LSIL pap cytology results. Am J Clin Pathol 2010; 134: 12-21
  • 36 Halfon P, Benmoura D, Agostini A. et al. Stepwise algorithm combining HPV high-risk DNA-based assays and RNA-based assay for high grade CIN in women with abnormal smears referred to colposcopy. Cancer Biomark 2010; 7: 133-139
  • 37 Alameda F, Pijuan L, Lloveras B. et al. The value of p 16 in ASCUS cases: a retrospective study using frozen cytologic material. Diagn Cytopathol 2011; 39: 110-114
  • 38 Belinson JL, Wu R, Belinson SE. et al. A population-based clinical trial comparing endocervical high-risk HPV testing using hybrid capture 2 and Cervista from the SHENCCAST II Study. Am J Clin Pathol 2011; 135: 790-795
  • 39 Clad A, Reuschenbach M, Weinschenk J. et al. Performance of the Aptima high-risk human papillomavirus mRNA assay in a referral population in comparison with Hybrid Capture 2 and cytology. J Clin Microbiol 2011; 49: 1071-1076
  • 40 Dufresne S, Sauthier P, Mayrand MH. et al. Human papillomavirus (HPV) DNA triage of women with atypical squamous cells of undetermined significance with Amplicor HPV and Hybrid Capture 2 assays for detection of high-grade lesions of the uterine cervix. J Clin Microbiol 2011; 49: 48-53
  • 41 Monsonego J, Hudgens MG, Zerat L. et al. Evaluation of oncogenic human papillomavirus RNA and DNA tests with liquid-based cytology in primary cervical cancer screening: the FASE study. Int J Cancer 2011; 129: 691-701
  • 42 Ratnam S, Coutlee F, Fontaine D. et al. Aptima HPV E6/E7 mRNA test is as sensitive as Hybrid Capture 2 Assay but more specific at detecting cervical precancer and cancer. J Clin Microbiol 2011; 49: 557-564
  • 43 Schmidt D, Bergeron C, Denton KJ. et al. p 16/ki-67 dual-stain cytology in the triage of ASCUS and LSIL papanicolaou cytology: results from the European equivocal or mildly abnormal Papanicolaou cytology study. Cancer Cytopathol 2011; 119: 158-166
  • 44 Stoler MH, Wright jr. TC, Sharma A. et al. High-risk human papillomavirus testing in women with ASC-US cytology: results from the ATHENA HPV study. Am J Clin Pathol 2011; 135: 468-475
  • 45 Szarewski A, Mesher D, Cadman L. et al. Comparison of seven tests for high-grade cervical intraepithelial neoplasia in women with abnormal smears: the Predictors 2 study. J Clin Microbiol 2012; 50: 1867-1873
  • 46 Alaghehbandan R, Fontaine D, Bentley J. et al. Performance of ProEx C and PreTect HPV-Proofer E6/E7 mRNA tests in comparison with the hybrid capture 2 HPV DNA test for triaging ASCUS and LSIL cytology. Diagn Cytopathol 2013; 41: 767-775
  • 47 Oliveira A, Verdasca N, Pista A. Use of the NucliSENS EasyQ HPV assay in the management of cervical intraepithelial neoplasia. J Med Virol 2013; 85: 1235-1241
  • 48 Denise Zielinski G, Snijders PJF, Rozendaal L. et al. High-risk HPV testing in women with borderline and mild dyskaryosis: long-term follow-up data and clinical relevance. J Pathol 2001; 195: 300-306
  • 49 Chen HS, Su TH, Yang YC. et al. Human Papillomavirus Testing (Hybrid Capture Ii) to Detect High-Grade Cervical intraepithelial Neoplasia in Women with Mildly Abnormal Papanicolaou Results. Taiwanese Journal of Obstetrics and Gynecology 2005; 44: 252-257
  • 50 Cuschieri KS, Graham C, Moore C. et al. Human Papillomavirus testing for the management of low-grade cervical abnormalities in the UK–Influence of age and testing strategy. J Clin Virol 2007; 38: 14-18
  • 51 You K, Liang X, Qin F. et al. High-risk human papillomavirus DNA testing and high-grade cervical intraepithelial lesions. Aust N Z J Obstet Gynaecol 2007; 47: 141-144
  • 52 Huang S, Erickson B, Tang N. et al. Clinical performance of Abbott RealTime High Risk HPV test for detection of high-grade cervical intraepithelial neoplasia in women with abnormal cytology. J Clin Virol 2009; 45 (Suppl. 01) S19-S23
