Organischer Staub am Arbeitsplatz: Messung der pyrogenen Aktivität

Einleitung

An zahlreichen Arbeitsplätzen, wie z. B. in der Landwirtschaft, der Abfallwirtschaft oder der baumwollverarbeitenden Textilindustrie, können Bioaerosole in schädigenden Konzentrationen auftreten [1]. Vor allem Bereiche mit hoher Staubentwicklung müssen deshalb entsprechend überwacht werden. Je nach Inhaltsstoffen können organische Stäube infektiös, toxisch, allergisierend, reizend oder belästigend wirken, wobei ihre qualitative und quantitative Zusammensetzung komplex ist. Zu den Komponenten organischer Stäube gehören Bakterienbestandteile wie Endotoxine (Lipopolysaccharide = LPS) und andere fieberauslösende (pyrogene) Substanzen, die über die Atemwege aufgenommen werden können [2] [3] [4]. Das Immunsystem hat verschiedene Möglichkeiten, um auf mikrobielle Komponenten zu reagieren (siehe [Abb. 1]).

Abb. 1 Schematische Darstellung der Immunantwort auf mikrobielle Substanzen. Unter Beteiligung verschiedener Rezeptoren kommt es zu einer Signalkaskade und letztlich zur Aktivierung des Transkriptionsfaktors NFκB und damit zur Freisetzung proinflammatorischer Botenstoffe.
CARD = caspase recruitment domain (Protein); SYK = spleen tyrosine kinase; LPS = lipopolysaccharid; TLR = Toll-like receptor; MyD88 = myeloid differentiation protein (adapter protein for TLR); NFκB = transcription factor; IRAK = serin kinase; TRAF 6 = tumor-necrosis factor receptor associated factor 6 (adapter protein); MD 2 = accessory protein of TLR; MCP-1 = monocyte chemotactic protein 1, nach neuer Nomenklatur CCL-2 = chemokine (C-C-motif) ligand 2; IL-1β = Interleukin-1β.

Wichtiger Bestandteile der Immunabwehr sind die so genannten Mustererkennungsrezeptoren (PRR = pattern recognition receptor), wie z. B. die „Toll-Like-Rezeptoren” (TLR). Sie erkennen molekulare Muster (PAMPs = pathogen associated molecular patterns), die sich auf Krankheitserregern befinden. TLR sind Transmembranmoleküle, die selektiv bakterielle Komponenten wie z. B. LPS binden. Die LPS-Bindung führt zur Aktivierung verschiedener Proteine und Enzyme und des Transkriptionsfaktors NFκB. Er steuert die Proteinbiosynthese diverser Gene, vor allem die von proinflammatorischen Mediatoren. Zytokine wie Interleukin-1β (IL-1β), Tumornekrosefaktor α (TNF-α) oder IL-6 werden ausgeschüttet, locken weitere immunkompetente Zellen an und bewirken letztlich die Vernichtung bzw. Neutralisierung der mikrobiellen Komponenten.

Bisher sind zehn Mitglieder der TLR-Familie genauer charakterisiert (TLR 1 – 10). Im Hinblick auf bakterielle Proteine spielen vor allem TLR-2 (für Lipoprotein) und TLR-4 (für LPS) eine wichtige Rolle. Aber auch andere Rezeptoren sind an der Abwehr beteiligt. Eine Schlüsselposition bei Pilzinfektionen kommt dem Dectin-1 zu. Dieser Lektin-ähnliche Rezeptor erkennt β-Glucane und kann sowohl eine eigene Signalkaskade anstoßen als auch im Zusammenwirken mit den TLR zu einer Immunantwort führen [5].

Verschiedene Forschungsergebnisse weisen darauf hin, dass die Stimulation von TLR oft zeitgleich mit anderen Oberflächenmolekülen, z. B. dem IgE-Rezeptor, geschieht. Damit kommt es zu einer Verschränkung der angeborenen und der erworbenen Immunantwort [6].

