Mechanisch induzierte Apoptose und Nekrose in alveolären Typ-II-Zellen - Beeinflussung durch Captopril und L-Arginin

Einleitung

Alveoläre Typ-II(ATII)-Zellen synthetisieren und sezernieren Surfactant und regenerieren das alveoläre Epithel. Auf diese Weise gewährleisten sie die alveoläre Homöostase. Mechanische Stimuli, wie zyklische Dehnung und Relaxation alveolärer Strukturen während der Atmung, spielen bei der Regulation dieser Prozesse eine entscheidende Rolle [1] [2]. In ATII-Zellen stimuliert mechanische Dehnung über kalziumabhängige Signaltransduktion die Phospholipidsekretion [1] und die Expression von Surfactantproteinen [3]. Neben diesen physiologischen Effekten kann mechanische Dehnung von ATII-Zellen auch schädigende Wirkungen entfalten. So führt starke mechanische Dehnung zu Apoptose [4], zu Einrissen der Zellmembran [5] und konsekutivem nekrotischen Zelltod [6] [7].

Solche starken mechanischen Dehnungen können beispielsweise im Zusammenhang mit mechanischer Beatmung auftreten. Insbesondere Beatmung mit hohem Atemzugvolumen stellt einen Faktor dar, der akute Lungenschädigung auslösen oder aggravieren kann. So verschlechtert die Beatmung mit hohem im Vergleich zu niedrigem Atemzugvolumen die Prognose beim ARDS (acute respiratory distress syndrome) [8] [9]. Verschiedene experimentelle Ergebnisse können diese klinischen Befunde erklären: So konnte gezeigt werden, dass mechanische Dehnung eine Reihe von schädigenden, proinflammatorischen Prozessen, wie die Freisetzung von Prostanoiden und Zytokinen auslöst [2] [5] [10] [11]. Während diese mechanisch induzierte Mediatorfreisetzung als Folge mechanisch induzierter Regulationsprozesse verstanden werden kann, existieren auch experimentelle Daten, die demonstrieren, dass die Einwirkung mechanischer Kräfte direkt zu nekrotischem Zelltod führen kann [6] [7]. Die damit verbundene Freisetzung von Bestandteilen des Zytosols zerstörter Zellen kann wiederum eine inflammatorische Reaktion auslösen [10] [12].

Apoptose ist der wesentliche Mechanismus, der den Untergang von ATII-Zellen im Zusammenhang mit akuter Lungenschädigung erklärt [13]. Die verminderte Zahl von ATII-Zellen führt zu verminderter Surfactantproduktion und -sekretion sowie zu einem gestörten Surfactantrecycling und ist eine Erklärung für den bei akuter Lungenschädigung vorliegenden Surfactantmangel [14]. Daneben ist infolge verstärkter Apoptose von ATII-Zellen auch die Regeneration des alveolären Epithels gestört.

In den bisherigen Arbeiten zu mechanisch induzierter Apoptose und Nekrose an ATII-Zellen wurden einerseits nur unphysiologische Dehnungsmuster (3 Dehnungen/min) verwendet [4], andererseits untersuchten diese Arbeiten nur einzelne Dehnungsmuster [15] [16] oder untersuchen ATII-Zellen nach fünf Tagen in Kultur unter der Annahme, dass diese Zellen dann eher alveoläre Typ-I-Zellen repräsentieren [6] [7].

Ziel dieser Arbeit ist es, den Einfluss von Dehnungsfrequenz, Dehnungsamplitude und Dauer der zyklischen Dehnung auf die Auslösung mechanisch induzierter Apoptose und Nekrose zu charakterisieren. Weiterhin sollten Substanzen mit zu erwartenden antiapoptotischem Effekt hinsichtlich ihrer Wirkung auf die mechanisch induzierte Apoptose und Nekrose untersucht werden.

Methodik

Präparation von ATII-Zellen

ATII-Zellen wurden mit der von Dobbs u. Mitarb. 1986 [17] entwickelten und in verschiedenen Vorarbeiten beschriebenen Methode [1] [18] [19] präpariert. Dabei werden ATII-Zellen aus den Lungen männlicher Sprague-Dawley-Ratten (150 - 200 g) mittels Elastase-Verdau und selektiver Adhärenz auf IgG-beschichteten Platten präpariert. Zum Zeitpunkt des Ausplattierens waren 89 ± 3,4 % der Zellen vitale ATII-Zellen (nachgewiesen durch modifizierte Papanicolaou-Färbung).