  • 53 Lee JK, Kim MK, Song SH. et al. Comparison of Human Papillomavirus Detection and Typing by Hybrid Capture 2, Linear Array, DNA Chip, and Cycle Sequencing in Cervical Swab Samples. Int J Gynecol Cancer 2009; 19: 266-272
  • 54 Edgerton N, Cohen C, Siddiqui MT. Evaluation of CINtec PLUS® testing as an adjunctive test in ASC-US diagnosed SurePath® preparations. Diagn Cytopathol 2013; 41: 35-40
  • 55 Wentzensen N, Schwartz L, Zuna RE. et al. Performance of p 16/Ki-67 immunostaining to detect cervical cancer precursors in a colposcopy referral population. Clin Cancer Res 2012; 18: 4154-4162
  • 56 Loghavi S, Walts AE, Bose S. CINtec® PLUS dual immunostain: a triage tool for cervical pap smears with atypical squamous cells of undetermined significance and low grade squamous intraepithelial lesion. Diagn Cytopathol 2013; 41: 582-587
  • 57 Lee NW, Kim D, Park JT. et al. Is the human papillomavirus test in combination with the Papanicolaou test useful for management of patients with diagnoses of atypical squamous cells of undetermined significance/low-grade squamous intraepithelial lesions?. Arch Pathol Lab Med 2001; 125: 1453-1457
  • 58 Pretorius RG, Peterson P, Novak S. et al. Comparison of two signal-amplification DNA tests for high-risk HPV as an aid to colposcopy. J Reprod Med 2002; 47: 290-296
  • 59 Sherman ME, Schiffman M, Cox JT. et al. Effects of age and human papilloma viral load on colposcopy triage: data from the randomized Atypical Squamous Cells of Undetermined Significance/Low-Grade Squamous Intraepithelial Lesion Triage Study (ALTS). J Natl Cancer Inst 2002; 94: 102-107
  • 60 Meyer JL, Hanlon DW, Andersen BT. et al. Evaluation of p 16INK4a expression in ThinPrep cervical specimens with the CINtec p 16INK4a assay: correlation with biopsy follow-up results. Cancer 2007; 111: 83-92
  • 61 Castle PE, Fetterman B, Thomas Cox J. et al. The age-specific relationships of abnormal cytology and human papillomavirus DNA results to the risk of cervical precancer and cancer. Obstet Gynecol 2010; 116: 76-84
  • 62 Halford JA, Batty T, Boost T. et al. Comparison of the sensitivity of conventional cytology and the ThinPrep Imaging System for 1,083 biopsy confirmed high-grade squamous lesions. Diagn Cytopathol 2010; 38: 318-326
  • 63 Voss JS, Kipp BR, Campion MB. et al. Assessment of fluorescence in situ hybridization and hybrid capture 2 analyses of cervical cytology specimens diagnosed as low grade squamous intraepithelial lesion for the detection of high grade cervical intraepithelial neoplasia. Anal Quant Cytol Histol 2010; 32: 121-130
  • 64 Wu R, Belinson SE, Du H. et al. Human papillomavirus messenger RNA assay for cervical cancer screening: the Shenzhen Cervical Cancer Screening Trial I. Int J Gynecol Cancer 2010; 20: 1411-1414
  • 65 Heider A, Austin RM, Zhao C. HPV test results stratify risk for histopathologic follow-up findings of high-grade cervical intra-epithelial neoplasia in women with low-grade squamous intra-epithelial lesion Pap results. Acta Cytol 2011; 55: 48-53
  • 66 Levi AW, Harigopal M, Hui P. et al. Use of high-risk human papillomavirus testing in patients with low-grade squamous intraepithelial lesions. Cancer Cytopathol 2011; 119: 228-234
  • 67 Tsoumpou I, Valasoulis G, Founta C. et al. High-risk human papillomavirus DNA test and p 16(INK4a) in the triage of LSIL: a prospective diagnostic study. Gynecol Oncol 2011; 121: 49-53
  • 68 Ziemke P, Marquardt K. [Immunocytochemistry of p 16(INK4a) and Ki-67 as adjunctive method for routine gynecological cytology of mild and moderate dysplasia]. Pathologe 2013; 34: 323-328
  • 69 Waldstrom M, Christensen RK, Ornskov D. Evaluation of p 16(INK4a)/Ki-67 dual stain in comparison with an mRNA human papillomavirus test on liquid-based cytology samples with low-grade squamous intraepithelial lesion. Cancer Cytopathol 2013; 121: 136-145
  • 70 Ronco G, Segnan N, Giorgi-Rossi P. et al. Human papillomavirus testing and liquid-based cytology: results at recruitment from the new technologies for cervical cancer randomized controlled trial. J Natl Cancer Inst 2006; 98: 765-774
