Aktuelle Konzepte zum mikrobiologischen Nachweis von Atemwegserregern

Einleitung

Im Folgenden werden die wichtigsten Erreger von Infektionen der Atemwege sowie mikrobiologische Methoden und deren Bewertung zu ihrer Diagnostik dargestellt. Keine Berücksichtigung in der vorliegenden Zusammenfassung finden Infektionserreger beim immunsupprimierten Patienten und bei Patienten mit zystischer Fibose. Die Ausführungen basieren weitgehend auf der „S3-Leitlinie der Paul-Ehrlich-Gesellschaft für Chemotherapie, der Deutschen Gesellschaft für Pneumologie, der Deutschen Gesellschaft für Infektiologie und vom Kompetenznetzwerk CAPNETZ zu Epidemiologie, Diagnostik, antimikrobieller Therapie und Management von erwachsenen Patienten mit ambulant erworbenen tiefen Atemwegsinfektionen (akute Bronchitis, akute Exazerbation einer chronischen Bronchitis, Influenza und andere respiratorische Virusinfektionen) sowie ambulant erworbener Pneumonie” [1].

Streptococcus pneumoniae

S. pneumoniae sind grampositive Diplokokken, die bei 10 – 20 % der gesunden Bevölkerung in der physiologischen oropharyngealen Flora als kolonisierende Bakterien nachgewiesen werden können. Sie haben bei Atemwegsinfektionen eine herausragende Bedeutung: Pneumokokken sind die mit Abstand häufigsten Erreger der ambulant erwobenen Pneumonie [2] und werden auch bei der frühen (innerhalb der ersten 5 – 7 Tage nach stationärer Aufnahme) nosokomialen Pneumonie und bei der akuten Exazerbation einer chronischen Bronchitis regelmäßig isoliert.

Diagnostische Verfahren

Zum Nachweis einer S. pneumoniae-Infektion der Atemwege stehen folgende Verfahren zur Verfügung:

• Beurteilung des Grampräparates aus Proben der unteren Atemwege: Sensitivität und Spezifität sind abhängig von der Qualität der untersuchten Probe, der Transportzeit bis zur Untersuchung und der Erfahrung des Untersuchers; sie betragen bis zu ca. 80 %. Ein Vorteil der Untersuchung liegt im raschen Vorliegen des Testergebnisses.

• Kulturelle Anzucht von S. pneumoniae aus Proben der unteren Atemwege, aus Blutkulturen und Pleuraflüssigkeit mittels mikrobiologischer Standardverfahren: Der Nachweis aus sterilen Körperflüssigkeiten ist für eine Infektion beweisend. Die Sensitivität der Kultur aus Blut oder Pleurapunktat wird mit 10 – 30 % angegeben.

• Pneumokokken-Antigentest im Urin (Binax NOW):
  Dieser Test, dessen Ergebnis innerhalb von weniger als 30 Minuten vorliegt, ist ein immunchromatografischer Membrantest, der das Pneumokokken-Zellwand-Polysaccharid (C-Substanz, nicht identisch mit dem Kapselpolysaccharid) nachweist. Das Antigen ist bei allen Serotypen von S. pneumoniae, aber auch bei S. oralis und S. mitis vorhanden [3].

Der Test hat, verglichen mit konventionellen diagnostischen Methoden, bei Erwachsenen eine Sensitivität von 50 bis 80 % sowie eine Spezifität von ca. 90 % [4]. Wenn als Goldstandard eine „positive Pneumokokkenkultur in respiratorischen Sekreten” zum Nachweis einer Pneumonie durch S. pneumoniae definiert wird, beträgt die Sensitivität allerdings nur 54 % [5]. Bei allen publizierten Angaben zur Sensitivität ist zu beachten, dass als „Goldstandard” immer die verfügbaren klassischen Methoden herangezogen werden. Da diese nie 100 %ig sensitiv sind, muss ein Teil der „falsch-positiven” Ergebnisse als „richtig” eingestuft werden. Die nicht ausreichende diagnostische Genauigkeit des Tests schließt daher bei negativem Testergebnis eine Pneumonie durch S. pneumoniae nicht aus bzw. bei einem positiven Ergebnis kann, wenn auch selten, ein falsch-positives Resultat vorliegen. Der Test wird daher zur Routinediagnostik bei ambulant erworbener Pneumonie, bei nosokomialer Pneumonie bzw. bei akuter Exazerbation einer chronischen Bronchitis nicht generell empfohlen. Dieses Vorgehen hat allerdings nur dann Gültigkeit, wenn die empirische Initialtherapie dieser Infektionen ein Pneumokokken-wirksames Antibiotikum beinhaltet [1] [6] [7]. Der Test kann dagegen eingesetzt werden, wenn bereits eine Therapie begonnen wurde, und so zur diagnostischen Klärung beitragen.

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 1])

Eine Sputumuntersuchung auf respiratorische Erreger inkl. S. pneumoniae mit Anfertigung eines Gram-Präparates und einer konventionellen Kultur sollte nur durchgeführt werden, wenn folgende Kriterien erfüllt sind:

• umgehende Bearbeitung der Proben innerhalb von 2 Stunden im Labor sowie

• ausreichende mikroskopische Sputumqualität (> 25 Granulozyten und < 10 Plattenepithelien pro Gesichtsfeld bei 100-facher Vergrößerung) [1].

Sie wird empfohlen

• bei hospitalisierten Patienten mit akuter Exazerbation einer chronischen Bronchitis,

• bei Patienten mit ambulant-erworbener Pneumonie (im ambulanten Bereich oder hospitalisiert) mit Verdacht auf resistente oder ungewöhnliche Erreger,

• bei Patienten mit nosokomialer Pneumonie.

Die Entnahme von Blutkulturen wird empfohlen

• bei Patienten mit schwerer ambulant erworbener Pneumonie,

• bei Patienten mit nosokomialer Pneumonie.

Der Pneumokokken-Antigentest bedarf einer kritischen Interpretation und wird im Rahmen der Routinediagnostik nicht generell empfohlen.

Kontaktadresse

Nationales Referenzzentrum für Streptokokken/Pneumokokken: Ansprechpartner Prof. Rudolf Lütticken, Institut für Mikrobiologie RWTH Aachen, Pauwelstr. 30, 52057 Aachen, Tel.: [phone], www.streptococcus.de.

Tab. 1 Übersicht über diagnostische Verfahren von Atemwegserregern I.