Die ATII-Zellen werden auf die zentralen Bereiche (ca. 1,5 cm Durchmesser) der mit Fibronectin beschichteten, dehnbaren Silikonmembranen (Bioflex®, Flexcell International, Hillsborough, NC, USA) ausplattiert. Dabei werden auf 6-well-Platten 10⁶ Zellen je Well in Dulbeccos modified Eagle's medium (DMEM) mit 10 % fetalem Kälberserum (FCS), 1 % w/v Gentamicin und 1 % Glutamine ausplattiert. Nach einer Adhärenzperiode von 22 h wird das Medium durch DMEM mit 2 % FCS ersetzt. Mit diesen Platten wurden die Experimente durchgeführt.

Versuchsprotokoll

Die ATII-Zellen auf den Bioflex® Platten wurden mit einem FX 4000T^TM Flexercell® Tension Plus^TM System (Flexcell International, Hillsborough, NC, USA) zyklischer Dehnung ausgesetzt. Eines von drei Dehnungsmustern wurde zufällig gewählt und über die gesamte Versuchszeit von 24 h angewendet. Zellen und Überstände wurden zu den Zeiten t = 0 min (vor Beginn der Dehnung - Ausgangswerte), t = 12 h, t = 18 h und t = 24 h gesammelt.

Die Dehnungsmuster wurden durch Frequenz und Amplitude (Oberflächenzunahme der kalibrierten Silikonmembran) definiert. Die Membrandehnung wurde mit negativem Druck kalibriert und während der gesamten Versuchsdauer überwacht.

Die von uns genannten Zahlen der Oberflächezunahme entsprechen nicht denen, die in der Software des Dehnungsgerätes gewählt werden können, sondern der realen, tatsächlich im Versuch durchgängig anhand des negativen Drucks während jeder Dehnung berechneten Oberflächenänderungen der Membran. In dieser Berechnung wurden die Eigenschaften der verwendeten Membranen ebenso wie die der jeweils verwendeten Grundplatte des Dehnungsgerätes berücksichtigt.

ATII-Zellen auf identisch beschichteten Silikonmembranen wurden nicht zyklisch gedehnt und dienten als Kontrollen (statische Kultur).

Dehnungsmuster

Die Dehnungsmuster wurden so definiert, dass in dem Modell der ATII-Zellen der Ratte der Einfluss von Dehnungsfrequenz und -amplitude charakterisiert werden kann. In der Rattenlunge kommt es zu einer Zunahme der Basalmembranoberfläche ab einer Inflation von mehr als ca. 40 % TLC [20]. Veränderung des Volumens unterhalb dieser Größenordnung (d. h. unterhalb der funktionellen Residualkapazität [FRC]) führen wahrscheinlich nur zu einer Entfaltung der Basalmembran und/oder zu einer Eröffnung kollabierter Alveolen und nicht zur Dehnung der Basalmembran. Um die Dehnungsamplitude festzulegen, orientierten wir uns an dem Zusammenhang zwischen Veränderung der Basalmembranoberfläche und dem Lungenvolumen, wie er durch Tschumperlin u. Mitarb. 1999 beschrieben wurde [20]. Dabei entsprechen Oberflächenänderungen der Basalmembran von 13 % und 30 % im Bezug zur Oberfläche bei 42 % TLC etwa Lungenblähungen bis 75 und 100 % TLC (Funktion in Abb. [3A] [20]). Die so gewählten Dehnungsamplituden entsprechen also zum einen etwas mehr als der Atmung mit normalem Atemzugvolumen und zum anderen ziemlich genau der maximalen Inspiration. Um den Einfluss der Frequenz zu charakterisieren wurden 40 und 60 min^{- 1} gewählt. Aus technischen Gründen war es nicht möglich, eine Dehnungsfrequenz von 60 min^{- 1} mit einer Amplitude von 30 % zu verbinden. Daher nutzten wir drei Dehnungsmuster [S], die durch Frequenz [min^{- 1}] und Amplitude [% Oberflächenzunahme] definiert sind: S40 - 13, S60 - 13 und S40 - 30.

Abb. 1 LDH-Freisetzung. LDH-Konzentration in den Überständen zyklisch gedehnter Zellen (offene Symbole) und statischer Kulturen (schwarze Punkte). Die Diagramme zeigen den Vergleich der Versuchsgruppen S40 - 13, S60 - 13 und S40 - 30 mit den statischen Kulturen. *: p < 0,05 im Vergleich zu statischen Kulturen; †: p < 0,05 im Vergleich zu statischen Kulturen und zu den Gruppen S40 - 13 und S60 - 13.