  • 71 Ronco G, Giorgi-Rossi P, Carozzi F. et al. Human papillomavirus testing and liquid-based cytology in primary screening of women younger than 35 years: results at recruitment for a randomised controlled trial. Lancet Oncol 2006; 7: 547-555
  • 72 Carozzi F, Confortini M, Palma PD. et al. Use of p 16-INK4A overexpression to increase the specificity of human papillomavirus testing: a nested substudy of the NTCC randomised controlled trial. Lancet Oncol 2008; 9: 937-945
  • 73 Carozzi F, Gillio-Tos A, Confortini M. et al. Risk of high-grade cervical intraepithelial neoplasia during follow-up in HPV-positive women according to baseline p 16-INK4A results: a prospective analysis of a nested substudy of the NTCC randomised controlled trial. Lancet Oncol 2013; 14: 168-176
  • 74 Kitchener HC, Almonte M, Gilham C. et al. ARTISTIC: a randomised trial of human papillomavirus (HPV) testing in primary cervical screening. Health Technol Assess (Rockv) 2009; 13: 1-150 iii–iv
  • 75 Naucler P, Ryd W, Törnberg S. et al. Efficacy of HPV DNA Testing With Cytology Triage and/or Repeat HPV DNA Testing in Primary Cervical Cancer Screening. J Natl Cancer Inst 2009; 101: 88-99
  • 76 Rijkaart DC, Berkhof J, Rozendaal L. et al. Human papillomavirus testing for the detection of high-grade cervical intraepithelial neoplasia and cancer: Final results of the POBASCAM randomised controlled trial. Lancet Oncol 2012; 13: 78-88
  • 77 Dijkstra MG, van Niekerk D, Rijkaart DC. et al. Primary hrHPV DNA Testing in Cervical Cancer Screening: How to Manage Screen-Positive Women? A POBASCAM Trial Substudy. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2014; 23: 55-63
  • 78 Leinonen MK, Anttila A, Malila N. et al. Type- and age-specific distribution of human papillomavirus in women attending cervical cancer screening in Finland. Br J Cancer 2013; 109: 2941-2950
  • 79 Castle PE, Stoler MH, Wright jr. TC. et al. Performance of carcinogenic human papillomavirus (HPV) testing and HPV16 or HPV18 genotyping for cervical cancer screening of women aged 25 years and older: a subanalysis of the ATHENA study. Lancet Oncol 2011; 12: 880-890
  • 80 Black ME, Yamada J, Mann V. A systematic literature review of the effectiveness of community-based strategies to increase cervical cancer screening. Can J Public Health 2002; 93: 386-393
  • 81 Camilloni L, Ferroni E, Cendales BJ. et al. Methods to increase participation in organised screening programs: a systematic review. BMC Public Health 2013; 13: 464
  • 82 Ferroni E, Camilloni L, Jimenez B. et al. How to increase uptake in oncologic screening: a systematic review of studies comparing population-based screening programs and spontaneous access. Prev Med 2012; 55: 587-596
  • 83 Tseng DS, Cox E, Plane MB. et al. Efficacy of patient letter reminders on cervical cancer screening: a meta-analysis. J Gen Intern Med 2001; 16: 563-568
  • 84 Stone EG, Morton SC, Hulscher ME. et al. Interventions that increase use of adult immunization and cancer screening services: A meta-analysis. Ann Intern Med 2002; 136: 641-651
  • 85 Bais AG, van Kemenade FJ, Berkhof J. et al. Human papillomavirus testing on self-sampled cervicovaginal brushes: An effective alternative to protect nonresponders in cervical screening programs. Int J Cancer 2007; 120: 1505-1510
  • 86 Gök M, Heideman DA, van Kemenade FJ. et al. HPV testing on self collected cervicovaginal lavage specimens as screening method for women who do not attend cervical screening: cohort study. BMJ 2010; 340: c1040
  • 87 Castle PE, Rausa A, Walls T. et al. Comparative community outreach to increase cervical cancer screening in the Mississippi Delta. Prev Med 2011; 52: 452-455
  • 88 Giorgi-Rossi P, Marsili LM, Camilloni L. et al. The effect of self-sampled HPV testing on participation to cervical cancer screening in Italy: a randomised controlled trial (ISRCTN96071600). Br J Cancer 2011; 104: 248-254