Erreger	Mikroskopie*	Kultur**	Nukleinsäure-amplifikations-verfahren	Antigen- Nachweis	Serologie	Sonstiges
S. pneumoniae	Grampräparat (grampositiv)	Standardverfahren	n. v.***	Pneumokokken- Antigentest Sens. 50 – 80 % Spez. > 90 %	n. v.	häufigster Atemwegserreger bei AECOPD, CAP, frühe NAP****
H. influenzae	Grampräparat (gramnegativ)	Standardverfahren	n. v.	n. v.	n. v.	häufiger Erreger bei AECOPD, selten bei CAP, frühe NAP****
M. pneumoniae	n. v.	n. v.	gute Genauigkeit, nicht validiert	n. v.	IgM-Nachweis Sens. > 90 % Spez. 100 %	IgM bei protrahierter Symptomatik einer CAP; < 10 % bei CAP
L. pneumophila	n. v.	Spezialnährböden, Sens. 10 – 80 % Spez. 100 %	Real-time PCR Sens. > 90 % Spez. > 90 %	Legionella-Ag Test Sens. 75 – 90 % Spez. > 99 %	nicht empfohlen, da sowohl falsch-positiv als auch -negativ	überwiegend Pneumonie-Erreger (außer bei Pontiac-Fieber), < 10 % bei CAP
C. pneumoniae	n. v.	n. v.	gute Genauigkeit, nicht validiert	keine Routine-diagnostik	nicht empfohlen	seltener Erreger bei Atemwegsinfektionen, Bedeutung überschätzt
* aus respiratorischen Materialien wie Sputum, bronchoalveolärer Lavage; **aus Atemwegsmaterialien wie Sputum, Bronchialspülung, bronchoalveolärer Lavage, Gewebe; *** nicht verfügbar; **** AECOPD akute Exazerbation einer chronisch-obstruktiven Bronchitis, CAP ambulant erworbene Pneumonie, NAP frühe nosokomiale Pneumonie (Beginn Tag 3–5 nach Aufnahme).

Haemophilus influenzae

H. influenzae sind kleine, pleomorphe, gramnegative Stäbchen. Sie sind ein Haupterreger bei bakteriellen Exazerbationen einer chronischen Bronchitis und spielen eine Rolle als Erreger der ambulant erworbenen Pneumonie (Häufigkeit nach den CAPNETZ-Daten < 10 %) [2] sowie auch der frühen nosokomialen Pneumonie.

Diagnostische Verfahren

Zum Nachweis von H. influenzae stehen die Beurteilung des Grampräparates aus Proben der unteren Atemwege und die kulturelle Anzucht aus Proben der unteren Atemwege, Blut und Pleuraflüssigkeit zur Verfügung.

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 1])

Die Empfehlungen zur mikrobiologischen Diagnostik tiefer Atemwegsmaterialien entsprechen denen bei Pneumokokken.

Kontaktadresse

Konsiliarlabor Haemophilus, Ansprechpartner Prof. Mathias Frosch, Institut für Hygiene und Mikrobiologie Würzburg, Josef-Schneider-Str. 2, 97080 Würzburg, Tel.: [phone], www.haemophilus-online.de.

Mycoplasma pneumoniae

M. pneumoniae ist ein zellwandloses Bakterium, das sich auf Nährmedien nur schwer anzüchten lässt. Es ist ein Erreger der ambulant erworbenen Pneumonie (Häufigkeit nach den CAPNETZ Daten < 10 %) [2]. Mykoplasmen haben eine zu vernachlässigende Bedeutung als Pathogen der nosokomialen Pneumonie. Ihre klinische Relevanz bei der akuten Exazerbation einer chronischen Bronchitis ist unsicher und wird eher als unbedeutend eingeschätzt [1] [9].

Diagnostische Verfahren

Kultur

Aufgrund des technischen Aufwandes, der Dauer und der im Vergleich zu molekularbiologischen Methoden geringeren Nachweisrate aus respiratorischen Sekreten spielt die Kultur für die klinische Diagnostik einer M.-pneumoniae-Infektion keine Rolle [1] [8].

Serologie

Für die serologische Diagnostik stehen folgende Testverfahren zur Verfügung:

• die Komplementbindungsreaktion, die keine ausreichende Sensitivität und Spezifität aufweist [10] und nicht mehr eingesetzt werden sollte

• der Nachweis von Kälte-Agglutininen, der mit dem Schweregrad der Erkrankung korreliert, aber eine ungenügende Genauigkeit besitzt [11]

• der Nachweis von IgG-, IgM- und IgA-Antikörpern mittels Enzymimmunoassay (EIA), wobei verschiedene kommerzielle EIA-Testverfahren zur Verfügung stehen. Da IgM-Antikörper häufig nur bei Kindern und jungen Erwachsenen nach Erstkontakt mit M. pneumoniae auftreten, schließt ein negativer IgM-Nachweis eine M.-pneumoniae-Infektion, insbesondere bei älteren Erwachsenen, nicht aus. Bei länger bestehender (> 12 Tage) klinischer Symptomatik einer ambulant erworbenen Pneumonie ist die Sensitivität und Spezifität eines IgM- Nachweises signifikant höher und kann daher zur Diagnostik empfohlen werden [12]. Die IgA-Bestimmung weist bei Erwachsenen eine höhere Sensitivität, wegen der langen Persistenz der IgA-Antikörper nach Infektion aber eine ungenügende Spezifität auf [13]. Zu beachten sind falsch-positive Ergebnisse infolge Kreuzreaktionen mit diversen Erregern, u. a. Legionella spp., Chlamydophila spp. und S. pneumoniae, die bei verschiedenen Testverfahren unterschiedlich häufig beschrieben werden [14].

Amplifikationsverfahren

Aufgrund der schwierigen Kultivierbarkeit von M. pneumoniae wurden verschiedene Amplifikationsverfahren (z. B. Polymerase-Kettenreaktion [PCR]) zum Nachweis dieses Erregers entwickelt, die im Vergleich zur konventionellen serologischen Diagnostik eine deutlich verbesserte Sensitivität und Spezifität besitzen [8]. Ein genereller Nachteil dieser Verfahren sind falsch-positive Nachweise, da M. pneumoniae während der Inkubationszeit oder nach Erkrankung den Respirationstrakt zeitweise besiedeln kann, ohne an der aktuellen Erkrankung beteiligt zu sein. Studien belegen, dass die diagnostische Ausbeute durch Einsatz der Real-time-PCR in der Diagnostik von ambulant erworbenen Pneumonien im Vergleich zur konventionellen Diagnostik gesteigert werden kann [14]. Aufgrund nicht einheitlicher Standardisierung der Präanalytik und Analytik, aber auch der Kosten und fehlender Kosten-Effizienz-Untersuchungen sollten die Amplifikationsverfahren noch nicht in der Routinediagnostik eingesetzt werden [1].

