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Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2012; 40(02): 77-84
DOI: 10.1055/s-0038-1623106
Originalartikel
Schattauer GmbH

Untersuchungen zur postkolostralen Immunglobulin-G-Versorgung neugeborener Saugferkel mittels unterschiedlicher ELISA-Nachweissysteme

Investigation on the immunoglobulin G (IgG) levels in newborn piglets by use of three different ELISA tests
A. Pausenberger
1   Lehrstuhl für Tierschutz, Verhaltenskunde, Tierhygiene und Tierhaltung, Tierärztliche Fakultät der Ludwig-Maximilians-Universität München
,
K. Schuster
1   Lehrstuhl für Tierschutz, Verhaltenskunde, Tierhygiene und Tierhaltung, Tierärztliche Fakultät der Ludwig-Maximilians-Universität München
,
M. H. Erhard
1   Lehrstuhl für Tierschutz, Verhaltenskunde, Tierhygiene und Tierhaltung, Tierärztliche Fakultät der Ludwig-Maximilians-Universität München
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Weitere Informationen

Publikationsverlauf

Eingegangen: 26. August 2011

Akzeptiert nach Revision: 04. Januar 2012

Publikationsdatum:
06. Januar 2018 (online)

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Zusammenfassung

Gegenstand und Ziel: Überprüft werden sollte die Anwenderfreundlichkeit, Praxistauglichkeit und Vergleichbarkeit der Ergebnisse des Colostrum Quality Counter (CQC), einer neuen Untersuchungsmethode für die postkolostrale Immunglobulin-G-(IgG-)Versorgung beim Saugferkel. Material und Methode: Blutproben von insgesamt 219 Saugferkeln aus vier Betrieben wurden mit drei verschiedenen ELISA-Testsystemen auf ihre IgG-Konzentrationen untersucht. Bei 30 Saugferkeln wurden darüber hinaus die IgG-Konzentrationen aus zentralvenös und peripher entnommenem Blut mit zwei Testsystemen bestimmt und verglichen. Zum Einsatz kamen der Colostrum Quality Counter (CQC, FarmulaONE, NL-Best), der interne IgG-ELISA des eigenen Lehrstuhls (MUC) und ein kommerziell erhältlicher IgG-ELISA (NAT; NatuTec, Frankfurt/Main). Ergebnisse: Die Einzelwerte aller drei Tests wichen deutlich voneinander ab, wobei MUC und NAT deutlich höhere Korrelationen zueinander aufwiesen als zum CQC. Die Messwerte des CQC lagen insgesamt deutlich höher und wiesen eine wesentlich größere Streuung auf. Die aus zentralvenösem und peripherem Blut ermittelten Messwerte differierten nicht signifikant. Klinische Relevanz: Der CQC ermöglicht eine einfache Probennahme auch bei größeren Strichprobenzahlen. Die Ergebnisse waren individuell sehr unterschiedlich mit einigen ungewöhnlich hohen Werten. MUC und NAT lieferten miteinander vergleichbare Messresultate und die bestimmten IgG-Konzentrationen zeigten eine deutliche Korrelation zueinander.

Summary

Objective of the study was to evaluate whether the Colostrum Quality Counter (CQC), a new test method for immunoglobulin G (IgG) levels in newborn piglets, is easy to handle and provides comparable results to established testing regimes. Material and methods: Blood samples from 219 piglets from four different farms were tested for their IgG-concentrations using three different ELISA tests. Furthermore, double samples from 30 piglets were taken from both the anterior vena cava and from the tail to determine whether the collection site affects the results. The three tests used were the Colostrum Quality Counter (CQC; FarmulaONE, NL-Best), the internal IgG-ELISA from our laboratory (MUC) and a commercially-available IgG-ELISA (NAT; NatuTec, Frankfurt/Main, Germany). Results: MUC and NAT showed a higher correlation to each other than to the CQC when referring to the individual results per single piglet. The results from the CQC were higher and the standard deviation was significantly greater. The sampling site had no significant effect on the IgG concentrations measured. Clinical relevance: The CQC is a straightforward and simple test, being very convenient for sampling a large number of piglets. CQC results were inhomogeneous with some unusually high IgG-concentrations. MUC and NAT provided comparable results to one another and the IgG-concentrations showed a good correlation.