  • 89 Lazcano-Ponce E, Lorincz AT, Cruz-Valdez A. et al. Self-collection of vaginal specimens for human papillomavirus testing in cervical cancer prevention (MARCH): A community-based randomised controlled trial. Lancet 2011; 378: 1868-1873
  • 90 Szarewski A, Cadman L, Mesher D. et al. HPV self-sampling as an alternative strategy in non-attenders for cervical screening – a randomised controlled trial. Br J Cancer 2011; 104: 915-920
  • 91 Virtanen A, Nieminen P, Luostarinen T. et al. Self-sample HPV tests as an intervention for nonattendees of cervical cancer screening in Finland: a randomized trial. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2011; 20: 1960-1969
  • 92 Gok M, van Kemenade FJ, Heideman DA. et al. Experience with high-risk human papillomavirus testing on vaginal brush-based self-samples of non-attendees of the cervical screening program. Int J Cancer 2012; 130: 1228-1235
  • 93 Darlin L, Borgfeldt C, Forslund O. et al. Comparison of use of vaginal HPV self-sampling and offering flexible appointments as strategies to reach long-term non-attending women in organized cervical screening. J Clin Virol 2013; 58: 155-160
  • 94 Sancho-Garnier H, Tamalet C, Halfon P. et al. HPV self-sampling or the Pap-smear: A randomized study among cervical screening nonattenders from lower socioeconomic groups in France. Int J Cancer 2013; 133: 2681-2687
  • 95 Morrison EAB, Goldberg GL, Hagan RJ. et al. Self-administered home cervicovaginal lavage: A novel tool for the clinical-epidemiologic investigation of genital human papillomavirus infections. Am J Obstet Gynecol 1992; 167: 104-107
  • 96 Hillemanns P, Kimmig R, Hüttemann U. et al. Screening for cervical neoplasia by self-assessment for human papillomavirus DNA. Lancet 1999; 354: 1970
  • 97 Sellors JW, Lorincz AT, Mahony JB. et al. Comparison of self-collected vaginal, vulvar and urine samples with physician-collected cervical samples for human papillomavirus testing to detect high-grade squamous intraepithelial lesions. CMAJ 2000; 163: 513-518
  • 98 Wright jr. TC, Denny L, Kuhn L. et al. HPV DNA testing of self-collected vaginal samples compared with cytologic screening to detect cervical cancer. JAMA 2000; 283: 81-86
  • 99 Belinson J, Qiao YL, Pretorius R. et al. Shanxi province cervical cancer screening study: A cross-sectional comparative trial of multiple techniques to detect cervical neoplasia. Gynecol Oncol 2001; 83: 439-444
  • 100 Lorenzato FR, Singer A, Ho L. et al. Human papillomavirus detection for cervical cancer prevention with polymerase chain reaction in self-collected samples. Am J Obstet Gynecol 2002; 186: 962-968
  • 101 Nobbenhuis MAE, Helmerhorst TJM, Van den Brule AJC. et al. Primary screening for high risk HPV by home obtained cervicovaginal lavage is an alternative screening tool for unscreened women. J Clin Pathol 2002; 55: 435-439
  • 102 Garcia F, Barker B, Santos C. et al. Cross-sectional study of patient- and physician-collected cervical cytology and human papillomavirus. Obstet Gynecol 2003; 102: 266-272
  • 103 Salmerón J, Lazcano-Ponce E, Lorincz A. et al. Comparison of HPV-based assays with Papanicolaou smears for cervical cancer screening in Morelos State, Mexico. Cancer Causes Control 2003; 14: 505-512
  • 104 Brink AATP, Meijer CJLM, Wiegerinck MAHM. et al. High concordance of results of testing for human papillomavirus in cervicovaginal samples collected by two methods, with comparison of a novel self-sampling device to a conventional endocervical brush. J Clin Microbiol 2006; 44: 2518-2523
  • 105 Daponte A, Pournaras S, Mademtzis I. et al. Evaluation of HPV 16 PCR detection in self- compared with clinician-collected samples in women referred for colposcopy. Gynecol Oncol 2006; 103: 463-466