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 1]):

Serologische Diagnostik einer M.-pneumoniae-Infektion (IgM-Nachweis):

• optional bei mittelschwerer ambulant erworbener Pneumonie mit verlängerter klinischer Symptomatik (>12 Tage) bzw. Therapieversagen nach Betalaktam-Therapie

• keine Empfehlung bei allen anderen Formen einer ambulant erworbenen Pneumonie, nosokomialer Pneumonie, akuter Bronchitis und akuter Exazerbation einer chronischen Bronchitis

Nukleinsäure-Amplifikationsverfahren (Real-time-PCR) sind als experimentelle Verfahren mit noch nicht ausreichend gesicherter Evidenz für den Routineeinsatz einzuschätzen.

Kontaktadresse

Konsiliarlabor für Deutschland: Institut für Klinische Mikrobiologie der Technischen Universität Dresden, Ansprechpartner Prof. Dr. med. Enno Jacobs, Tel.: [phone]; [e-mail], www.tu-dresden.de/medimmh/konsiliarlabore.html.

Legionella spp.

Legionella spp. sind intrazelluläre Bakterien, als Krankheitserreger in Europa kommt überwiegend L. pneumophila vor. L. pneumophila ist ein Erreger der ambulant erworbenen Pneumonie, wobei nicht nur schwere, sondern auch leichte bis mittelschwere Verlaufsformen auftreten können. Als Erreger einer nosokomialen Pneumonie kommen Legionellen nur sporadisch vor, eventuell im Rahmen von Kleinraumendemien durch kontaminiertes Wasser. Bei akuter Bronchitis und akuter Exazerbation einer chronischen Bronchitis haben Legionellen keine ätiologische Bedeutung. Die Bedeutung des Pontiac-Fiebers als nicht pneumonische Verlaufsform ist nicht ausreichend untersucht.

Da Legionellen den Respirationstrakt nicht kolonisieren, ist der Nachweis aus respiratorischen Sekreten in aller Regel gleichbedeutend mit einer Infektion. Aufgrund des ubiquitären Vorkommens in der Umwelt sind Kontaminationen zu berücksichtigen.

Diagnostische Verfahren

Zur Diagnostik stehen verschiedene Verfahren zur Verfügung, wobei dem Nachweis von Legionella-Antigen im Urin die größte klinische Bedeutung zukommt.

Antigentest

Sowohl mit dem Enzym-Immuno-Assay als auch mit dem immunchromatografischen Schnelltest können nur L. pneumophila der Serogruppe 1 mit ausreichender Empfindlichkeit nachgewiesen werden, die in Deutschland die klinisch bedeutsamste Legionella-Spezies darstellen [16]. Die Testsysteme besitzen eine außerordentlich hohe Spezifität (> 99 %), das heißt falsch-positive Ergebnisse kommen praktisch nicht vor. Die Sensitivität variiert je nach Ort der Entstehung der Infektion: Bei Reise-assoziierten Legionella-Infektionen liegt die Genauigkeit über 90 %, bei heimischen Legionellosen bei über 75 % [17]. Die Sensitivität der Antigennachweise kann etwas gesteigert werden, wenn der Urin durch Ultrafiltration konzentriert wird. Ein negativer Antigennachweis schließt eine Legionellose nicht aus; daher sind bei entsprechendem klinischem Verdacht Mehrfachuntersuchungen indiziert.

Nukleinsäureamplifikationsverfahren

Die konventionellen PCR-Techniken, die an Untersuchungsproben wie bronchoalveolärer Lavage, Trachealsekret und Sputum eingesetzt werden können, besitzen eine außerordentlich hohe diagnostische Ausbeute und liefern bessere Ergebnisse als die Kulturverfahren [18]. Sie sind für Materialien, die nicht aus den Atemwegen stammen (Serum, Urin), noch nicht ausreichend untersucht. Die Real-time-PCR weist eine Sensitivität und Spezifität von über 90 % auf und liefert das Ergebnis innerhalb von wenigen Stunden. Grundsätzlich gilt auch für die molekularbiologischen Methoden in der Diagnostik einer Legionellose, dass die Verfahren derzeit nicht in der Routinediagnostik eingesetzt werden sollten, da sie nur in Speziallabors ausreichend validiert sind. Diese sollten zwingend an den in Deutschland verfügbaren Ringversuchen teilnehmen.

Kultur

Geeignete Materialien für die Anzüchtung von Legionellen aus dem Respirationstrakt sind Trachealsekret, bronchoalveoläre Lavage und Lungengewebe, wobei Spezialnährböden (Zusatz von Holzkohle und Hefeextrakt [BCYE-Agar]) und verlängerte Bebrütungszeiten von bis zu 7 Tagen notwendig sind. Der klinische Verdacht auf eine Legionellose sollte daher dem Labor mit der Einsendung der Proben mitgeteilt werden. Die Sensitivität ist sehr variabel (zwischen < 10 % und 80 %), die Spezifität beträgt 100 % [19]. Ein Vorteil der Anzüchtung besteht darin, dass bei Verdacht auf Kontamination bzw. Infektion durch Wasser ein molekularer Vergleich der Legionella-Spezies aus klinischen Proben und Umgebungsmaterialien möglich ist [1].

Direkte Immunfluoreszenz

Die Sensitivität der direkten Immunfluoreszenz aus respiratorischen Proben ist mit 25 – 66 % unzureichend, eine Legionellose kann damit keinesfalls ausgeschlossen werden. Das Verfahren ist stark von der Erfahrung des jeweiligen Labors abhängig. Im Unterschied zum Urinantigentest werden aber alle Serotypen von L. pneumophila mit der gleichen Sensitivität detektiert. Dies spielt insbesondere bei nosokomialen Infektionen eine Rolle. Für ambulant erworbene und Reise-assoziierte Erkrankungen ist der Antigentest im Urin besser geeignet [20].