Das Vorhandensein mikrobieller Komponenten ist nicht grundsätzlich gefährlich, sondern ein normaler Bestandteil der Umwelt. Sogar positive Effekte wurden im Zusammenhang mit Endotoxin-Exposition in epidemiologischen Studien beschrieben: ein verringertes Auftreten von Allergien [7] [8] und Krebserkrankungen [9]. Wie sich die Inhalation von organischem Feinstaub auswirkt, hängt dabei sowohl von der Dosis als auch vom Wirkort, dem Zeitpunkt der Exposition und der persönlichen Empfänglichkeit ab.

Unbestritten ist jedoch, dass es im Rahmen von hohen Endotoxin-Expositionen zu Beschwerden in den Atemwegen kommen kann [10]. Als Akuteffekt ist die toxische Alveolitis (= Organic Dust Toxic Syndrome, ODTS) bekannt, eine systemische Entzündungsreaktion mit grippeähnlichen Symptomen. Chronische Effekte können sich in Form von Atembeschwerden, Fieber, Brustenge u. ä. äußern.

Daher ist es wichtig, dass Methoden zur Analyse von Bioaerosolen zur Verfügung stehen. Eine Möglichkeit, die mikrobiellen Komponenten zu analysieren, ist es, die Gesamtkeimzahlen in Form Kolonie-bildender Einheiten (KBE) quantitativ zu erfassen. Da Endotoxin allerdings auch aus abgestorbenen Bakterien stammen kann, wird vor allem der sogenannte LAL-Test (Limulus-Amoebozyten Lysat Test) zur Endotoxin-Bestimmung eingesetzt. Dafür verwendet man die Hämolymphe des Pfeilschwanzkrebses, die bei Kontakt mit Endotoxin gerinnt. Der LAL-Test ist international etabliert und liefert – standardisiertes Vorgehen vorausgesetzt – vertrauenswürdige Ergebnisse zur Abschätzung der Endotoxin-Aktivität [11] [12] [13]. Gegenüber Nicht-Endotoxin-Bestandteilen, wie sie in Bioaerosolen regelhaft vorkommen, ist der LAL-Test störanfällig [14]. LAL-Test und Gesamtkeimzahlbestimmung bilden allerdings nur den bakteriellen Anteil der Bioaerosole (partiell) ab.

Um der komplexen Zusammensetzung von Bioaerosolen gerecht zu werden, sind also weitere Methoden erforderlich. Eine Möglichkeit ist der Vollbluttest (VBT): Hier wird die Fähigkeit der Staubkomponenten zur Induktion von pyrogener Aktivität überprüft. Zu diesem Zweck wird humanes Vollblut mit dem Staubextrakt inkubiert und anschließend werden im zellfreien Überstand proinflammatorische Zytokine wie z. B. IL-1β nachgewiesen.

In unserer Studie wurde der VBT mit kryo-konserviertem Blut für arbeitsplatzbezogene Filterstaubproben validiert [2], wobei im Gegensatz zu Kindinger et al. [15] nicht die kompletten Staubfilter, sondern Filterextrakte verwendet wurden. Kindinger et al. arbeiten mit speziellen Filterkartuschen, in die zuerst der Staub gesammelt wird und anschließend direkt das Blut gefüllt wird. Dadurch ist ein Filter mit einer Messung verbraucht. Durch die Extraktion der Staubfilter mit Wasser entsteht dagegen ein Extrakt, der für mehrere Messungen eingesetzt werden kann. Folglich ist z. B. die Validierung mittels Doppelbestimmung möglich, aber vor allem können die Proben in unterschiedlichen Verfahren analysiert werden. In der vorliegenden Studie wurden die Proben sowohl im LAL-Test als auch im VBT untersucht. Mit Hilfe dieser beiden Verfahren soll ein Analyseschema entwickelt werden, dass zur vergleichenden Charakterisierung von Staubproben eingesetzt werden kann. Zur Validierung der Tests kamen neben den Staubextrakten auch E. coli, Zymosan und Aspergillus versicolor als Reinsubstanzen zum Einsatz. E. coli ist ein ubiquitäres Bakterium, Zymosan Bestandteil eines Hefepilzes und Aspergillis versicolor ein Pilz, der typischerweise bei Feuchteschäden in Innenräumen auftritt [16] und zu gesundheitlichen Problemen führen kann.