Um auszuschließen, dass die dehnbaren Membranen durch Dehnung eine zytotoxische Verbindung freisetzen, welche selbst Apoptose oder Nekrose auslösen könnte, wurde folgendermaßen verfahren: Kulturmedium wurde auf Platten gegeben und ohne Zellen zyklischer Dehnung über 24 h ausgesetzt (S40 - 30). Dieses Medium wurde dann auf Zellen in statischer Kultur gegeben und mit dem Medium von statischen Membranen verglichen. Es ergab sich kein Unterschied hinsichtlich der Induktion von Apoptose und Nekrose.

LDH-Messung

Die Konzentration der freigesetzten Laktatdehydrogenase (LDH) wurde in den Überständen gemessen (Cytotoxicity Detection Kit [Roche Diagnostics GmbH, Mannheim, Germany]). Die Eichkurve (Standard-LDH von Sigma-Aldrich GmbH, Deisenhofen, Germany) wurde zwischen 2 und 0,016 µg/ml gewählt.

Apoptose und Nekrose

Annexin-V-Bindung und PI-Färbung: Die Zellen wurden mit Trypsin von den dehnbaren Membranen gelöst. In die Analyse wurden adhärente und nichtadhärente Zellen einbezogen. Die Zellen wurden mit FITC-konjugiertem Annexin V und Propidiumiodid (PI) gefärbt (Apoptosis Detection Kit [R&D Systems, Minneapolis, MN, USA]), und durchflusszytometrisch analysiert (Epics XL, Beckman-Coulter). Jeder Datenpunkt repräsentiert n = 4 Versuche mit Dreifachmessung.

Anreicherung von Oligonucleosomen: In Überständen wurde die Anreicherung von Oligonucleosomen gemessen (Cell Death Detection ELISA plus® [Roche, Mannheim, Germany]). Der Anleitung des Herstellers folgend wurde ein Anreicherungsfaktor bestimmt, der die Relation zwischen gedehnten Zellen und statischen Kontrollen angibt. Jeder Datenpunkt repräsentiert n = 3 Versuche mit Dreifachmessung.

Caspase-8-Aktivität: Im Zellhomogenat wurde die Aktivität der Caspase-8 kolorimetrisch bestimmt (R&D Systems, Minneapolis, MN, USA). Rekombinante Caspase-8 (R&D systems) wurde als Standard verwendet. Jeder Datenpunkt repräsentiert n = 3 Versuche mit Dreifachmessung.

Einfluss von Captopril und L-Arginin

In einer eigenständigen Gruppe von Experimenten wurden die Effekte des ACE-Hemmers Captopril (CAP, Endkonzentration 50 ng/ml) und des Substrates der NO-Synthase L-Arginin (LAR, Endkonzentration 1 mM) auf die mechanisch induzierte Apoptose und Nekrose charakterisiert. In diesen Experimenten wurde das Dehnungsmuster verwendet, welches die höchste Rate an apoptotischen Zellen erzielte. Als Kontrolle dienten statische Kulturen mit Zugabe der zu testenden Substanzen und gedehnte Kulturen ohne diese Substanzen. Jeder Datenpunkt repräsentiert n = 6 Versuche mit Dreifachmessung.

Angiotensin II ELISA

Die Überstände gedehnter Zellen (alle drei Dehnungsmuster) wurden nach 24 h auf Angiotensin II analysiert (SpiBio, Massy, Cedex, France; n = 3 Zellpräparationen, Dreifachmessungen).

Statistik

Für die Vergleiche zwischen den Versuchsgruppen wurde der t-Test mit Bonferoni-Korrektur für Mehrfachtestung verwendet. Die Ergebnisse sind als Mittelwert ± Standardabweichung angegeben.

Ergebnisse

Laktatdehydrogenase

Die LDH-Konzentration wurde in den Überständen aller Versuchsgruppen gemessen (Abb. [1]). In den Überständen der statischen Kontrollen stieg die LDH-Konzentration über die Zeit leicht, auf ein Maximum von 0,050 ± 0,011 µg/ml nach 24 h, an. Die LDH-Freisetzung in der S40 - 13 Gruppe (0,059 ± 0,011 µg/ml nach 24 h) unterschied sich nicht signifikant von der in statischen Kulturen. Die LDH-Freisetzung in den Versuchsgruppen S60 - 13 und S40 - 30 war dagegen nach 12, 18 und 24 h signifikant höher als in den statischen Kulturen (S60 - 13: 0,089 ± 0,014 µg/ml p < 0,0001 und S40 - 30: 0,177 ± 0,050 µg/ml, p < 0,0001 nach 24 h). Am größten war die LDH-Freisetzung in der Versuchsgruppe mit der großen Dehnungsamplitude (S40 - 30, p = 0,0002 gegenüber S40 - 13 und p = 0,031 gegenüber S60 - 13 nach 24 h).