Schlüsselwörter

Schwein - Saugferkel - ELISA-Diagnostik - maternale Antikörper - Immunglobulin G

Key words

Swine - suckling piglets - ELISA diagnostics - maternal antibodies - immunoglobulin G
 

  • Literatur

  • 1 Agrarministerkonferenz: Top 22 Kupieren der Schwänze von neugeborenen Ferkeln. 2010
    PubMedGoogle Scholar
  • 2 Bender P, Bostedt H. Determination of IgG and IgM levels in sera of newborn calves until the 10th day of life by ELISA and description of their correlation to total plasma protein concentration and GGT activity. Dtsch Tierärztl Wochenschr 2009; 116: 44-52.
    PubMedGoogle Scholar
  • 3 Bianchi ATJ, Moonen-Leusen HW, Bokhout BA. The use of a double antibody sandwich ELISA and monoclonal antibodies for the assessment of porcine IgM, IgG and IgA concentrations. Vet Immunol Immunopathol 1995; 44: 309-317.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 4 Bland IM, Rooke JA, Bland VC, Sinclair AG, Edwards SA. Appearance of immunoglobulin G in the plasma of piglets following intake of colostrum, with or without a delay in suckling. Anim Sci 2003; 77: 277-286.
    PubMedGoogle Scholar
  • 5 BMVEL, Bundesministerium für Verbraucherschutz, Ernährung und Tierschutz. Tierschutzgesetz (TierSchG) in der Fassung der Bekanntmachung vom 18. Mai 2006 (BGBl. l S. 1206, 1313), zuletzt geändert durch Artikel 20 des Gesetzes vom 9. Dezember 2010. (BGBl. l S. 1934)
    PubMedGoogle Scholar
  • 6 Bourne FJ, Newby TJ, Evans P, Morgan K. The immune requirements of the newborn pig and calf. Ann Rech Vét 1978; 9 (02) 239-244.
    PubMedGoogle Scholar
  • 7 Brambell FW. The transmission of immune globulins from the mother to the foetal and newborn young. Proc Nut Soc 1969; 28: 35-41.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 8 Curtis J, Bourne FJ. Immunoglobulin quantitation in sow serum, colostrum an milk and the serum of young pigs. Biochim Biophys Acta 1971; 236 (01) 319-332.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 9 De Passille AMB, Rushen J, Pelletier G. Sucking behaviour an serum immunoglobulin levels in neonatal piglets. Anim Prod 1988; 47: 447-456.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 10 EFSA – European Food Safety Authority. The risks associated with tail biting in pigs and possible means to reduce the need for tail docking considering the different housing and husbandry systems. The EFSA Journal 2007; 611: 1-13.
    PubMedGoogle Scholar
  • 11 Fahey JL, McKelvey EM. Quantitative determination of serum immunoglobulins in antibody-agar plates. J Immunol 1965; 94: 84-90.
    PubMedGoogle Scholar
  • 12 Frenyo VL, Pethes G, Antal T, Szabo I. Changes in colostral and Serum IgG content in swine in relation to time. Vet Res Commun 1980; 81 4: 275-282.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 13 Hendrix WF, Kelley KW, Gaskins CT, Hinrichs DJ. Porcine neonatal survival and serum gamma globulins. J Anim Sci 1978; 47: 1281-1286.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 14 Klobasa F, Werhahn E, Butler IE. Regulation of humoral immunity in the piglet by immunoglobulins of maternal origin. Res Vet Sci 1981; 31: 195-296.
    PubMedGoogle Scholar
  • 15 Klobasa F, Werhahn E, Habe F. Untersuchungen über die Absorption der kolostralen Immunglobuline bei neugeborenen Ferkeln III. Mitteilung: Einfluß der Verabreichungsdauer der Kolostralmilch. Berl Münch Tierärztl Wschr 1991; 104 (07) 223-227.
    PubMedGoogle Scholar