Serologie

Mittels indirektem Immunfluoreszenztest können aus dem Serum IgG-, IgA- und IgM-Antikörper nachgewiesen werden. Ein vierfacher Titeranstieg bei einem Serumpaar im Abstand von 10 bis 14 Tagen gilt als Beweis für eine Infektion. Allerdings gibt es wichtige Einschränkungen in der klinischen Anwendung, die die unzureichende Sensitivität und Spezifität des Immunfluoreszenztestes erklären. Im Rahmen einer akuten Infektion durch L. pneumophila kann die Antikörperbildung verzögert sein (signifikante Titeranstiege erst 3 bis 6 Wochen post infectionem) bzw. bei einem Teil der Patienten komplett unterbleiben [21] [22]. Falsch-positive Resultate können durch persistierende Antikörpertiter über Jahre nach einer Infektion (subklinisch oder Pontiac-Fieber) entstehen, was die Interpretation als Ausdruck einer akuten Infektion erheblich erschwert [23]. Weiterhin sind Kreuzreaktionen mit anderen Bakterienspezies, wie zum Beispiel Coxiella burnetii, Campylobacter spp. und Pseudomonas spp. beschrieben [24]. Die routinemäßige Legionella-Antikörperbestimmung wird daher in der Diagnostik von akuten Atemwegsinfektionen nicht empfohlen.

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 1])

Das Verfahren der Wahl ist der Antigentest im Urin. Als experimentelle Verfahren mit noch nicht ausreichend gesicherter Evidenz für den Routineeinsatz sind die Nukleinsäure-Amplifikationsverfahren (konventionelle PCR, Real-time-PCR) einzuschätzen.

Eine Diagnostik auf Legionellen wird empfohlen:

optional

• bei mittelschwerer CAP (hospitalisiert)

• bei therapierefraktärer nosokomialer Pneumonie

obligatorisch

• bei schwerer CAP

• bei therapierefraktärer CAP

keine Empfehlung

• bei akuter Bronchitis, akuter Exazerbation einer chronischen Bronchitis

Kontaktadresse

Konsiliarlabor für Deutschland: Institut für Klinische Mikrobiologie der Technischen Universität Dresden (Prof. Dr. med. E. Jacobs), Ansprechpartner Dr. med. C. Lück, Tel.: [phone]; [e-mail], www.tu-dresden.de/medimmh/konsiliarlabor_legionellen.html.

Chlamydophila pneumoniae

Chlamydophila pneumoniae (Chlamydien) sind intrazellulär wachsende Bakterien, die bei Kindern und Erwachsenen zu Infektionen im oberen und unteren Respirationstrakt führen. Es sind in aller Regel selbstlimitierende Erkrankungen, die möglicherweise als Schrittmacherinfektionen zu bakteriellen Superinfektionen prädisponieren [25]. Basierend auf Mikroimmunfluoreszenzverfahren wurde die Häufigkeit von Chlamydieninfektionen bei der ambulant erworbenen Pneumonie zwischen 5 und 10 % angenommen [26]. Untersuchungen von CAPNETZ aus Deutschland widersprechen diesen älteren Studien und zeigen unter Anwendung einer validen PCR-Diagnostik eine sehr geringe Inzidenz von Chlamydieninfektionen (< 1 %) [27]. Welche Bedeutung einer Besiedelung der Atemwege bei chronisch-obstruktiver Bronchitis durch C. pneumoniae zukommt, ist unklar. Mit dem Einsatz hochsensitiver PCR-Techniken wird in Abhängigkeit von Alter, vorbestehender Lungenfunktionsbeeinträchtigung oder akuter Exazerbation die Nachweisrate bei stabiler COPD erhöht; daraus lassen sich allerdings keine pathogenetischen, diagnostischen bzw. therapeutischen Schlussfolgerungen ziehen [1] [28].

Diagnostische Verfahren

Kultur

C. pneumoniae wird als obligat intrazellulärer Erreger ausschließlich in Zellkulturen eukaryontischer Zellen angezüchtet. Diese Methodik ist nur in wenigen Speziallaboratorien verfügbar, zudem fehlen verlässliche Angaben zu Sensitivität und Spezifität aufgrund erheblicher methodischer Unterschiede in den verwendeten Nachweisverfahren [29].

Serologie

Aus dem Serum können prinzipiell IgG-, IgM- und IgA-Antikörper bestimmt werden. Die Interpretation von Antikörper-Nachweisen ist jedoch aufgrund der hohen Prävalenz von IgG-Antikörpern bei Erwachsenen sowie dem Fehlen standardisierter Testsysteme schwierig. Hinzu kommt, dass IgM-Antikörper in aller Regel erst 2 – 3 Wochen nach Erkrankungsbeginn auftreten, IgG-Antikörper erreichen oft erst ca. 7 Wochen nach Erkrankungsbeginn hohe Titerstufen. Bei Reinfektionen ist eine IgM- Antwort häufig nicht vorhanden und die IgG-Titer steigen innerhalb von 1 – 2 Wochen an. Serologische Tests sind daher weniger für die Akutdiagnostik einer Chlamydieninfektion geeignet, eher für die retrospektive Bestätigung einer Diagnose oder für epidemiologische Studien [30]. IgA-Antikörper werden spät im Verlauf einer Infektion gebildet, sinken jedoch schneller als IgG-Antikörper wieder. Hohe IgA-Werte können bei einigen Patienten als Marker einer Reinfektion angesehen werden.

Der Mikroimmunfluoreszenztest zeigt wenig Kreuzreaktionen mit den beiden anderen Chlamydienspezies C. trachomatis und C. psittacii und ist der einzige etablierte Spezies-spezifische Antikörper-Test. Er ist jedoch technisch aufwendig, wenig standardisiert und von der Interpretation des Untersuchers abhängig. Ein IgM-Titer von ≥ 1 : 16 oder ein 4-facher IgG-Titeranstieg in einem Serumpaar gilt als beweisend für eine akute Infektion [31]. Aufgrund persistierender postinfektiöser IgG- und IgM-Titer, zum Teil auch in hohen Konzentrationen, ist die Chlamydophila-pneumoniae-Serologie wegen falsch-positiver Ergebnisse in der Routinediagnostik nicht zu empfehlen [32]. In neuester Zeit werden zunehmend Westernblot-Techniken mit rekombinanten Chlamydophila-pneumoniae-Antigenen eingesetzt. Sie zeigen nach ersten Evaluierungen eine bessere Spezifität und Sensitivität, sind aber noch nicht abschließend zu bewerten.

