Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2021; 49(02): 101-111
DOI: 10.1055/a-1364-4884
Originalartikel

Untersuchungen zum Ausscheidungsverhalten von Antibiotika in Ziegenmilch nach therapeutischer Applikation

Investigations on the excretion of antibiotics in goats’ milk following therapeutic application
Miriam Schroeder
1   Institut für Lebensmittelqualität und -sicherheit, Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover
2   Klinik für Geburtshilfe, Gynäkologie und Andrologie der Groß- und Kleintiere mit Tierärztlicher Ambulanz, Justus-Liebig-Universität Gießen
,
Henrik Wagner
2   Klinik für Geburtshilfe, Gynäkologie und Andrologie der Groß- und Kleintiere mit Tierärztlicher Ambulanz, Justus-Liebig-Universität Gießen
,
Ewald Usleber
3   Professur für Milchwissenschaften, Justus-Liebig-Universität Gießen
,
Axel Wehrend
2   Klinik für Geburtshilfe, Gynäkologie und Andrologie der Groß- und Kleintiere mit Tierärztlicher Ambulanz, Justus-Liebig-Universität Gießen
,
Madeleine Plötz
1   Institut für Lebensmittelqualität und -sicherheit, Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover
› Author Affiliations

Zusammenfassung

Gegenstand und Ziel Zum Ausscheidungsverhalten von Antibiotika in Milch nach therapeutischer Applikation bei klinisch erkrankten Ziegen liegen keine Daten vor. In dieser Studie wurden daher in 2 Ziegenmilch-Betrieben in einem Zeitraum von 4 Monaten Hälftengemelksproben aller im Routinebetrieb klinisch erkrankter und daraufhin mit Antibiotika behandelter Tiere bis 3 Tage nach Ablauf der Wartezeit auf Rückstände untersucht.

Material und Methoden Entsprechend den eingesetzten Präparate ergaben sich 3 Behandlungsgruppen. Tiere der Gruppe 1 (n = 5; bakterielle Infektionen exklusive Mastitis) waren intramuskulär mit Amoxicillin behandelt worden. Bei Tieren der Gruppe 2 (n = 6) lag eine akute katarrhalische Mastitis vor, die mit Oxacillin und Ampicillin intramammär behandelt worden war. Bei Gruppe 3 handelte es sich um eine einzelne Ziege mit bakteriell bedingter Mastitis, die, nach erfolgloser Behandlung mit Oxacillin/Ampicillin, gemäß eines Antibiogramms Cefquinom intramammär erhalten hatte. Die Milchproben wurden vergleichend mit 2 Testsytemen (Rezeptor-Schnelltest, Betastar®; Brillantschwarz-Reduktionstest, BRT) qualitativ bzw. teilweise auch semiquantitativ auf Rückstände untersucht.

Ergebnisse Mittels BRT bzw. Betastar® konnten alle Wirkstoffe im Bereich der Rückstandshöchstmengen (Maximum Residue Limits, MRL) nachgewiesen werden. In Gruppe 1 zeigten jeweils beide Euterhälften ähnliche Ausscheidungsverhältnisse. Amoxicillin war meist nur 1 Tag, maximal 3 Tage nach Behandlungsende nachweisbar. In den Gruppen 2 und 3 (intramammäre Applikation in eine Euterhälfte) zeigten sich erhebliche Konzentrationsunterschiede zwischen behandelter und unbehandelter Hälfte, doch wiesen auch Milchproben der unbehandelten Euterhälften im Behandlungszeitraum Gehalte deutlich über den MRLs auf. Rückstände waren in beiden Gruppen maximal 4 Tage nach Behandlungsende nachweisbar.

Klinische Relevanz Es ergaben sich keine Hinweise auf eine verlängerte Ausscheidung der geprüften Antibiotika bei klinisch kranken Ziegen, die Wartezeiten waren zur Sicherstellung der Rückstandsfreiheit ausreichend. Die eingesetzten Testsysteme erwiesen sich als gut geeignet zur Rückstandskontrolle von Ziegenmilch nach therapeutischer Applikation. Lediglich bei stark verändertem Milchsekret konnten teilweise keine auswertbaren Ergebnisse erzielt werden.

Abstract

Objective Data on the excretion of antibiotic residues following therapeutic drug dosages in lactating goats with clinical signs of bacterial infections are currently lacking. Therefore, this study aimed at monitoring the drug residue excretion of a subset of frequently used antibiotics in the milk of dairy goats following their therapeutic administration.