Langfristiges Ziel ist es, die Bioaerosol-Exposition an Arbeitsplätzen mit Hilfe unterschiedlicher, sich ergänzender Verfahren zu beurteilen.

Material und Methoden

Staubsammlung und Filterextraktion

Die luftgetragenen Staubfilterproben stammten aus der Getreideverarbeitung und -lagerung (n = 20), aus Hühner- und Taubenställen (n = 2) sowie einer Ferkelzucht (n = 2). Sammlung und Extraktion wurden nach dem bereits beschriebenen Protokoll durchgeführt [1]. Die Filterextraktion erfolgte in Borosilikat Erlenmeyer-Kolben, indem die Filter auf einem Horizontalschüttler (130 Schüttelbewegungen/Min.) in 5 bzw. 10 ml pyrogenfreiem Wasser (Braun, Melsungen, Deutschland) 60 Min. bei Raumtemperatur geschüttelt wurden. Anschließend wurde die Flüssigkeit in ein Reagenzglas überführt, zentrifugiert (1000 g/10 Min.), aliquotiert und bei –80 ° C gelagert.

Limulus-Amöbozyten-Lysat (LAL)-Test

Die Endotoxin-Bestimmung erfolgte mittels Chromo LAL-Test (Haemochrom Diagnostica, Essen, Germany, Kontrollstandard E. coli O113:H10). Die Endotoxin-Aktivität wurde in EU/ml angegeben. Jeweils 100 µl des aufgetauten Extrakts inkubierten 10 Min. lang bei 37 ° C in einer Mikrotiterplatte (96 Vertiefungen, Becton Dickinson, Heidelberg). Anschließend erfolgte die Zugabe von LAL-Reagenz (in pyrogenfreiem Wasser gelöst) und Kinetik wurde mit einem Mikroplattenreader (Spectra MAX 340 PC, Software Softmax 3 [Molecular Devices, Sunnyvale, USA]) bei 405 nm und 37 ° C erfasst. Zu jeder Messung gehörte eine frische Standardkurve im Bereich 0,005 bis 50 EU/ml. Die Staubproben kamen in 1 : 10 oder 1 : 100 Verdünnung zum Einsatz. Um die Messgenauigkeit zu belegen, wurde für jede Probe die Wiederfindungsrate von 5 EU/ml Endotoxin (Kontrollstandard) geprüft, die im Bereich von 50 bis 200 % liegen musste („spike-Probe”). Als Negativ-Kontrolle diente pyrogenfreies Wasser.

Vollbluttest

Der VBT ist ein Zweistufentest ([Abb. 2]).

Abb. 2 Schematischer Ablauf des Vollbluttests (VBT). Im zellfreien Überstand werden mittels ELISA lösliche Botenstoffe nachgewiesen, die Blutzellen nach Stimulation mit dem Staubextrakt freigesetzt haben.