  • 106 Girianelli VR, Thuler LCS, Szklo M. et al. Comparison of human papillomavirus DNA tests, liquid-based cytology and conventional cytology for the early detection of cervix uteri cancer. Eur J Cancer Prev 2006; 15: 504-510
  • 107 Holanda jr. F, Castelo A, Veras TM. et al. Primary screening for cervical cancer through self sampling. Int J Gynaecol Obstet 2006; 95: 179-184
  • 108 Seo SS, Song YS, Kim JW. et al. Good correlation of HPV DNA test between self-collected vaginal and clinician-collected cervical samples by the oligonucleotide microarray. Gynecol Oncol 2006; 102: 67-73
  • 109 Szarewski A, Cadman L, Mallett S. et al. Human papillomavirus testing by self-sampling: Assessment of accuracy in an unsupervised clinical setting. J Med Screen 2007; 14: 34-42
  • 110 Qiao YL, Sellors JW, Eder PS. et al. A new HPV-DNA test for cervical-cancer screening in developing regions: a cross-sectional study of clinical accuracy in rural China. Lancet Oncol 2008; 9: 929-936
  • 111 Bhatla N, Dar L, Patro AR. et al. Can human papillomavirus DNA testing of self-collected vaginal samples compare with physician-collected cervical samples and cytology for cervical cancer screening in developing countries?. Cancer Epidemiol 2009; 33: 446-450
  • 112 Balasubramanian A, Kulasingam SL, Baer A. et al. Accuracy and cost-effectiveness of cervical cancer screening by high-risk human papillomavirus DNA testing of self-collected vaginal samples. J Low Genit Tract Dis 2010; 14: 185-195
  • 113 Gustavsson I, Sanner K, Lindell M. et al. Type-specific detection of high-risk human papillomavirus (HPV) in self-sampled cervicovaginal cells applied to FTA elute cartridge. J Clin Virol 2011; 51: 251-254
  • 114 Taylor S, Wang C, Wright TC. et al. A comparison of human papillomavirus testing of clinician-collected and self-collected samples during follow-up after screen-and-treat. Int J Cancer 2011; 129: 879-886
  • 115 Twu NF, Yen MS, Lau HY. et al. Type-specific human papillomavirus DNA testing with the genotyping array: A comparison of cervical and vaginal sampling. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2011; 156: 96-100
  • 116 Wikström I, Lindell M, Sanner K. et al. Self-sampling and HPV testing or ordinary Pap-smear in women not regularly attending screening: A randomised study. Br J Cancer 2011; 105: 337-339
  • 117 Belinson JL, Du H, Yang B. et al. Improved sensitivity of vaginal self-collection and high-risk human papillomavirus testing. Int J Cancer 2012; 130: 1855-1860
  • 118 Dijkstra MG, Heideman DAM, van Kemenade FJ. et al. Brush-based self-sampling in combination with GP5+/6+-PCR-based hrHPV testing: High concordance with physician-taken cervical scrapes for HPV genotyping and detection of high-grade CIN. J Clin Virol 2012; 54: 147-151
  • 119 Longatto-Filho A, Naud P, Derchain SFM. et al. Performance characteristics of Pap test, VIA, VILI, HR-HPV testing, cervicography, and colposcopy in diagnosis of significant cervical pathology. Virchows Archiv 2012; 460: 577-585
  • 120 Van Baars R, Bosgraaf RP, Ter Harmsel BWA. et al. Dry storage and transport of a cervicovaginal self-sample by use of the Evalyn Brush, providing reliable human papillomavirus detection combined with comfort for women. J Clin Microbiol 2012; 50: 3937-3943
  • 121 Zhao FH, Lewkowitz AK, Chen F. et al. Pooled analysis of a self-sampling HPV DNA test as a cervical cancer primary screening method. J Natl Cancer Inst 2012; 104: 178-188
  • 122 Darlin L, Borgfeldt C, Forslund O. et al. Vaginal self-sampling without preservative for human papillomavirus testing shows good sensitivity. J Clin Virol 2013; 56: 52-56
  • 123 Geraets DT, van Baars R, Alonso I. et al. Clinical evaluation of high-risk HPV detection on self-samples using the indicating FTA-elute solid-carrier cartridge. J Clin Virol 2013; 57: 125-129
  • 124 Guan Y, Gravitt PE, Howard R. et al. Agreement for HPV genotyping detection between self-collected specimens on a FTA cartridge and clinician-collected specimens. J Virol Methods 2013; 189: 167-171