Abb. 2 Annexin-V-Bindung und PI-Färbung. Durchflusszytometrische Daten von zyklisch gedehnten Zellen (offene Symbole) und statischen Kulturen (schwarze Punkte). Die Diagramme zeigen den Vergleich zwischen den Versuchsgruppen S40 - 13, S60 - 13, S40 - 30 und statischen Kulturen. Reihe A zeigt den Prozentsatz vitaler Zellen, Reihe B den frühapoptotischer Zellen, Reihe C den spätapoptotische/nekrotischer Zellen und Reihe D den nekrotischer Zellen. *: p < 0,05 im Vergleich zu statischen Kulturen und zur Gruppe S40 - 13; †: p < 0,05 im Vergleich zu statischen Kulturen und zu den Gruppen S40 - 13 und S60 - 13.

Annexin-V-Bindung und PI-Färbung

Die Ergebnisse der Durchflusszytometrie sind in Abb. [2] zusammengefasst. Annexin-V-negative/PI-negative Zellen (Abb. [2A]) wurden als vitale Zellen betrachtet. Der Prozentsatz dieser Zellen unterschied sich in den Versuchsgruppen S40 - 13 und S60 - 13 nicht signifikant von dem in statischer Kultur. Ein signifikanter Rückgang der vitalen Zellen über die Versuchszeit konnte dagegen unter dem Dehnungsmuster S40 - 30 beobachtet werden (55 ± 12 gegenüber 81 ± 2,4 % p = 0,0002 nach 24 h). Diese Abnahme der Zahl vitaler Zellen konnte mit einer Zunahme Annexin-V-negativer/PI-positiver (nekrotischer) Zellen und mit einer Zunahme Annexin-V-positiver/PI-negativer (frühapoptotischer) sowie Annexin-V-positiver/PI-positiver (spätapoptotischer/nekrotischer) Zellen erklärt werden (Abb. [2B - D]).

Abb. 3 Freisetzung von Oligonucleosomen. Die Freisetzung von Oligonucleosomen in die Überstände von Zellen während zyklischer Dehnung über 24 h wurde mit einem ELISA, welcher histonassoziierte DNA erkennt, gemessen. Die Konzentration der histonassoziierten DNA in Überständen gedehnter Zellen wurde zu den Konzentrationen statischer Kontrollen ins Verhältnis gesetzt. Dieser Anreicherungsfaktor ist dargestellt (relative Einheiten). * p < 0,05 im Vergleich zu den Gruppen S60 - 13 und S40 - 13.

Im Vergleich zur statischen Kultur signifikant erhöht fand sich der Prozentsatz der frühapoptotischen Zellen (Abb. [2B]) sowohl in der Versuchsgruppe S60 - 13 (17 ± 3,5 % gegenüber 9,7 ± 1,4 %, p = 0,037 nach 24 h) als auch in der Versuchsgruppe S40 - 30 (21 ± 3,2 % gegenüber 13 ± 1,7 %, p = 0,035 nach 18 h und 23 ± 3,1 % gegenüber 9,7 ± 1,4 %, p = 0,0044 nach 24 h). Der Prozentsatz der nekrotischen Zellen (Abb. [2D]) unterschied sich zwischen statischen Kulturen und zyklisch gedehnten Zellen der Versuchsgruppen S40 - 13 und S60 - 13 nicht signifikant. Unter dem Dehnungsmuster mit hoher Amplitude (S40 - 30) dagegen war ein zweigipfeliger Anstieg der nekrotischen Zellen mit einem frühen Gipfel nach12 h und einem zweiten Gipfel nach 24 h (18 ± 2,2 % gegenüber 6,6 ± 1,1 %, p = 0,0002 und 13 ± 2,4 % gegenüber 6,1 ± 0,9 %, p = 0,0034) zu verzeichnen. Im Gegensatz dazu stieg der Prozentsatz frühapoptotischer Zellen beginnend nach 18 h kontinuierlich an. Die Zahl der spätapoptotischen/nekrotischen Zellen (Abb. [2C]) stieg nach 12 h an und erreichte ein Maximum nach 18 h.