Im ersten Schritt wird humanes Vollblut mit der zu untersuchenden Probe für 18 oder 48 Stunden inkubiert. Durch die Zellaktivierung werden Zytokine freigesetzt, die in einem zweiten Schritt nach Zentrifugation im zellfreien Überstand mittels spezifischen ELISAs nachgewiesen werden.

a) Stimulation von kryo-konserviertem Blut

Kryo-konserviertes Blut (Mischung aus fünf zufällig ausgewählten Spendern, Zwisler Laboratorium, Konstanz, Deutschland) wurde aufgetaut und sofort in Zellkulturmedium RPMI-1640 verdünnt (1,5 ml Kryo-Blut plus 6 ml RPMI, vorgewärmt auf 37 ° C). Jeweils 500 µl des verdünnten Bluts wurden mit 100 µl der Probe versetzt und 400 µl RPMI zugegeben. Anschließend inkubierte das Gemisch für 18 Std. bzw. 48 Std. bei 37 ° C und 5 % CO₂. Nach Zentrifugation (2 Min. 10000 × g) wurde der zellfreie Überstand des kryo-konservierten Bluts aliquotiert und bei –80 ° C bis zur Analyse gelagert.

Als Stimulus dienten E. coli O113:H10, Zymosan (aus Saccharomyces cerevisiae, Sigma-Aldrich; Steinheim, Deutschland, Lot.-Nr.: 1 421 649 50 209 026, suspendiert in 0,9 % NaCl) und Aspergillus versicolor (Allergon, Ängelholm, Schweden, batch: 101 507 011). Der Aspergillus-Extrakt wurde hergestellt, indem jeweils 500 mg Substanz mit 10 ml Aqua bidest gemischt (vortex) und 1 Std. geschüttelt wurde. Nachdem die Probe bei 120 ° C autoklaviert und zentrifugiert (10 Min.; 3000 g) worden war, wurde der Überstand bei –80 ° C gelagert. Vor der Verwendung im VBT wurde der Extrakt für 30 Min. auf 80 ° C erhitzt.

b) Zytokinmessung

Um die Zytokine im zellfreien Überstand zu quantifizieren, wurden IL-1β, IL-6, TNF-α, IL-8 und MCP-1 mit dem monoklonalen „Sandwich”-Enzym-ELISA gemessen (IL-1β, IL-6 und TNF-α: DuoSet^TM ELISA Development system; R&D Systems, Wiesbaden Deutschland; IL-8 und MCP-1 (monocyte-chemoattractant-protein-1): Becton Dickinson). Der Messbereich lag bei 3,9 – 250 pg/ml für IL-1β, 4,68 – 600 pg/ml für IL-6, 3 – 200 pg/ml für IL-8, 15,6 – 1000 pg/ml für TNF-α und 7,8 – 500 pg/ml für MCP-1. Alle Proben wurden in zwei bis drei Verdünnungen zur Bestimmung eingesetzt. Lag der Variationskoeffizient für eine Mehrfachbestimmung über 25 %, wurde die Messung wiederholt.

Statistische Methoden

Um die Ergebnisse zu beschreiben, wurden Median und Mittelwert verwendet. Um die Korrelation verschiedener Variablen zu charakterisieren, wurde der Korrelationskoeffizient nach Pearson berechnet. Zusätzlich wurde der Variationskoeffizient (Verhältnis von Standardabweichung zum Mittelwert) als Streuungsmaß einer Wahrscheinlichkeitsverteilung angegeben (Programm Graphpad Prism).

Ergebnisse

IL-1β-Freisetzung nach Stimulation von kryo-konserviertem Blut mit E. coli-Endotoxin

Eine 18-stündige Stimulation von kryo-konserviertem Blut mit E. coli-Endotoxin führt zu einer dosisabhängigen Freisetzung von IL-1β ([Abb. 3]).

Abb. 3 Dosisabhängige Freisetzung von IL-1β nach Stimulation mit verschiedenen E. coli-Endotoxin-Konzentrationen. Die Box-Plots (5 – 95 % Perzentil) zeigen das Ergebnis von 15 unabhängigen Tests mit kryo-konserviertem Blut.

Eine lineare Zunahme der IL-1β-Antwort findet sich mit E. coli-Endotoxin-Konzentrationen von 20 bis 150 pg/ml. Höhere Konzentrationen dieses Stimulus bewirken keine weitere Steigerung der IL-1β-Freisetzung, ein Plateaubereich stellt sich bei einer IL-1β-Freisetzung von ca. 2500 pg/ml ein.