  • 125 Jentschke M, Lange V, Soergel P. et al. Enzyme-linked immunosorbent assay for p 16INK4a – A new triage test for the detection of cervical intraepithelial neoplasia?. Acta Obstet Gynecol Scand 2013; 92: 160-164
  • 126 Jentschke M, Soergel P, Hillemanns P. Evaluation of a multiplex real time PCR assay for the detection of human papillomavirus infections on self-collected cervicovaginal lavage samples. J Virol Methods 2013; 193: 131-134
  • 127 Nieves L, Enerson CL, Belinson S. et al. Primary cervical cancer screening and triage using an mRNA human papillomavirus assay and visual inspection. Int J Gynecol Cancer 2013; 23: 513-518
  • 128 World Health Organization. WHO Guidelines for Treatment of cervical intraepithelial Neoplasia 2 – 3 and Adenocarcinoma in situ: Cryotherapy, large Loop Excision of the Transformation Zone, and Cold Knife Conization. Geneva: World Health Organization; 2014
  • 129 Massad LS, Einstein MH, Huh WK. et al. 2012 updated consensus guidelines for the management of abnormal cervical cancer screening tests and cancer precursors. J Low Genit Tract Dis 2013; 17 (5 Suppl. 1): S1-S27
  • 130 Luesley D, Leeson S. Colposcopy and programme management Guidelines for the NHS Cervical Screening Programme. 2010; 2: [NHSCSP Publication No 20]. Online: https://www.gov.uk/government/uploads/system/uploads/attachment_data/file/436873/nhscsp20.pdf last access: 15.01.2016
  • 131 Alonso I, Torné A, Puig-Tintoré LM. et al. Pre- and post-conization high-risk HPV testing predicts residual/recurrent disease in patients treated for CIN 2–3. Gynecol Oncol 2006; 103: 631-636
  • 132 Melnikow J, McGahan C, Sawaya GF. et al. Cervical Intraepithelial Neoplasia Outcomes After Treatment: Long-term Follow-up From the British Columbia Cohort Study. J Natl Cancer Inst 2009; 101: 721-728
  • 133 Strander B, Hällgren J, Sparén P. Effect of ageing on cervical or vaginal cancer in Swedish women previously treated for cervical intraepithelial neoplasia grade 3: population based cohort study of long term incidence and mortality. BMJ 2014; 348: f7361
  • 134 Tropé A, Jonassen CM, Sjøborg KD. et al. Role of high-risk human papillomavirus (HPV) mRNA testing in the prediction of residual disease after conisation for high-grade cervical intraepithelial neoplasia. Gynecol Oncol 2011; 123: 257-262
  • 135 Ryu A, Nam K, Kwak J. et al. Early human papillomavirus testing predicts residual/recurrent disease after LEEP. J Gynecol Oncol 2012; 23: 217-225
  • 136 Verguts J, Bronselaer B, Donders G. et al. Prediction of recurrence after treatment for high-grade cervical intraepithelial neoplasia: the role of human papillomavirus testing and age at conisation. BJOG 2006; 113: 1303-1307
  • 137 Kang WD, Oh MJ, Kim SM. et al. Significance of human papillomavirus genotyping with high-grade cervical intraepithelial neoplasia treated by a loop electrosurgical excision procedure. Am J Obstet Gynecol 2010; 203: 72.e1-72.e6
  • 138 Cecchini S, Carozzi F, Confortini M. et al. Persistent human papilloma virus infection as an indicator of risk of recurrence of high-grade cervical intraepithelial neoplasia treated by the loop electrosurgical excision procedure. Tumori 2004; 90: 225-228
  • 139 Ang C, Mukhopadhyay A, Burnley C. et al. Histological recurrence and depth of loop treatment of the cervix in women of reproductive age: incomplete excision versus adverse pregnancy outcome. BJOG 2011; 118: 685-692
  • 140 Flannelly G, Bolger B, Fawzi H. et al. Follow up after LLETZ: could schedules be modified according to risk of recurrence?. BJOG 2001; 108: 1025-1030
  • 141 Prato B, Ghelardi A, Gadducci A. et al. Correlation of recurrence rates and times with posttreatment human papillomavirus status in patients treated with loop electrosurgical excision procedure conization for cervical squamous intraepithelial lesions. Int J Gynecol Cancer 2008; 18: 90-94
