Vulvovaginalkandidose (ausgenommen mukokutane Kandidose): Leitlinie der DGGG, OEGGG und SGGG (S2k-Level, AWMF-Registernummer 015/072, September 2020)

Zusammenfassung

Ziel Das Ziel dieser offiziellen Leitlinie, die von der DGGG, OEGGG und SGGG unter Beteiligung der DMykG, DDG und AGII publiziert und koordiniert wurde, ist es, durch die Evaluation der relevanten Literatur einen konsensbasierten Überblick über die Diagnostik und das Management der Vulvovaginalkandidose zu geben.

Methoden Diese S2k-Leitlinie wurde durch einen strukturierten Konsens von repräsentativen Mitgliedern verschiedener Professionen im Auftrag der Leitlinienkommission der genannten Gesellschaften entwickelt.

Empfehlungen Diese Leitlinie gibt Empfehlungen zu Diagnostik, Management, Beratung, Prophylaxe und Screening der Vulvovaginalkandidose.

Schlüsselwörter

Candida albicans - Leitlinie - Pruritus - vulvovaginale Kandidose

I  Leitlinieninformationen

Leitlinienprogramm der DGGG, OEGGG und SGGG

Informationen hierzu finden Sie am Ende der Leitlinie.

Zitierweise

Vulvovaginal Candidosis (Excluding Mucocutaneous Candidosis): Guideline of the German (DGGG), Austrian (OEGGG) and Swiss (SGGG) Society of Gynecology and Obstetrics (S2k-Level, AWMF Registry Number 015/072, September 2020). Geburtsh Frauenheilk 2021; 81: 398 – 421

Leitliniendokumente

Die vollständige Langfassung und eine DIA-Version dieser Leitlinien sowie eine Aufstellung der Interessenkonflikte aller Autoren befinden sich auf der Homepage der AWMF: http://www.awmf.org/leitlinien/detail/ll/015-072.html

Leitliniengruppe

Siehe [Tab. 1] und [2].

Tab. 1 Federführender und/oder koordinierender Leitlinienautor.

Autor	AWMF-Fachgesellschaft
Priv.-Doz. DDr. Alex Farr	Österreichische Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe (OEGGG), Deutsche Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe (DGGG)

Tab. 2 Beteiligte Leitlinienautoren/innen.

Autor/in Mandatsträger/in	DGGG-Arbeitsgemeinschaft (AG)/AWMF/Nicht-AWMF-Fachgesellschaft/ Organisation/Verein
Prof. Dr. Isaak Effendy	DDG
Priv.-Doz. DDr. Alex Farr	OEGGG/DGGG
Dr. med. Brigitte Frey Tirri	SGGG
Prof. Dr. Herbert Hof	DMykG
Prof. Dr. Peter Mayser	DDG
Prof. Dr. Werner Mendling	DGGG
Prof. Dr. Ljubomir Petricevic	OEGGG
Prof. Dr. Markus Ruhnke	DMykG
Prof. Dr. Martin Schaller	DDG
Priv.-Doz. DDr. Axel Schäfer	AGII
Prof. Dr. Birgit Willinger	DMykG

Verwendete Abkürzungen

Ak: Antikörper

BMI: Body-Mass-Index

C : Candida

CDC: Centers for Disease Control and Prevention

CF: zystische Fibrose

ECHA: European Chemicals Agency

GBS: Gruppe-B-Streptokokken

GDM: Gestationsdiabetes mellitus

IUS: intrauterine Spirale

KOH: Kaliumhydroxid

Lcr35: Lactobacillus casei rhamnosus 35

LNG: Levonorgestrel

MHK: minimale Hemmkonzentration

MPA: Medroxyprogesteronacetat

OTC: Over-the-Counter

PCR: Polymerase-Kettenreaktion

PVP-I: Jodpovidon

RVVC: rezidivierende Vulvovaginalkandidose

VVC: Vulvovaginalcandidose/-kandidose
 

II  Leitlinienverwendung

Fragestellung und Ziele

Ziel ist die optimale Betreuung von Patientinnen mit Vulvovaginalkandidose im ambulanten, teilstationären und stationären Versorgungssektor. Ebenso stellt die Prävention und Früherkennung der Vulvovaginalkandidose ein Ziel dieser Leitlinie dar. Bei entsprechender Symptomatik wird eine zielgerichtete Diagnostik und Therapie angestrebt. Hierdurch sollen unnötige Therapie und dadurch etwaig entstehende Resistenzen vermieden werden.