Material and methods Over a period of 4 months, milk samples (udder halves) were collected in 2 goat milk farms from animals treated with antibiotics in routine practice based on the diagnosis of a bacterial infection. The samples were examined up to 3 days following the withdrawal time point. The animals were classified in 3 groups depending on their clinical symptoms and treatment. Goats in group 1 (afebrile goats with various bacterial infections excluding the udder) were treated with intramuscular amoxicillin injection (n = 5). Animals in group 2 (mastitis catarrhalis) were treated with intramammary injection of oxacillin and ampicillin (n = 6). Group 3 consisted of a single goat diagnosed with mastitis. This individual was treated with cefquinome in accordance with the results of the antibiogram. Milk samples were examined qualitatively by using a receptor assay (Betastar®) as well as a microbiological inhibitor assay (Brilliant black reduction test, BRT). The latter assay was also used to semiquanti-tatively analyse drug residue levels in samples from group 2.

Results Following intramuscular treatment with amoxicillin, drug residue levels were estimated to be very similar in both udder halfs. Elimination was complete 3 days after the end of the treatment period. Animals in group 2 showed significant differences between treated and untreated udder halves. However, the untreated halves still exhibited residue levels exceeding the maximum residue limits during the treatment period. In both group 2 and 3, all milk samples were tested negative for drug residues before the end of the withdrawal period.

Conclusion In the present study, no evidence of prolonged residue excretion into milk of goats following therapeutic administration of antibiotics was detected. Both the receptor test and the BRT represent suitable methods for an efficient antibiotic drug residue testing in goat milk. Reliable testing was merely not attainable in cases of milk samples possessing highly altered organoleptic characteristics.



Publication History

Received: 22 April 2020

Accepted: 24 September 2020

Article published online:
26 April 2021

© 2021. Thieme. All rights reserved.