Diese Ergebnisse legen nahe, dass in dieser Versuchsgruppe der Zelluntergang in zwei Phasen abläuft. Einer frühen Phase nekrotischen Zelltods folgt eine Phase, die vor allem durch apoptotischen Zelltod charakterisiert ist.

Anreicherung von Oligonucleosomen

Der Anreicherungsfaktor für Oligonucleosomen in den Überständen gedehnter Zellen im Vergleich zu statischen Kulturen ist in Abb. [3] wiedergegeben. Die Versuchsgruppen mit niedriger Dehnungsamplitude (S40 - 13 und S60 - 13) unterschieden sich in diesem Anreicherungsfaktor nicht voneinander. Im Vergleich zu diesen beiden Versuchsgruppen kam es jedoch in den Versuchen mit hoher Dehnungsamplitude (S40 - 13) zu einer signifikant stärkeren Anreicherung von Oligonucleosomen im Überstand.

Caspase-8-Aktivität

Die in den Zelllysaten gemessene Aktivität der Caspase-8 aller Versuchs- und Kontrollgruppen ist in der Abb. [4] zusammengefasst. Nur in der Versuchsgruppe mit hoher Dehnungsamplitude wurde ein signifikanter Unterschied zwischen den Experimenten mit gedehnten Zellen und statischen Kulturen gefunden.

Abb. 4 Caspase-8-Aktivität. Die Aktivität der Caspase-8 wurde in den Lysaten der Zellen nach 24 h zyklischer (schwarze Säulen) Dehnung oder statischer Kultur (offene Säulen) gemessen und als Mittelwert ± Standardfehler angegeben. *: p < 0,05 im Vergleich zur korrespondierenden statischen Kontrollgruppe.

Angiotensin II

Mit dem verwendeten Assay (Angiotensin ELISA, SpiBio, Massy, Cedex, France) konnte Angiotensin II nicht nachgewiesen werden.

Einfluss von Captopril und L-Arginin

Die Abb. [5] zeigt, wie Captopril und L-Arginin die mechanisch induzierte LDH-Freisetzung, Apoptose und Nekrose in der Versuchsgruppe S40 - 30 beeinflussen. Beide Substanzen veränderten die mechanisch induzierte LDH-Freisetzung und Nekrose nicht, verhinderten aber die mechanisch induzierte Apoptose nahezu vollständig, so dass der Prozentsatz der frühapoptotischen Zellen in den Versuchen mit diesen Verbindungen nahezu die Werte der Kontrollgruppen erreichte (10,7 ± 2,2 % und 10,5 ± 2,5 % in den Gruppen CAP und LAR). Ebenso verringerten Captopril und L-Arginin die Zahl der spätapoptotischen/nekrotischen Zellen fast auf das Niveau der statischen Kulturen. Die Zahl der vitalen Zellen wurde durch Captopril und L-Arginin dementsprechend deutlich gesteigert auf 77 ± 2,6 % und 76 ± 3,8 % nach 24 h (statische Kulturen: 82 ± 3 %).

Abb. 5 Effekte von Captopril and L-Arginin. Die Effekte von Captopril (CAP) und L-Arginin (LAR) auf LDH-Freisetzung (A), vitale (B), frühapoptotische (C), spätapoptotische/nekrotische (D) und nekrotische Zellen (E) sind zusammengefasst. Statische Kontrollen werden mit zyklisch gedehnten ATII-Zellen (S40 - 30, 24 h) ohne oder mit Zusatz von 50 ng/ml Captopril (CAP) oder 1mM L-Arginin (LAR) verglichen. * p < 0,05 im Vergleich zur statischen Kontrolle.

Diskussion

Diese Studie untersucht an ATII-Zellen die Effekte zyklischer mechanischer Dehnung auf LDH-Freisetzung, apoptotischen und nekrotischen Zelltod. Wir wählten zunächst ein Dehnungsmuster, dass die mechanische Stimulation dieser Zellen unter physiologischer Atmung simulieren sollte (S40 - 13). Eine Frequenz von 40/min entspricht der Atemfrequenz der Ratte in Ruhe, und eine Oberflächenzunahme der Zellmembran von 13 % entspricht ungefähr einer Inspiration von der FRC bis zu 75 % TLC [20]. Die unter diesem Dehnungsmuster freigesetzte LDH überschritt nicht die in statischen Kontrollen freigesetzte und gewöhnlich in Zellkultur gefundene LDH-Freisetzung. Ebenso fanden sich unter diesem Dehnungsmuster die Zahl vitaler, apoptotischer und nekrotischer Zellen nicht verschieden von den Werten statischer Kulturen.