Versorgungsbereich

• ambulanter Versorgungssektor

• teilstationärer Versorgungssektor

• stationärer Versorgungssektor

• spezialisierte Versorgung

Anwenderzielgruppe/Adressaten

• Gynäkologinnen/Gynäkologen mit Klinikanstellung

• Gynäkologinnen/Gynäkologen in der Niederlassung

• Dermatologinnen/Dermatologen mit Klinikanstellung

• Dermatologinnen/Dermatologen in der Niederlassung

• Mikrobiologinnen/Mikrobiologen mit Klinikanstellung

• Mikrobiologinnen/Mikrobiologen in der Niederlassung

Des Weiteren

• HausärztInnen/Hausärzte

• Hebammen mit Klinikanstellung

• Hebammen in der Niederlassung

• Pflegekräfte

• biomedizinische AnalytikerInnen

• medizinisch-wissenschaftliche Fachgesellschaften und Berufsverbände

• gesundheitspolitische Einrichtungen und Entscheidungsträger auf Bundes- und Landesebene

• Kostenträger

Verabschiedung und Gültigkeitsdauer

Die Gültigkeit dieser Leitlinie wurde durch die Vorstände/Verantwortlichen der beteiligten Fachgesellschaften/Arbeitsgemeinschaften/Organisationen/Vereine sowie durch den Vorstand der DGGG und der DGGG-Leitlinienkommission sowie der SGGG und OEGGG im September 2020 bestätigt und damit in seinem gesamten Inhalt genehmigt. Diese Leitlinie besitzt eine Gültigkeitsdauer von 01.09.2020 bis 31.08.2025. Diese Dauer ist aufgrund der inhaltlichen Zusammenhänge geschätzt.

III  Methodik

Grundlagen

Die Methodik zur Erstellung dieser Leitlinie wird durch die Vergabe der Stufenklassifikation vorgegeben. Das AWMF-Regelwerk (Version 1.0) gibt entsprechende Regelungen vor. Es wird zwischen der niedrigsten Stufe (S1), der mittleren Stufe (S2) und der höchsten Stufe (S3) unterschieden. Die niedrigste Klasse definiert sich durch eine Zusammenstellung von Handlungsempfehlungen, erstellt durch eine nicht repräsentative Expertengruppe. Im Jahr 2004 wurde die Stufe S2 in die systematische evidenzrecherchebasierte (S2e) oder strukturelle konsensbasierte Unterstufe (S2k) gegliedert. In der höchsten Stufe S3 vereinigen sich beide Verfahren.

Diese Leitlinie entspricht der Stufe S2k.

Empfehlungsgraduierung

Die Evidenzgraduierung nach systematischer Recherche, Selektion, Bewertung und Synthese der Evidenzgrundlage und eine daraus resultierende Empfehlungsgraduierung einer Leitlinie auf S2k-Niveau ist nicht vorgesehen. Es werden die einzelnen Statements und Empfehlungen nur sprachlich – nicht symbolisch – unterschieden ([Tab. 3]).

Tab. 3 Graduierung von Empfehlungen.

Beschreibung der Verbindlichkeit	Ausdruck
starke Empfehlung mit hoher Verbindlichkeit	soll/soll nicht
einfache Empfehlung mit mittlerer Verbindlichkeit	sollte/sollte nicht
offene Empfehlung mit geringer Verbindlichkeit	kann/kann nicht

Statements

Sollten fachliche Aussagen nicht als Handlungsempfehlungen, sondern als einfache Darlegung Bestandteil dieser Leitlinie sein, werden diese als „Statements“ bezeichnet. Bei diesen Statements ist die Angabe von Evidenzgraden nicht möglich.

Konsensusfindung und Konsensusstärke

Im Rahmen einer strukturierten Konsenskonferenz nach dem NIH Typ (S2k/S3-Niveau) stimmen die berechtigten Teilnehmer der Sitzung die ausformulierten Statements und Empfehlungen ab. Der Ablauf war wie folgt: Vorstellung der Empfehlung, inhaltliche Nachfragen, Vorbringen von Änderungsvorschlägen, Abstimmung aller Änderungsvorschläge. Bei Nichterreichen eines Konsensus (> 75% der Stimmen), Diskussion und erneute Abstimmung. Abschließend wird abhängig von der Anzahl der Teilnehmer die Stärke des Konsensus ermittelt ([Tab. 4]).

Tab. 4 Einteilung zur Zustimmung der Konsensusbildung.