Georg Thieme Verlag KG
Rüdigerstraße 14, 70469 Stuttgart, Germany

 
  • Literatur

  • 1 Beltrán MC, Borràs M, Nagel O. et al. Validation of receptor-binding assays to detect antibiotics in goat’s milk. J Food Protect 2014; 77: 308-313
  • 2 Beltrán MC, Althaus RL, Berruga MI. et al. Detection of antibiotics in sheep milk by receptor-binding assays. Int Dairy J 2014; 34: 184-189
  • 3 Beltrán MC, Berruga MI, Molina A. et al. Performance of current microbial tests for screening antibiotics in sheep and goat milk. Int Dairy J 2015; 41: 13-15
  • 4 Beltrán MC, Althaus RL, Molina A. et al. Analytical strategy for the detection of antibiotic residues in sheep and goat’s milk. Span J Agric Res 2015; 13: e05-001
  • 5 Berendsen BJA, Elbers IJW, Stolker AAM. Determination of the stability of antibiotics in matrix and reference solutions using a straightforward procedure applying mass spectrometric detection. Food Addit Contam Part A Chem Anal Control Expo Risk Assess 2011; 28 (12) 1657-1666
  • 6 Berruga MI, Molina MP, Novés B. et al. In vitro study about the effect of several penicillins during the fermentation of yogurt made from ewe’s milk. Milchwissensch 2007; 62: 303-305
  • 7 Berruga MI, Molina A, Althaus RL. et al. Control and prevention of antibiotic residues and contaminants in sheep and goat’s milk. Small Rumin Res 2016; 142: 38-43
  • 8 Communian R, Paba A, Dupré E. et al. Evaluation of a microbiological indicator test for antibiotic detection in ewe and goat milk. J Dairy Sci 2010; 93: 5644-5650
  • 9 Contreras A, Luengo C, Sánchez A. et al. The role of intramammary pathogens in dairy goats. Livestock Prod Sci 2003; 79: 273-283
  • 10 Contreras A, Sierra D, Sánchez A. et al. Mastitis in small ruminants. Small Rumin Res 2007; 68: 145-53
  • 11 Dolhan A, Jelinska A, Manuszewska M. Stability of ceftiofur sodium and cefquinome sulphate in intravenous solutions. Scientific World Journal. 2014 Article ID 583461
  • 12 Europäische Kommission Verordnung (EU) Nr. 37/2010 der Kommission vom 22. Dezember 2009 über pharmakologisch wirksame Stoffe und ihre Einstufung hinsichtlich der Rückstandshöchstmengen in Lebensmitteln tierischen Ursprungs. Amtsbl Eur Union 2010; L15: 1–72
  • 13 Europäische Union Verordnung (EU) 2019/6 des Europäischen Parlaments und des Rates vom 11. Dezember 2018 über Tierarzneimittel und zur Aufhebung der Richtlinie 2001/82/EG. Amtsbl Eur Union. 2019 L4 43-167
  • 14 FAOSTAT. http://www.fao.org/faostat Suche nach “Milk, whole fresh goat, Germany, production quantity, 2018”. Stand: 12.04.2020
  • 15 Ferrini AM, Trenta S, Mannoni V. et al. Depletion of long-acting ampicillin in goat milk following intramuscular administration. J Agric Food Chem 2010; 58: 12199-12203
  • 16 Karzis J, Donkin EF, Petzer IM. Intramammary antibiotics in dairy goats: withdrawal periods of three intramammary antibiotics compared to recommended withdrawal periods for cows. Onderstepoort J Vet Res 2007; 74: 217-222
  • 17 Karzis J, Donkin EF, Petzer IM. Intramammary antibiotics in dairy goats: effect of stage of lactation, parity and milk volume on withdrawal periods, and the effect of treatment on milk compositional quality. Onderstepoort J Vet Res 2007; 74: 243-249
  • 18 Kress C, Seidler C, Kerp B. et al. Experiences with an identification and quantification program for inhibitor-positive milk samples. Anal Chim Acta 2007; 586: 275-279
  • 19 Kress C, Schneider E, Usleber E. Determination of penicillin and benzylpenicilloic acid in goat milk by enzyme immunoassays. Small Rumin Res 2011; 96: 160-164
  • 20 Manek G, Simandtke C, Sporkmann K. et al. Systemanalyse der Schaf- und Ziegenmilchproduktion in Deutschland. 2019 https://www.orgprints.org/31288/ Stand: 07.09.2020
  • 21 Odenthal S, Akineden O, Usleber E. Extended-spectrum beta-lactamase producing Enterobacteriaceae in bulk tank milk from German dairy farms. Int J Food Microbiol 2016; 238: 72-78
  • 22 Packham W, Broome MC, Limsowtin GKY. et al. Limitations of standard antibiotic screening assays when applied to milk for cheesemaking. Aust J Dairy Technol 2001; 56: 15-18
  • 23 Riediker S, Ryth A, Stadler RH. Cold-temperature stability of five β-lactam antibiotics in bovine milk and milk extracts prepared for liquid chromatography-electrospray ionization tandem mass spectrometry analysis. J Chromatogr A 2004; 1054: 359-363
  • 24 Rozanska H, Osek J. Stability of antibiotics in milk samples during storage. Bull Vet Inst Pulawy 2013; 57: 347-349
  • 25 Sierra D, Sánchez A, Contreras A. et al. Detection limits of four antimicrobial residue screening tests for beta-lactams in goat’s milk. J Dairy Sci 2009; 92: 3585-3591
  • 26 Sierra D, Sánchez A, Contreras A. et al. Detection limits of non-beta-lactam antibiotics in goat’s milk by microbiological residues screening tests. J Dairy Sci 2009; 92: 4200-4206
  • 27 Statistisches Bundesamt. Rund 140 000 Ziegen und 440 000 Einhufer in Deutschland. 2020 https://www.destatis.de/DE/Themen/Branchen-Unternehmen/Landwirtschaft-Forstwirtschaft-Fischerei/Tiere-Tierische-Erzeugung/sonstige-nutztiere.html Stand: 07.09.2020
  • 28 Strasser A, Usleber E, Schneider E. et al. Improved enzyme immunoassay for group-specific determination of penicillins in milk. Food Agric Immunol 2003; 15: 135-143
  • 29 Thal J, Steffen M, Meier B. et al. Development of an enzyme immunoassay for the antibiotic cefquinome and its application for residue determination in cow’s milk after therapeutical mastitis treatment. Anal Bioanal Chem 2011; 399: 1051-1059
  • 30 Zeng SS, Hart S, Escobar EN. et al. Validation of antibiotic residue tests for dairy goats. J Food Protect 1998; 61: 344-349