Analyse von Staubfilterextrakten mit LAL-Test und VBT

30 Staubfilterextrakte von unterschiedlichen Arbeitsplätzen wurden sowohl mit dem LAL-Test als auch mittels VBT (IL-1β-Freisetzung aus kryo-konserviertem Blut) untersucht. Für den VBT wurden die Proben so weit verdünnt, dass die induzierte IL-1β-Freisetzung innerhalb des linearen Bereichs lag, der sich nach Stimulation mit E. coli-Endotoxin ermitteln lässt. Nach Rückrechnung mit dem Verdünnungsfaktor ergibt sich für 87 % der Proben (26 von 30) eine IL-1β-Freisetzung über 2500 pg/ml. Das entspricht der Zytokinfreisetzung, die durch 150 pg/ml Endotoxin ausgelöst wird.

Die Proben Nummer 1 und 2 sind im LAL-Test nahe der Nachweisgrenze, während die pyrogene Aktivität mit 33 bzw. 183 pg/ml IL-1β-Freisetzung eindeutig quantifizierbar ist.

Der mittlere Variationskoeffizient (CV) einer Wiederholungsmessung derselben Probe ergab im VBT 21 % (n = 22 Staubfilterextrakte) und im LAL-Test 23 % (n = 40 Staubfilterextrakte).

[Abb. 4] zeigt die Ergebnisse der 30 Staubfilterextrakte im LAL-Test und im VBT. Die Korrelation der beiden Testergebnisse beträgt r² = 0,9 (Pearson).

Abb. 4 Pyrogene Aktivität (IL-1β-Freisetzung) und Endotoxin-Aktivität (LAL-Test) von 30 Staubfilterextrakten. Die Korrelation der Testergebnisse beträgt r² = 0,9 (Pearson). Zwei Proben, die im LAL-Test an der unteren Nachweisgrenze liegen, zeigen im VBT deutliche Aktivität.

Erweiterung des VBT durch die MCP-1 Messung

Das Standardprotokoll des VBT (IL-1β-Freisetzung nach 18 Stunden) lässt sich erweitern, indem andere Zytokine und/oder andere Zeitpunkte gewählt werden [2].

Anhand der Extrakte von Zymosan und A. versicolor sollte getestet werden, ob die Freisetzung von MCP-1 nach 48 Stunden Stimulation ein geeigneter Parameter für den Nachweis von Pilzkomponenten ist. Da der verwendete A. versicolor-Extrakt keine IL-1β-Freisetzung induzierte, ist das ein Hinweis, dass die pyrogene Aktivität von Pilzen und ihren Komponenten nur über andere Parameter bestimmt werden kann.

Die optimale MCP-1-Freisetzung ist nach 48 Std. Inkubation messbar. [Abb. 5] zeigt den Vergleich der Reaktion von E. coli, Zymosan und A. versicolor hinsichtlich MCP-1-Freisetzung.

Abb. 5 MCP-1-Freisetzung von kryo-konserviertem Blut nach Stimulation mit E. coli-Endotoxin, Aspergillus versicolor-Extrakt und Zymosan. Während E. coli im Pikogrammbereich zu einer Antwort führt, werden von Aspergillus und Zymosan mg-Mengen zur Stimulation benötigt.