Amplifikationsverfahren

Aufgrund der Einschränkung kultureller und serologischer Verfahren scheinen Nukleinsäure-Amplifikationsverfahren aus Atemwegsmaterialien geeignetere diagnostische Methoden für den Nachweis von C. pneumoniae zu sein. Angaben zu Sensitivität und Spezifität sind allerdings nicht möglich, da es keinen „Goldstandard” als Vergleich gibt und die Variabilität unterschiedlicher NAT-Protokolle sehr hoch ist [8] [30]. Die Centers for Disease Control der USA und das Laboratory Centre for Disease Control Canada geben Empfehlungen für die Standardisierung der NAT zum Nachweis von C. pneumoniae, doch bisher sind keine standardisierten Tests verfügbar, die sich für die Routinediagnostik eignen [30]. In Deutschland sind Ringversuche verfügbar, an denen die diagnostischen Labore teilnehmen sollten.

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 1])

Eine Routinediagnostik einer Infektion durch C. pneumoniae wird bei Patienten mit ambulant erworbener Pneumonie, nosokomialer Pneumonie, akuter Bronchitis oder akuter Exazerbation einer chronischen Bronchitis nicht empfohlen.

Chlamydophila psitacii

Als Reservoir von C. psittacii sind vor allem Vögel zu nennen. Daher sind meist Geflügelfarmen (Truthühner, Enten, Tauben) als Infektionsquelle für den Menschen von Bedeutung. Die atypischen Pneumonien sind häufig durch einen plötzlichen Beginn mit Schüttelfrost, hohem Fieber, trockenem Husten, Bradykardie und Kopfschmerzen gekennzeichnet. Der Schweregrad reicht von leichten Erkrankungen bis zu tödlich verlaufenden systemischen Infektionen, bei denen respiratorische Symptome im Vordergrund stehen.

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 2])

Die anamnestisch begründete Verdachtsdiagnose wird durch den Nachweis spezifischer Antikörper im Serum gestellt. Diese entwickeln sich erst im Verlauf der Infektion, sodass in der akuten Krankheitsphase mit einem negativen Ergebnis zu rechnen ist. Die Referenzmethode zum Nachweis Spezies-spezifischer Antikörper ist der Mikroimmunfluoreszenztest (MIF). Der kulturelle Nachweis ist wegen des Risikos schwerer Laborinfektionen nur in Laboratorien der Sicherheitsstufe III zugelassen. Der molekularbiologische Nachweis mittels PCR ist Spezies-spezifisch und potenziell hochsensitiv. Allerdings steht seine umfassende Validierung noch aus. Somit kann der Test noch nicht generell empfohlen werden.

Kontaktadresse

Konsiliarlabor für Chlamydien in Deutschland: Institut für Medizinische Mikrobiologie des Universitätsklinikums Jena: Ansprechpartner Prof. Dr. med. E. Straube, Dr. rer. nat. Jürgen Rödel Tel.: [phone]; [e-mail].

Tab. 2 Übersicht über diagnostische Verfahren von Atemwegserregern II.

Erreger	Mikroskopie*	Kultur**	Nukleinsäure-amplifikations-verfahren	Antigen-Nachweis	Serologie	Sonstiges
C. psittacii	n. v.***	keine Routine	hochsensitiv, nicht validiert	n. v.	Referenzmethode MIF	anamnestische Angaben bedeutsam
C. burnetii	n. v.	keine Routine	nur Speziallabors	n. v.	ausreichende Genauigkeit	anamnestische Angaben bedeutsam
P. aeruginosa	Gramfärbung (gramnegatives Stäbchen)	Standardverfahren	n. v.	n. v.	n. v.	Risikofaktoren beachten, Infektion versus Kolonisation: CPIS-Score; häufig bei Beatmungspneumonie
Nonfermenter (außer P. aer.)	Gramfärbung(gramnegatives Stäbchen)	Standardverfahren	n. v.	n. v.	n. v.	Risikofaktoren beachten; bei Beatmungs-pneumonie
Aktinomyces spp.	Gramfärbung (grampositiv)	lange Bebrütungszeiten	nur experimentell	n. v.	n. v.	Nachweis von Drusen in der Histologie, hohe Sensitivität und Spezifität; seltener Erreger
Nocardia spp.	Gramfärbung, Spezialfärbung (Grocott-Gomori, Silber)	z. T. lange Bebrütungszeiten	nur experimentell	n. v.	n. v.	partiell säurefest, Verwechslung mit Mykobakterien; seltener Erreger; Abszessbildung
* aus respiratorischen Materialien wie Sputum, bronchoalveolärer Lavage; **aus Atemwegsmaterialien wie Sputum, Bronchialspülung, bronchoalveolärer Lavage, Gewebe; *** nicht verfügbar.

Q-Fieber (Coxiella burnetii)

C. burnetii ist ein kleines, unbewegliches, polymorphes, gramnegatives Bakterium aus der Familie der Rickettsiaceae. Er ist ein seltener Erreger einer interstitiellen Pneumonie, häufig begleitet von Muskelschmerzen und ausgeprägten Stirnkopfschmerzen. Seltener entwickelt sich eine Myokarditis bzw. Perikarditis oder Meningoenzephalitis. C. burnetii wird meist durch Inhalation infektiösen Staubes oder durch direkten Kontakt zu infizierten Tieren übertragen, weshalb der Anamneseerhebung eine herausragende Bedeutung bei der Diagnosestellung zukommt.

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 2])

Die Verdachtsdiagnose wird durch Antikörpernachweis labordiagnostisch gesichert. In Speziallaboratorien kann auch ein Erregernachweis mittels Zellkultur oder Nukleinsäure-Nachweis (PCR) erfolgen.

Kontaktadresse

Konsiliarlaboratorium für Coxiella burnetii, Institution: Landesgesundheitsamt Baden-Württemberg, Nordbahnhofstr. 135, 70191 Stuttgart, Ansprechpartner: Frau Dr. C. Wagner-Wiening, Tel.: [phone]; [e-mail].

Pseudomonas aeruginosa

P. aeruginosa sind gramnegative, nicht fermentierende Stäbchenbakterien (Non-Fermenter), die ubiquitär in der Umwelt (insbesondere in Feucht- und Nassbereichen) vorkommen und zum Teil schwere, lebensbedrohliche Infektionen bei immunsupprimierten, seltener bei immunkompetenten Patienten auslösen können. Da sie die Haut- und Schleimhäute von gesunden Menschen besiedeln, ist es im Einzelfall schwierig, zwischen einer Kolonisation und einer Infektion zu unterscheiden.