Symbolik	Konsensusstärke	prozentuale Übereinstimmung
+++	starker Konsens	Zustimmung von > 95% der Teilnehmer
++	Konsens	Zustimmung von > 75 – 95% der Teilnehmer
+	mehrheitliche Zustimmung	Zustimmung von > 50 – 75% der Teilnehmer
–	kein Konsens	Zustimmung von < 51% der Teilnehmer

Expertenkonsens

Wie der Name bereits ausdrückt, sind hier Konsensusentscheidungen speziell für Empfehlungen/Statements ohne vorige systemische Literaturrecherche (S2k) oder aufgrund von fehlenden Evidenzen (S2e/S3) gemeint. Der zu benutzende Expertenkonsens (EK) ist gleichbedeutend mit den Begrifflichkeiten aus anderen Leitlinien wie „Good Clinical Practice“ (GCP) oder „klinischer Konsensuspunkt“ (KKP). Die Empfehlungsstärke graduiert sich gleichermaßen wie bereits im Kapitel Empfehlungsgraduierung beschrieben ohne die Benutzung der aufgezeigten Symbolik, sondern rein semantisch („soll“/„soll nicht“ bzw. „sollte“/„sollte nicht“ oder „kann“/„kann nicht“).

IV  Leitlinie

1  Definition

Die VVC ist eine Infektion der primär östrogenisierten Vagina und des Vestibulums, die sich auf die Außenseite der kleinen Labien, der großen Labien, sowie auf die Interkrural- und Perianalregion ausdehnen kann. Eine Kandidose der Zervix oder des Endometriums ist nicht bekannt. Eine konnatale, fetale Kandidose und eine Candida-Amnionitis sind sehr selten, aber möglich. Die Bezeichnung „Kandidose“ oder „Candida-albicans-Vulvovaginitis“ werden bevorzugt [1]. Die Endung „-iasis“ sollte parasitären Infektionen vorbehalten bleiben (z. B. Trichomoniasis) [2], wird aber wegen der weiten Verbreitung im angloamerikanischen Schrifttum häufig benutzt.

2  Mikrobiologie

Candida albicans bildet in vitro Blastosporen, Keimschläuche, Pseudomyzelien, echte Myzelien und auf Spezialnährböden auch Chlamydosporen. Candida glabrata bildet ausschließlich Blastosporen. Die Pseudohyphenbildung (außer von C. glabrata und einigen anderen Candida-Arten, die in Form von Blastosporen vorkommen) ist Hinweis für eine Infektion [3], [4]. Bei prämenopausalen, schwangeren, asymptomatischen und gesunden Frauen, sowie bei Frauen mit akuter VVC, ist in 85 – 95% C. albicans die ursächliche Spezies. Diese Spezies (spp.) ist C. africana sehr ähnlich, die aber nur mit speziellen diagnostischen Verfahren identifiziert werden kann [5], [6]. Exakte epidemiologische Daten fehlen hierzu. Es existieren zwar regionale Unterschiede in der Verteilung der Candida-Spezies, wiewohl Arbeiten aus dem deutschsprachigen [7], [8] und englischsprachigen Raum [9] vergleichbare Zahlen berichten. In einer retrospektiven PCR-gestützten Analyse von 93 775 zervikovaginalen Abstrichen aus 4 Jahren, die zur Abklärung von VVC entnommen worden waren, waren C. albicans mit 89%, C. glabrata mit 7,9% und andere Candida-Arten mit jeweils unter 2% Häufigkeit vertreten [10]. Non-albicans-Arten, besonders C. glabrata, werden häufiger bei postmenopausalen, diabetischen und immunsupprimierten Frauen vorgefunden [8], [11], [12], [13], [14], [15], [16]. C. krusei, C. guilliermondii, C. tropicalis, C. parapsilosis und andere Spezies können in Einzelfällen eine Vulvovaginitis mit typischen Symptomen verursachen [4], [8], [17], [18], [19]. Saccharomyces cerevisiae ist grundsätzlich apathogen und verursacht daher keine Beschwerden [20], [21], auch wenn dieser im Sinne eines Kommensalismus in 1 – 2% der vaginalen Kulturen identifiziert werden kann [8], [15].

3  Virulenzfaktoren

Die Pathogenese der VVC hängt nicht nur von der Virulenz des Erregers, sondern auch von der individuellen Prädisposition und Infektabwehr ab. Eigentlich sind Hefepilze typische Opportunisten, die bei einer Schwäche der lokalen bzw. systemischen Infektabwehr eine Infektion hervorrufen. Noch nicht ganz klar ist, warum aus einer einfachen Kolonisation mit Candida bei einer gesunden Person eine akute, hochentzündliche Affektion entsteht.