Nach einem linearen Anstieg der MCP-1-Freisetzung wird ein Maximum erreicht, höhere Stimulus-Konzentrationen bewirken wiederum eine lineare Abnahme (biphasischer Verlauf). Um eine MCP-1-Antwort zu messen, muss die Probe also in einem eng umschriebenen Konzentrationsbereich vorliegen: Eine Konzentration von 10 bis 100 pg/ml für E. coli-Endotoxin und 1,2 bis 250 µg/ml für Zymosan oder A. versicolor-Extrakt bewirkten eine MCP-1-Antwort. Die maximale MCP-1-Menge lag für Zymosan und A. versicolor bei 1800 pg/ml. Diese Menge des Chemokins wurde durch 50 µg/ml A. versicolor bzw.125 µg/ml Zymosan induziert. Eine vergleichbare MCP-1-Freisetzung erhält man nach Stimulation mit 20 pg/ml E. coli-Endotoxin. Die MCP-1-Freisetzung spricht also um den Faktor 1 : 1 000 000 sensitiver auf Endotoxin im Vergleich zu Pilzkomponenten an.

Diskussion

Die vorliegende Studie validiert den Einsatz des VBT zur Beschreibung von Staubextrakten. Unsere Ergebnisse zeigen, dass die Freisetzung von IL-1β und MCP-1 aus kryo-konserviertem Blut geeignete Parameter sind, um die pyrogene Aktivität von arbeitsplatzrelevanten Proben zu bestimmen.

Der Einsatz von kryo-konserviertem statt frischem Vollblut erlaubt es, unterschiedliche Staubextrakte mit der gleichen Blutcharge zu charakterisieren und damit eine vergleichende Einschätzung vorzunehmen.

Der VBT kommt unter anderem in der Diagnostik gramnegativer Infektionen zum Einsatz [17]. Im Übrigen wird er vor allem genutzt, um die Kontamination von Medikamenten mit pyrogenen Substanzen zu überprüfen [18] [19].

Zur Charakterisierung von Arbeitsplätzen liegen bisher überwiegend Ergebnisse des VBT mit frischem Blut vor. Zucker et al. [20] beschrieben die IL-1β-Freisetzung von Blut zehn nicht exponierter Spender, stimuliert mit Proben einer Entenzuchtanlage. Die Autoren fanden eine gute Korrelation zwischen LAL-Testergebnissen und IL-1β-Freisetzung (Spearman r = 0,9). Diese Ergebnisse bestätigen sich in unseren Untersuchungen. Allerdings ist zu bedenken, dass die Korrelation der beiden Tests von der Art der Probe abhängt: Gramnegative Bakterien sorgen für eine hohe Korrelation, da ihre Endotoxine sowohl im LAL-Test als auch im VBT nachgewiesen werden können. Sind die Staubextrakte dagegen reich an grampositiven Bakterien, Pilzen und anderen mikrobiologischen Komponenten mit hoher pyrogener Aktivität, werden diese im LAL-Test nicht erfasst.

Um Staubproben zu charakterisieren, ist eine mehrstufige Analyse von Proben mit unterschiedlichen Testverfahren deshalb empfehlenswert (siehe [Abb. 6]).

Abb. 6 Schematische Darstellung eines möglichen Ablaufplans zur Analyse von Staubfilterextrakten. SOP = standard operation procedure; VBT = Vollbluttest; LAL-Test = Limulus-Amöbocyten-Lysat-Test; IL-1β = Interleukin-1β; MCP-1 = monocyte chemotactic protein 1.

Wird der VBT mit frischem Blut einzelner Spender durchgeführt, lassen sich vor allem Informationen zur individuellen Suszeptibilität gegenüber Bioaerosol-bedingten Entzündungsreaktionen ableiten [21]. Smit et al. [22] konnten zeigen, dass sich eine hohe berufliche Endotoxin-Exposition auch im VBT widerspiegelt: Für die Gruppe der High Responder bestand ein signifikanter Dosis-Wirkungs-Zusammenhang zwischen beruflicher Endotoxin-Exposition und respiratorischen Symptomen. Als High Responder wurden Personen bezeichnet, deren Blut nach In-vitro-Stimulation mit LPS im Mittel mehr Zytokine freisetzte als das Blut der Vergleichsgruppe (12 Personen).