  • 16 Klobasa F, Schröder C, Stroot C, Henning M. Untersuchungen zur passiven Immunisierung neugeborener Ferkel bei natürlicher Aufzucht – Einflüsse von Geburtsreihenfolge, Geburtsgewicht, Wurfgröße und Wurfnummer. Berl Münch Tierärztl Wschr 2004; 117: 19-23.
    PubMedGoogle Scholar
  • 17 Kuhn G, Ender K, Thomann R, Tuchscherer M, Tuchscherer A, Stabenow B, Krüger M, Schrödl W. Einsatz von Echinacea-Extrakt bei tragenden und säugenden Sauen. Arch Tierz Dummerstorf 2005; 48 (03) 270-282.
    PubMedGoogle Scholar
  • 18 Mancini G, Carbonara AO, Heremans JF. Immunochemical quantitation of antigens by single radial immunodiffusion. Immunochem 1965; 2: 235-254.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 19 Milon A, Aumaitre A, Le Dividich J, Franz J, Metzger JJ. Influence of birth prematurity on colostrum composition and subsequent immunity of piglets. Ann Rech Vet 1983; 14 (04) 533-540.
    PubMedGoogle Scholar
  • 20 Morrow-Tesch JL, McGlone JJ, Salak-Johnson JL. Heat and social stress effects on pig immune measures. J Anim Sci 1994; 72: 2599-2609
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 21 Niekamp SR, Sutherland MA, Dahl GE, Salak-Johnson JL. Photoperiod influences the immune status of multiparous pregnant sows and their piglets. J Anim Sci 2006; 84: 2072-2082.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 22 Nielsen JP, Kjaersgaard HD, Kristensen CS. Colostrum uptake-effect on health and daily gain until slaughter. Proc. IPVS Hamburg. Germany: 2004 2..
    PubMedGoogle Scholar
  • 23 Porter P. Transfer of immunoglobulins IgG, IgA and IgM to lacteal secretions in the parturient sow and their absorption by the neonatal piglet. Biochim Biophys Acta 1969; 181 (02) 381-392.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 24 Rooke JA, Carranca C, Bland IM, Sinclair AG, Ewen M, Bland VC, Edwards SA. Relationships between passive absorption of immunoglobulin G by the piglet and plasma concentrations of immunoglobulin G at weaning. Livest Prod Sci 2003; 81: 223-234.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 25 Rooke JA, Bland IM. The acquisition of passive immunity in the new-born piglet. Livest Prod Sci 2002; 78: 13-23.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 26 Svendsen J, Weström BR, Olsson A-Ch. Intestinal macromolecular transmission in newborn pigs: implications for management of neonatal pig survival and health. Livest Prod Sci 2005; 97: 183-191.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 27 Tuchscherer M, Kanitz E, Otten W, Tuchscherer A. Effects of prenatal stress on cellular and humoral immune responses in neonatal pigs. Vet Immunol Immunopathol 2002; 86: 195-203.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 28 Varley MA, Rucklidge GJ, Wilkinson RJ, Maitland A. Enzyme-linked immunosorbent assay for the measurement of immunoglobulin G concentrations in porcine plasma and colostrum. Res Vet Sci 1985; 38: 279-281.
    PubMedGoogle Scholar
  • 29 Varley MA, Wilkinson RJ, Maitland A. Artificial rearing of baby piglets: the effect of colostrum on survival and plasma concentrations of IgG. Brit Vet J 1987; 143: 369.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 30 Werhahn E, Werhahn F, Klobasa F, Butler JE. Investigation of some factors which influence the absorption of IgG by the neonatal piglet. Vet Immunol Immunopathol 1981; 2 (01) 35-51.
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 31 Yabiki T, Kashiwazaki M, Namioka S. Quantitative analysis of three classes of immunoglobulins in serum of newborn pigs and milk of sows. Am J Vet Res 1974; 35: 12.
    PubMedGoogle Scholar