Ein weiteres Dehnungsmuster wurde so gewählt, dass die Dehnungsamplitude (30 %) der Oberflächen der Zellmembran bei maximaler Inspiration (100 % TLC) entspricht. Dieses Dehnungsmuster führte - beginnend zu 12 h - zu einer signifikanten Zunahme der LDH-Freisetzung und zu einem signifikanten Anstieg apoptotischer und nekrotischer Zellen. Entsprechend sank die Zahl der vitalen Zellen über die Zeit. Der zeitliche Verlauf der LDH-Freisetzung, der Marker für Apoptose und Nekrose lässt vermuten, dass zwei Mechanismen zu dem beobachteten Rückgang der vitalen Zellen führen: Bereits nach 12 h kam es zu einem frühen Anstieg nekrotischer Zellen, während die Zahl der apoptotischen Zellen zu diesem Zeitpunkt nur moderat angestiegen war. Nach 18 und 24 h dagegen steigt die Anzahl der apoptotischen Zellen deutlich an, während die Zahl der nekrotischen Zellen nach 18 h zurückgeht - die erste Nekrose-Phase ist offensichtlich abgelaufen. Nach 24 h führt offensichtlich die vermehrt ablaufende Apoptose zu einem zweiten Anstieg toter Zellen. Das Modell des mechanisch induzierten „membrane stress failure” lässt sich mit unserer Beobachtung gut in Einklang bringen: Zellen, die nach Einrissen der Zellmembran durch mechanische Dehnung nicht suffizient verschließen und den mit dem Einriss verbundenen Kalziumeinstrom kompensieren können, werden nekrotisch. In anderen Zellen, in denen nur kurzzeitig mechanisch induzierte Einrisse der Zellmembran bestanden haben, können die dadurch ausgelösten Signalprozesse zur Induktion von Apoptose führen.

Eine gesteigerte Dehnungsfrequenz (von 40 auf 60/min) war - verglichen mit einer gesteigerten Amplitude - klar der weniger traumatische mechanische Stimulus. In dieser Versuchsgruppe (S60 - 13) fanden wir die Zahl der vitalen Zellen nach 24 h nur gering, nicht signifikant reduziert. Lediglich die Zahl der frühapoptotischen Zellen (gemessen als Annexin-V-Bindung) war nach 24 h signifikant angestiegen, und die LDH-Freisetzung war im Vergleich zum S40 - 13 Dehnungsmuster während aller Messpunkte erhöht. Mit dem zweiten, zum Nachweis früher Apoptose eingesetzten Assay, der Bestimmung der Caspase-8-Aktivität, konnte dieser Anstieg der Annexin-V-positiven/PI-negativen Zellen nach 24 h Stunden in dieser Versuchsgruppe nicht reproduziert werden. Eine Erklärung für die abweichenden Ergebnisse der beiden Tests kann eine geringere Empfindlichkeit der Caspase-8-Bestimmung sein, da die Aktivität dieses Enzyms unabhängig von Apoptose reguliert wird [21]. Erwähnenswert ist, dass es unter dem Dehnungsmuster mit erhöhter Frequenz nicht zu einem Anstieg der nekrotischen Zellen gekommen ist. Auch dieser Befund spricht dafür, dass dehnungsinduzierte Membraneinrisse den wesentlichen schädigenden Mechanismus darstellen.

Wie bereits dargestellt, entspricht eine Zunahme der Zellmembranoberfläche um 30 % ungefähr einer Inspiration von der FRC bis zu 100 % TLC [20]. Dieses Ausmaß an alveolärer Dehnung kann erreicht und sogar überschritten werden unter mechanischer Beatmung mit hohen Atemzugvolumina und bei schwerer akuter Lungenschädigung selbst unter Beatmung mit niedrigen Atemzugvolumina, wenn Derekruitment großer Lungenanteile die belüfteten Areale der Lunge deutlich reduziert hat. Die Freisetzung von Bestandteilen des Zytosols aus nekrotischen Zellen kann proinflammatorisch wirken und dadurch den Prozess der akuten Lungenschädigung unterhalten und verstärken [10] [12]. Jedoch nicht nur Nekrose, sondern auch Apoptose von ATII-Zellen trägt zu akuter Lungenschädigung bei. Durch intratracheal applizierte, Fas-aktivierende monoklonale Antikörper hervorgerufene Apoptose führt bei Mäusen zu akuter Lungenschädigung [22]. Nekrose und Apoptose von ATII-Zellen scheint eine wesentliche Verbindung zwischen mechanischem Stress und der Verstärkung akuter Lungenschädigung darzustellen.