  • 142 Castle PE, Schiffman M, Herrero R. et al. A prospective study of age trends in cervical human papillomavirus acquisition and persistence in Guanacaste, Costa Rica. J Infect Dis 2005; 191: 1808-1816
  • 143 Aerssens A, Claeys P, Garcia A. et al. Natural history and clearance of HPV after treatment of precancerous cervical lesions. Histopathology 2008; 52: 381-386
  • 144 Sarian LO, Derchain SF, Pitta Dda R. et al. Factors associated with HPV persistence after treatment for high-grade cervical intra-epithelial neoplasia with large loop excision of the transformation zone (LLETZ). J Clin Virol 2004; 31: 270-274
  • 145 Strander B, Andersson-Ellström A, Milsom I. et al. Long term risk of invasive cancer after treatment for cervical intraepithelial neoplasia grade 3: population based cohort study. BMJ 2007; 335: 1077
  • 146 Jeong NH, Lee NW, Kim HJ. et al. High-risk human papillomavirus testing for monitoring patients treated for high-grade cervical intraepithelial neoplasia. J Obstet Gynaecol Res 2009; 35: 706-711
  • 147 Chua KL, Hjerpe A. Human papillomavirus analysis as a prognostic marker following conization of the cervix uteri. Gynecol Oncol 1997; 66: 108-113
  • 148 Houfflin Debarge V, Collinet P, Vinatier D. et al. Value of human papillomavirus testing after conization by loop electrosurgical excision for high-grade squamous intraepithelial lesions. Gynecol Oncol 2003; 90: 587-592
  • 149 Chao A, Lin CT, Hsueh S. et al. Usefulness of human papillomavirus testing in the follow-up of patients with high-grade cervical intraepithelial neoplasia after conization. Am J Obstet Gynecol 2004; 190: 1046-1051
  • 150 Fambrini M, Penna C, Pieralli A. et al. PCR detection rates of high risk human papillomavirus DNA in paired self-collected urine and cervical scrapes after laser CO2 conization for high-grade cervical intraepithelial neoplasia. Gynecol Oncol 2008; 109: 59-64
  • 151 Aerssens A, Claeys P, Beerens E. et al. Prediction of recurrent disease by cytology and HPV testing after treatment of cervical intraepithelial neoplasia. Cytopathology 2009; 20: 27-35
  • 152 Torné A, Fusté P, Rodriguez-Carunchio L. et al. Intraoperative post-conisation human papillomavirus testing for early detection of treatment failure in patients with cervical intraepithelial neoplasia: a pilot study. BJOG 2013; 120: 392-399
  • 153 Persson M, Brismar Wendel S, Ljungblad L. et al. High-risk human papillomavirus E6/E7 mRNA and L1 DNA as markers of residual/recurrent cervical intraepithelial neoplasia. Oncol Rep 2012; 28: 346-352
  • 154 Tinelli A, Guido M, Zizza A. et al. The mRNA-HPV test utilization in the follow up of HPV related cervical lesions. Curr Pharm Des 2013; 19: 1458-1465
  • 155 Kreimer AR, Guido RS, Solomon D. et al. Human papillomavirus testing following loop electrosurgical excision procedure identifies women at risk for posttreatment cervical intraepithelial neoplasia grade 2 or 3 disease. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2006; 15: 908-914
  • 156 Brismar S, Johansson B, Borjesson M. et al. Follow-up after treatment of cervical intraepithelial neoplasia by human papillomavirus genotyping. Am J Obstet Gynecol 2009; 201: 17.e1-17.e8
  • 157 Heymans J, Benoy IH, Poppe W. et al. Type-specific HPV geno-typing improves detection of recurrent high-grade cervical neoplasia after conisation. International journal of cancer. Int J Cancer 2011; 129: 903-909
  • 158 Sroczynski G, Siebert U. Evidence Report: Decision Analysis to evaluate Benefits, Harms and Cost-effectiveness of different cervical Cancer Screening Strategies to inform the S3 clinical Guideline “Prevention of Cervical Cancer” in the Context of the German Health Care System. Hall i.T., Austria: UMIT – University for Health Sciences, Medical Informatics and Technology; 2015

Zoom Image
Zoom Image
Zoom Image
Zoom Image
Zoom Image
Zoom Image