Wenn frisches humanes Blut eingesetzt wird, ist die gemessene pyrogene Aktivität ein Maß für die individuelle biologische Reaktion auf einen gegebenen Stimulus (Beanspruchungsparameter). Genetische und umweltbedingte Faktoren spielen dabei ebenso eine Rolle wie intraindividuelle Veränderungen, z. B. in Abhängigkeit vom zirkadianen Rhythmus [23].

Setzt man dagegen kryo-konserviertes humanes Blut ein, erlaubt die gemessene pyrogene Aktivität eine Aussage über den Stimulus, also z. B. die Staubprobe (Belastungsparameter). Zusätzlich umgeht man mit kryo-konserviertem Blut das Problem, das Frischblut nur in begrenzter Menge zur Verfügung steht. Das Kryo-Blut stellt eine Mischung des Blutes verschiedener Spender dar [24] [25].

Die IL-1β-Messung wird beim Einsatz des VBT bevorzugt eingesetzt [12] [18] [19] [20]. Die Messung weiterer Parameter, wie z. B. MCP-1, kann je nach Fragestellung integriert werden. Damit bietet der VBT flexible Möglichkeiten, neben Einzelsubstanzen auch arbeitsplatzbezogene Staubproben zu untersuchen. In unseren Untersuchungen zeigte die MCP-1-Freisetzung die geringste Korrelation zu den LAL-Test-Ergebnissen im Vergleich zu den anderen Zytokinen (IL-1β, IL-6, IL-8, TNF-α) [2]. Das könnte ein Hinweis darauf sein, dass in diesem Testverfahren Nicht-Endotoxin-Komponenten, wie z. B. Pilzbestandteile, die MCP-1-Freisetzung induzieren. MCP-1 (monocyte chemoattractant protein) ist ein CC-Chemokin, das vor allem auf Monozyten wirkt und außerdem als Regulator in verschiedenen entzündlichen Krankheiten beim Menschen eine Rolle spielt. Dass Pilzsporen eine MCP-1-Freisetzung induzieren können, wurde z. B. für die Sporen von Aspergillus fumigatus mit Zelllinien von Mäusen nachgewiesen [26]. Unsere Daten zeigen, dass Zymosan und A. versicolor-Extrakt eine MCP-1-Antwort im VBT auslösen können. Da der A. versicolor-Extrakt keine IL-1β-Freisetzung induzierte, stellt die MCP-1-Messung eine Möglichkeit dar, um immunologisch aktive Komponenten nachzuweisen, die eine andere Signalkaskade anstoßen. Denkbar ist z. B., dass Pilzkomponenten, die via TLR-2 und Dectin-1 erkannt werden, eine andere Zytokinkaskade auslösen als Bakterienbestandteile, die im Wesentlichen mit TLR-2 und TLR-4 reagieren.

A. versicolor gehört neben Penicillium chrysogenum und Stachybotrys chartarum zu den häufigsten Arten, die in Innenräumen mit Feuchteschäden gefunden werden [27] [28]. Aspergillus-Spezies sind generell die häufigsten Pilze, mit denen Menschen konfrontiert sind und die in organischen Stäuben vorkommen. Sie können eine Vielzahl von Krankheiten auslösen, obwohl keinesfalls jede Exposition gegenüber diesen Pilzen zu Beschwerden führt [29].

Insgesamt zeigen unsere Ergebnisse, dass der VBT ein sinnvolles Verfahren ist, um die proinflammatorische Antwort von Staubfilterproben und ihrer Einzelkomponenten zu beschreiben. Kryo-konserviertes Blut ist geeignet, um Proben hinsichtlich ihrer pyrogenen Aktivität zu quantifizieren. Im Gegensatz zu Frischblut ermöglicht es, Belastungen an verschiedenen Arbeitsplätzen, unabhängig von der individuellen Beanspruchung exponierter Personen, zu beschreiben.

Interessenkonflikt

Die Autoren geben an, dass kein Interessenkonflikt besteht.

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