In dieser Arbeit haben wir verschiedene Methoden eingesetzt, um die Vitalitätsparameter von ATII-Zellen zu charakterisieren: Die durchflusszytometrische Messung von Annexin-V-Bindung und PI-Färbung ist eine weit verbreitet angewendete Methode, um die Anzahl vitaler, frühapoptotischer, spätapoptotischer/nekrotischer und nekrotischer Zellen zu quantifizieren. Darüber hinaus wählten wir zwei zusätzliche Verfahren, um unsere durchflusszytometrischen Daten zu unterstreichen: Die Bestimmung der Caspase-8-Aktivität wurde gewählt, weil dieses Enzym sehr proximal in der Caspasen-Kaskade lokalisiert ist und daher ein frühes Stadium der Apoptose anzeigt. Limitiert wird diese Methode, weil dieses Enzym durch zahlreiche endogene regulatorische Proteine unabhängig von Apoptose beeinflusst wird [21]. Die Anreicherung von Oligonucleosomen im Überstand kann das Ergebnis von prälytischer DNA-Fragmentierung mit nachfolgender Freisetzung durch zelluläre Lysis in der späten Phase der Apoptose sein. Allerdings kann sie auch das Ergebnis von postlytischer DNA-Fragmentierung sein. Deshalb entspricht die Information dieser Messungen jener, die die Fraktion der durchflusszytometrisch gemessenen Annexin-V-positiven/PI-positiven Zellen liefert.

Der mechanisch induzierte Anstieg an spätapoptotischen/nekrotischen und an frühapoptotischen Zellen unter dem Dehnungsmuster S40 - 30 ist durch beide getesteten Pharmaka, durch den ACE-Hemmer Captopril und das NOS-Substrat L-Arginin, nahezu vollständig inhibierbar. Die Zahl der nekrotischen Zellen dagegen bleibt von der pharmakologischen Intervention unbeeinflusst. Captopril und L-Arginin hemmen offensichtlich die mechanisch induzierte Apoptose.

Der Prozentsatz apoptotischer Zellen war in unserer Arbeit höher als in einer vorausgegangenen Arbeit, die ein ähnliches experimentelles Modell nutzt [16]. Neben zahlreichen experimentellen Faktoren kann vor allem die Zusammensetzung des Mediums solche Unterschiede erklären. Die Autoren dieser Studie berichten ca. 5 % apoptotische Zellen unter statischen Bedingungen. Apoptose wurde in dieser Studie jedoch durch DNA-Kondensation mit dem Farbstoff Hoechst 33258, der eher späte Stadien der Apoptose detektiert, nachgewiesen. Im Gegensatz dazu verwendeten wir mit Annexin-V-Bindung einen Marker eines frühen Apoptosestadiums. Außerdem war in unseren Experimenten die FCS-Konzentration wesentlich niedriger (2 gegenüber 10 %). Dies deckt sich gut mit unserer Erfahrung, dass die FCS-Konzentration des Mediums sowohl in statischen Kontrollen als auch in zyklisch gedehnten Kulturen das Ausmaß der Apoptose erheblich bestimmt (Hammerschmidt, u. Mitarb. unpublizierte Daten). Der von Edwards u. Mitarb. [16] berichtete maximal dreifache Anstieg des Prozentsatzes apoptotischer Zellen unter zyklischer Dehnung deckt sich sehr genau mit unseren Ergebnissen. Der relative Effekt mechanischer Dehnung ist daher zwischen beiden Studien gut vergleichbar.

Zwischen 40 und 50 % nichtvitale Zellen nach nur einer Stunde zyklischer Dehnung (15/min, 25 % Zunahme der Zellmembranoberfläche) im Vergleich zu 5 bis 10 % unter statischen Bedingungen werden von einer weiteren Studie berichtet [15]. Der offensichtliche Unterschied zu den Ergebnissen unserer Arbeit und den Ergebnissen von Edwards u. Mitarb. [16] erklärt sich aus der Methode, mit der zwischen vitalen und nicht-vitalen Zellen unterschieden wird. Tote Zellen wurden mit Ethidium-Homodimer-1, welches die intakte Zellmembran lebender Zellen nicht passieren kann, detektiert. Allerdings kann dieser Farbstoff in Zellen gelangen, deren Membran nur vorübergehend geschädigt war. Die Zahl der so markierten Zellen kann die Zahl der nekrotischen Zellen, wie sie in unserer Studie mit PI gemessen wurde, deutlich übersteigen.