Aus pneumologischer Sicht haben Infektionen durch P. aeruginosa in folgenden Situationen eine klinische Relevanz:

• Nosokomiale Pneumonie
  P. aeruginosa gehören zu den häufigsten Erregern einer im Krankenhaus erworbenen Pneumonie in Abhängigkeit von den lokalen epidemiologischen und hygienischen Gegebenheiten, der Grunderkrankung des Patienten sowie dem Vorliegen bestimmter Risikofaktoren [6]. Hierzu zählen die Dauer des stationären Aufenthaltes vor Entwicklung der Pneumonie, invasive Beatmung und Beatmungsdauer sowie Vorbehandlung mit Antibiotika. Grunderkrankungen, die zu einer Infektion mit P. aeruginosa prädisponieren, sind vorwiegend strukturelle Lungenerkrankungen wie terminale chronisch-obstruktive Lungenerkrankung, zystische Fibrose oder Bronchiektasenerkrankung [33] [34].

• Akute Exazerbation einer chronischen Bronchitis
  Untersuchungen zur bakteriellen Ätiologie der akuten Exazerbation einer chronisch-obstruktiven Bronchitis zeigen eine Abhängigkeit des Erregerspektrums von der vorbestehenden Lungenfunktionsbeeinträchtigung der stabilen COPD. P. aeruginosa und Enterobacteriaceae werden vermehrt bei einer FEV₁ unter 50 % isoliert, wobei zu beachten ist, dass bakterielle Erreger insgesamt nur in weniger als 50 % der Fälle nachgewiesen werden [35]. Ursächlich für den Erregershift dürften wiederholte Krankenhausaufenthalte und Antibiotikatherapien bzw. lokale Abwehrstörungen in der Bronchialschleimhaut („remodeling”) sein [36].

• Ambulant erworbene Pneumonie
  Nach den Daten von CAPNETZ sind Pseudomonaden als Erreger der ambulant erworbenen Pneumonie in Deutschland ausgesprochen selten [2]. Eine Berücksichtigung in der empirischen Therapie ist daher im Regelfall nicht erforderlich und wird nur bei schwer erkrankten Patienten mit Risikofaktoren, insbesondere bei struktureller Lungenerkrankung mit vorangegangener Antibiotikatherapie, vorausgegangenen Krankenhausaufenthalten oder bekannter Kolonisation empfohlen ([Tab. 3]).

Tab. 3 Risikofaktoren für eine Pseudomonas-aeruginosa-Infektion der unteren Atemwege bzw. bei Pneumonie.

sehr schwere chronisch-obstruktive Lungenerkrankungen, wie schwere COPD mit Antibiotika-Vortherapie oder vorausgegangener Hospitalisierung jeweils in den letzten drei Monaten

Bronchiektasen

Mukoviszidose

bekannte Kolonisation der Atemwege mit P. aeruginosa

Diagnostische Verfahren

P. aeruginosa lassen sich grundsätzlich aus Materialien des Respirationstrakts, Blutkulturen und Pleuraflüssigkeit mittels mikrobiologischer Standardverfahren anzüchten. Der Nachweis aus Blutkulturen oder anderen Materialien aus primär sterilen Kompartimenten ist diagnostisch beweisend. Der Nachweis aus respiratorischem Material lässt hingegen per se keine Unterscheidung zwischen Infektion und Besiedelung zu [1]. Die Differenzierung zwischen Kolonisation und Infektion ist daher schwierig und bleibt trotz verschiedener Methoden zur Qualitätsverbesserung unbefriedigend, wie:

• Ermittlung einer Schwellenkonzentration (quantitative bzw. halbquantitative bakteriologische Aufarbeitung der Proben): Differenzielle diagnostische Schwellenkonzentration in Abhängigkeit vom Untersuchungsmaterial (Trachealsekret ≥ 106/ml; bronchoalveoläre Lavage ≥ 10⁴/ml bzw. ≥ 10³/ml) [6]

• mikroskopische Qualitätsbeurteilung der Proben: Anteil von Plattenepithelien (< 10 pro Gesichtsfeld bei 100 × Vergrößerung) und Leukozyten (> 25 pro Gesichtsfeld) in den Proben [37]

• Nachweis von intrazellulären Erregern [6]

Bei beatmeten Patienten konnte bisher ein Vorteil bronchoskopisch gewonnener Proben gegenüber Trachealsekret nicht belegt werden, eine große Studie zu dieser Fragestellung schloss Patienten mit Risikofaktoren für P. aeruginosa aus [38].

Das Hauptproblem der Kultur liegt – neben der Dauer von 24 – 48 Stunden bis zum Vorliegen des Ergebnisses – in der niedrigen Sensitivität. Eine Resistenztestung ist obligat und wird vom mikrobiologischen Labor routinemäßig vorgenommen, da eine natürliche Resistenz gegenüber Penicillinen und Cephalosporinen besteht. Im Krankenhaus erworbene P. aeruginosa weisen darüber hinaus häufig zusätzliche Resistenzen gegenüber Carbapenemen oder Fluorchinolonen auf [39].

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 2])

Nosokomiale Pneumonie

Die Durchführung einer mikrobiologischen Diagnostik zum Nachweis von P. aeruginosa aus geeigneten Atemwegsmaterialien und weiteren Proben wie Blutkulturen oder Pleurapunktat wird bei Patienten mit nosokomialer Pneumonie empfohlen.

Die Sensitivitäten und Spezifitäten des Nachweises von Bakterien aus den (unsterilen) Untersuchungsproben des Respirationstraktes weisen große Streuungen auf. Die Genauigkeit der Ergebnisse wird entscheidend durch die Erfahrung der Intensivmediziner und des Untersuchungslabors, der Logistik im Untersuchungsablauf und der benutzten diagnostischen und klinischen Strategie bestimmt [6]. Der sorgfältigen klinischen Definition des Vorliegens einer nosokomialen Pneumonie kommt daher insbesondere bei invasiv beatmeten Patienten eine zentrale Rolle zu. Der Entwicklung einer Tubus-assoziierten Pneumonie geht in aller Regel eine Kolonisation der tiefen Atemwege mit dem Erreger voraus; daher sprechen sterile Kulturen aus Proben der unteren Atemwege ohne bestehende Antibiotikatherapie bzw. ohne vorherigen empirischen Wechsel einer Antibiotikabehandlung gegen das Vorliegen einer Pneumonie [40]. Eine Kombination aus klinischen und mikrobiologischen Parametern mit der Bestimmung von Biomarkern wie dem Procalcitonin im Serum vermag die Genauigkeit der Diagnostik einer Beatmungspneumonie signifikant zu verbessern [41]. Klinisch-mikrobiologische Parameter zur Definition einer Tubus-assoziierten Pneumonie können in einem einfachen und sensitiven Score (Clinical Pulmonary Infection Score CPIS) zusammengefasst werden:

• Temperatur (Scorepunkt 0: ≥ 36,5 – ≤ 38,4; 1: ≥ 38,5 – ≤ 38,9; 2: ≥ 39,0 oder ≤ 36,0)

• Blutleukozyten (0: ≥ 4,0 – ≤ 11,0; 1: < 4,0 oder > 11,0; 2 : 1 und Segmentkernige > 0,5)

• Trachealaspirat (0: kaum; 1: vermehrt; 2: vermehrt und purulent)

• Oxygenierung (PAO2/FIO2 mmHg; 0: > 240 oder ARDS; 2: ≤ 240 ohne ARDS)

• Pulmonale Infiltrate (0: keine; 1: diffus; 2: lokalisiert)

• Progression der pulmonalen Infiltrate (0: nein; 2: ja)

• Kultur/Gramfärbung des Trachealaspirats (0: neg; 2: pos; Gramfärbung positiv: + 1)

(Beurteilung durch Addition der Scorepunkte: Score < 6: geringe Pneumonie-Wahrscheinlichkeit, Score ≥ 6: hohe Pneumonie-Wahrscheinlichkeit) [42] [43] [44].

Akute Exazerbation einer chronischen Bronchitis

Die Kenntnis einer chronischen Besiedelung durch P. aeruginosa bei Patienten mit fortgeschrittener chronisch-obstruktiver Bronchitis kann in Analogie zu Patienten mit zystischer Fibrose die Auswahl geeigneter Antibiotika bei einer akuten Exazerbation steuern [1]. Bakteriologische Untersuchungen von Sputen bei COPD-Patienten mit fortgeschrittener Lungenfunktionseinschränkung sind daher zu empfehlen.

Ambulant erworbene Pneumonie

Ohne das Vorliegen entsprechender Risikofaktoren wie vorausgegangener Krankenhausaufenthalte, Antibiotikavortherapien, schwerer struktureller Lungenerkrankungen, Aspiration oder Malnutrition besteht bei Nachweis von P. aeruginosa aus respiratorischen Sekreten im Rahmen einer Routinediagnostik der ambulant erworbenen Pneumonie zunächst der Verdacht auf eine Kolonisation [45].

Acinetobacter spp., Stenotrophomonas maltophilia und Burkholderia cepacia

Bei diesen Erregern handelt es sich um gramnegative, nicht fermentierende Stäbchenbakterien (Non-Fermenter) mit geringerer Virulenz als P. aeruginosa, denen insbesondere in der Ätiologie der späten nosokomialen Pneumonie (> 5 – 7 Tage nach stationärer Aufnahme) bei intubierten Patienten eine klinische Bedeutung zukommt. Zu berücksichtigen ist allerdings, dass diese Erreger – wie auch P. aeruginosa – in Abhängigkeit vom Vorliegen von Risikofaktoren wie antimikrobielle Vortherapie, vorhergehende Krankenhausaufenthalte, Prävalenz von resistenten Erregern in der Behandlungseinrichtung sowie Immunsuppression oder schwere hämatologische Grunderkrankungen auch bei Patienten mit früher nosokomialer Pneumonie und bei nicht intubierten Patienten als Pneumonierreger identifiziert werden können [7] [46] [47]. In den letzten Jahren wurde zunehmend über Resistenzen bei Non-Fermentern berichtet, die sich auf Fluorchinolone, Carbapeneme und Breitspektrum-β-Laktam-Antibiotika beziehen [6] [48].

Diagnostische Methoden

Non-Fermenter lassen sich grundsätzlich aus Materialien des Respirationstrakts, Blutkulturen und Pleuraflüssigkeit mittels mikrobiologischer Standardverfahren anzüchten, wobei der Nachweis aus Blutkulturen oder anderen Materialien aus primär sterilen Kompartimenten diagnostisch beweisend ist. Ihre Isolierung aus respiratorischem Material lässt hingegen per se keine Unterscheidung zwischen Infektion und Besiedelung zu [6].

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 2])

Insbesondere beim Vorliegen von Risikofaktoren für resistente Erreger sollte eine sorgfältige mikrobiologische Diagnostik vor Antibiotika-Therapieeinleitung bzw. -umstellung erfolgen und das mögliche Vorliegen von Non-Fermentern unter Berücksichtigung der lokalen Epidemiologie und Resistenzlage bei der Auswahl der antimikrobiellen Therapie berücksichtigt werden. Zur Befundinterpretation beim Nachweis dieser Erreger aus primär nicht-sterilen respiratorischen Materialien ist allerdings eine sorgfältige mikrobiologische bzw. klinische Definition der nosokomialen Pneumonie erforderlich.

Als spezifische Risikofaktoren für Pneumonien durch Acinetobacter spp. gelten:

• Aspiration im Krankenhaus

• ARDS

• vorausgegangener neurochirurgischer Eingriff

• Antibiotika-Vortherapie [49] [50]

Für Pneumonien durch Stenotrophomonas maltophilia wurden als Risikofaktoren beschrieben:

• Aufenthalt auf einer Intensivstation

• Intubation

• Antibiotika-Vortherapie

• Neutropenie

• Diabetes mellitus bzw.

• hämatologische Systemerkrankungen [51] [52]

Actinomyces spp.

Actinomyces spp. sind fakultativ bis obligat anaerobe grampositive unbewegliche Stäbchen [53]. Der wichtigste Vertreter ist Actinomyces israeli. Ihr physiologisches Habitat ist die Mundhöhle. Schlechter Zahnstatus und parodontale Taschen begünstigen die Kolonisation im Oropharynx. Pathogenetisch spielen Mikro- bzw. Makroaspirationen für die Entwicklung einer pulmonalen Aktinomykose die wesentliche Rolle, begünstigt wird eine Infektion durch Mischinfektionen mit Sauerstoff-verbrauchenden Erregern auf dem Boden einer lokalen Gewebsschädigung [54]. Weitere klinische Manifestationen sind zervikofaziale und abdominelle Aktinomykosen.

Actinomyces spp. führen zu langsam progredienten Infektionen der Lunge, teilweise mit abszedierendem Verlauf, die gelegentlich zu Fistelbildungen, insbesondere kutanen Fisteln, neigen [55]. Radiomorphologisch imponieren sie nicht selten als intrapulmonale Raumforderungen, sodass differenzialdiagnostisch pulmonale Neoplasien ausgeschlossen werden müssen.