Stickstoffmonoxid (NO) ist ein bedeutender Bestandteil des extrazellulären Milieus, der das Ausmaß an Apoptose in ATII-Zellen beeinflussen kann. Es wird sowohl mit pro- als auch mit antiapoptotischen Effekten in Zusammenhang gebracht [23]. Edwards u. Mitarb. [16] konnten erstmalig nachweisen, dass ein NO-Donator (S-nitroso-N-acetyl-D,L-penicillamine [SNAP]) mechanisch induzierte Apoptose in ATII-Zellen hemmt. Die Autoren sehen eine physiologische Funktion von Alveolarmakrophagen darin, über die Freisetzung von NO die ATII-Zellen vor mechanisch induzierter Apoptose zu schützen. Wir konnten belegen, dass auch das physiologische Substrat der NOS, L-Arginin, mechanisch induzierte Apoptose von ATII-Zellen in vergleichbarer Weise verhindert. Diese Beobachtung lässt vermuten, dass NO in unseren Versuchen durch eine NOS der ATII-Zellen freigesetzt wurde. Die myokardiale Caspase-3 wird durch endogenes NO inhibiert [24], so dass auch in unserem Modell Caspase-Inhibition durch NO einen möglichen Mechanismus darstellt, der den antiapoptotischen Effekt von L-Arginin erklären könnte. Die induzierbare NOS (iNOS), die durch inflammatorische Zytokine oder LPS induziert wird [25], könnte ebenso durch mechanische Dehnung induziert werden. Alveoläre Dehnung durch mechanische Beatmung konnte in verschiedenen experimentellen Modellen mit alveolärer NO-Freisetzung in Zusammenhang gebracht werden [26] [27]. Auch klinische Daten von beatmeten Patienten mit akuter Lungenschädigung demonstrieren einen Zusammenhang zwischen alveolärer Dehnung und NO-Freisetzung [28]. Insgesamt unterstützen diese Ergebnisse unsere Hypothese, dass starke Dehnung alveolärer Strukturen ATII Zell-Apoptose induziert und gleichzeitig dazu, mit der Freisetzung von NO, einen antiapoptotischen Mediator stimuliert.

Weitere Gruppen von Substanzen, deren antiapoptotische Wirkung auf ATII-Zellen nachgewiesen ist, stellen die ACE-Hemmer und die Angiotensin-III-Rezeptorantagonisten dar. Beide Substanzgruppen beeinflussen Apoptose beispielsweise an Herzmuskelzellen, renalen Tubulsepithelien und vaskulären glatten Muskelzellen [29] [30] [31]. Sie inhibieren Fas-Ligand induzierte Apoptose von ATII-Zellen [32]. In unserem Modell inhibierte der ACE-Hemmer Captopril ebenso die mechanisch induzierte Apoptose von ATII-Zellen. Da in den Überständen der gedehnten Zellen Angiotensin-II nicht nachweisbar war, müssen wir vermuten, dass die Umwandlung von Angiotensin-I zu Angiotensin-II an der Auslösung der mechanisch induzierten Apoptose nicht beteiligt ist. Vielmehr könnte der ACE-Hemmer auch als Inhibitor anderer Serinproteasen wirken. Außerdem könnten die antiapoptotischen Effekte von NO und ACE-Hemmern auch im Zusammenhang stehen: Im kardiovaskulären System werden die Wirkungen von ACE-Hemmern zumindest teilweise über die Verhinderung des enzymatischen Abbaus von Bradykinin vermittelt. Bradykinin aktiviert in Endothelzellen die endotheliale NOS und kann dadurch zur NO-Freisetzung führen [33].

Mit beiden von uns vorgenommenen pharmakologischen Interventionen konnte die mechanisch induzierte Apoptose, nicht jedoch die Nekrose beeinflusst werden. Dies legt die Vermutung nahe, dass Captopril und L-Arginin den Ablauf der Apoptose beeinflussen, ohne jedoch effektiv zu sein, wenn die mechanisch induzierte Zellmembranschädigung einen kritischen Punkt überschritten hat, was dann zu nekrotischem Zelltod führt.

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