Diagnostische Verfahren

Die Diagnostik basiert auf dem histologischen Nachweis von Drusen im Gewebe, wobei nicht bei allen Actinomyces spp. diese Morphe anzutreffen ist. Im nach Gram gefärbten Untersuchungsmaterial sind fädige, schwach grampositve Elemente zu erkennen. Der kulturelle Nachweis spielt in der Praxis eine eher untergeordnete Bedeutung, da Bebrütungszeiten von bis zu 4 Wochen notwendig sind und diese nur auf spezielle Anforderung bei Verdacht durch den Kliniker im Labor eingehalten werden. Serologische Verfahren sind nicht etabliert, Nukleinsäure-Amplifikationsverfahren bisher nur experimentell.

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 2])

Bei klinischem Verdacht sollte der histologische Nachweis der Drusen im Gewebe angestrebt werden, da der Nachweis der Erreger aus respiratorischen Sekreten Ausdruck einer Kontamination aus dem Oropharynx sein kann und nur der histologische Nachweis von Strahlenpilzdrusen im Gewebe als pathognomonisch für diese Infektion gewertet wird.

Nocardia spp.

Es gibt mehr als 20 verschiedene Nocardia-Spezies, wobei der N.-asteroides-Komplex, bestehend unter anderem aus N. abscessus und N. asteroides, klinisch die größte Bedeutung besitzt. Es handelt sich um nicht Sporen-bildende, grampositive Stäbchen, die partiell säurefest sind und mikroskopisch Verzweigungen aufweisen. Sie sind in der Natur weit verbreitet, besonders bei biologischen Verwertungs- und Abbauprozessen im Erdboden. Als humane Krankheitserreger werden sie überwiegend bei abwehrgeschwächten Patienten mit T-Zell-Defekt nachgewiesen, wie Patienten nach Organtransplantation oder unter medikamentöser Immunsuppression. Sie kommen als sehr seltene Differenzialdiagnose auch beim abwehrgesunden Patienten mit einem chronischen Lungeninfiltrat in Betracht [55].

Eintrittspforte ist der Respirationstrakt, der Oropharynx gilt nicht als normales Habitat, sodass der Nachweis der Erreger aus oropharyngealem Sekret einen signifikanten Befund darstellt [56]. Klinisch manifestiert sich eine Nokardiose der Lunge als subakut bis chronisch verlaufende nekrotisierende Bronchopneumonie mit Neigung zur Abszedierung und hämatogener Metastasierung. Andere pulmonale Manifestationen sind Rundherde mit oder ohne Kavernenbildung sowie begleitende Pleuraergüsse [57]. Da eine Nokardiose häufig im Oberlappen auftritt, besteht die Notwendigkeit der differenzialdiagnostischen Abgrenzung zur Tuberkulose. Anreicherungen mit mikroskopischem Nachweis von säurefesten Stäbchen können irreführend sein, da Nocardia spp. schwach säurefest sind. Differenzialdiagnostisch sind ferner Infektionen durch Aspergillus spp. bzw. Toxoplasma gondii bei schwerem T-Zelldefekt sowie pulmonale Neoplasien auszuschließen.

Diagnostische Verfahren

Die Diagnostik basiert auf dem mikroskopischen und kulturellen Nachweis der Erreger aus Gewebe und respiratorischen Sekreten. Der kulturelle Nachweis erfolgt in der Regel nach Tagen, mitunter sind lange Bebrütungszeiten notwendig. Erfahrene Mikrobiologen können Nokardien mikroskopisch aus Sputum, Pleuraflüssigkeit, bronchoalaveolärer Lavage oder perkutanen Feinnadelaspiraten mit der Gramfärbung oder einer Spezialfärbung (Methamin-Silber oder Grocott-Gomori) rasch diagnostizieren. Es gibt Amplifikationsverfahren zum molekularbiologischen Nachweis der Erreger, diese sind aber nicht Teil der Standarddiagnostik einer Nokardiose [58].

Empfehlung zur Diagnostik ([Tab. 2])

Es ist beim Transport der Proben darauf zu achten, dass diese nicht kühl gelagert werden dürfen [59]. Aufgrund der langen Bebrütungszeiten ist das mikrobiologische Untersuchungsinstitut auf den klinischen Verdacht hinzuweisen.

Kontaktadresse

Konsiliarlaboratorium für Aktinomyzeten/Nokardien: Institut für Medizinische Mikrobiologie, Immunologie und Parasitologie Universitätsklinikum Bonn, Sigmund-Freud-Str. 25, 53105 Bonn, Ansprechpartner: Herr Prof. Dr. K. P. Schaal, Tel.: [phone], [e-mail].

Der Nachweis seltener Erreger von Pneumonien (Tularämie, Keuchhusten, Klebsiellen) sowie der respiratorischen Viren und Pilze kann im Rahmen dieser Übersicht nicht abgehandelt werden. Es wird u. a. auf die Informationen der Robert-Koch-Instituts (www.rki.de) verwiesen.

Zusammenfassung

Die Diagnostik von Infektionen der Atmwege sollte sich primär an den Empfehlungen und Leitlinien der Fachgesellschaften orientieren und die Grunderkrankung des Patienten, insbesondere das Vorliegen einer Abwehrschwäche, der Ort der Entstehung der Infektion (ambulant oder nosokomial) und die Art der Infektion (akute Exazerbation einer chronischen Bronchitis, ambulant erworbene oder nosokomiale Pneumonie) sowie die Schwere der klinischen Symptome und Befunde berücksichtigen. Im Vordergrund steht eine rasche Diagnostik, die bei Pneumonien den Beginn einer Antibiotika-Therapie keinesfalls verzögern darf. Im Zweifelsfall ist auf eine ätiologische Sicherung der Infektion zu verzichten bzw. diese im weiteren Verlauf anzustreben. Invasive Verfahren sollten erst bei therapierefraktärer Konstellation in Erwägung gezogen werden, da eine Erregersicherung in der Initialphase einer respiratorischen Infektion bei Berücksichtigung der Leitlinien und Empfehlungen nicht prognoserelevant ist.

Interessenkonflikte

Keine angegeben.

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Bisher erschienene Beiträge dieser Serie

• 60 Strassburg A. et al . Infektionsdiagnostik in der Pneumologie.  Pneumologie. 2008;  62 730-743
• 61 Rohde G. et al . Nachweis von Atemwegsviren – wie, warum, wann und wo?.  Pneumologie. 2009;  63 14-22
• 62 Gillissen A. et al . Biomarker bei infektiösen und nicht infektiösen Lungenerkrankungen außer Malignome.  Pneumologie. 2009;  63 439-450