Die Unwissenheit über den Schritt von der Kolonisation zur Vaginitis belegt die Bedeutung von Wirtsfaktoren [22]. Nach Kolonisation kommt es zunächst zur Adhärenz am Vaginalepithel, und darauffolgend mittels Virulenzfaktoren zur Invasion, Infektion und Inflammation. Bei der Bildung von Pseudohyphen werden Pilzbestandteile gebildet, die eine heftige Chemotaxis von Granulozyten stimulieren, die daraufhin die Entzündung verursachen [23].

Die Adhärenz der Candida-Zelle [24] an der Vaginalwand wird durch Mannoproteine ermöglicht [25], [26]. Die Fähigkeit zur (Pseudo-)Hyphenbildung und die Sekretion von hydrolytischen Proteinen sind relevante Virulenzfaktoren [27], [28], [29], die mit der Pathogenität korrelieren [30], [31]. Weiters spielen Siderophoren, die pH-Toleranz [32], sowie die Anwesenheit von Enzymen, die Candida albicans das Überleben in Makrophagen ermöglichen [33], zu wichtigen Mechanismen in der Entstehung der Infektion.

Bei der akuten Infektion scheint es zu einer Aktivierung von Inflammasom-Rezeptoren der vaginalen Epithelzellen durch die Bildung von Virulenz- und Immun-Entzündungsfaktoren zu kommen. Pilzbestandteile, wie Glucan, Mannan und Chitin, binden an spezifische Rezeptoren von Makrophagen und stimulieren diverse Zytokine [34]. Eine der Voraussetzungen für die Invasion von Candida ist der Übergang von der Hefeform in die Hyphenform, was durch die Anwesenheit von Östrogenen begünstigt wird, da Pilze zytoplasmaständige Östrogenrezeptoren enthalten [35].

4  Genitale Kolonisation

Entsprechend der Östrogenisierung der Vagina sind Mädchen vor der Menarche und Frauen nach der Menopause (ohne Hormonersatztherapie) weniger häufig vaginal kolonisiert und praktisch niemals von einer VVC betroffen [36]. Insgesamt gibt es keinen eindeutigen Hinweis für einen Anstieg der Häufigkeit von Candidosen in der Gynäkologie, weder bei akuten, noch bei chronisch rezidivierenden Ereignissen. Schwangere Frauen sind in etwa 30% der Fälle im 3. Trimenon betroffen, sofern die Diagnostik kulturelle Nachweismethoden umfasst [8], [16].

Mittels PCR-Methoden steigt der Nachweis einer vaginalen Kolonisation erheblich an [37]. Die vaginale Kolonisation kann jedoch individuell von Zeit zu Zeit wechseln. Zu beachten ist etwa, dass ein positiver Befund auf C. glabrata meist nur eine Kolonisation darstellt. Als Risikofaktor für die bei etwa 70% aller junger gesunder Frauen auftretenden Kolonisation mit Candida spp. wurden kürzlich zurückliegender sexueller Verkehr, die Injektion vom Ovulationshemmer Medroxyprogesteronacetat (MPA) und die Kolonisation mit Laktobazillen und Streptokokken der Gruppe B (GBS) identifiziert [38].

Das Sperma des Partners kann mit dem identischen Candida-Stamm wie der in der Vagina kolonisiert sein [39], obwohl der Partner symptomfrei ist. Die Candida-Balanitis ist behandlungsbedürftig, jedoch kann eine vorübergehende Rötung der Eichel nach Verkehr mit einer Candida-kolonisierten Frau auch reaktiv sein. Es ist nicht klar, ob die Kolonisation des Genitaltraktes des Partners oder die des Orointestinaltraktes beider Partner als Quelle für chronisch rezidivierende Candida-Vaginitiden eine Rolle spielt [4], [40].

5  Prädisponierende Wirtsfaktoren

5.1  Diabetes mellitus

Patientinnen mit Diabetes mellitus leiden häufiger unter einer VVC, wobei die Therapie meistens dann versagt, wenn sich die Serumglukosespiegel nicht im Normalbereich befinden [11], [41]. Eine erhöhte Glykämie im Vaginalgewebe erhöht die Pilzadhäsion, das Pilzwachstum und prädisponiert Vaginalepithelzellen für die Bindung von Hefen. Zusätzlich kann eine Glykämie von 10 – 11 mmol/l den Abwehrmechanismus des Wirts beeinträchtigen. Eine Hyperglykämie senkt die Migration der Neutrophilen und schwächt ihre chemotaktischen und phagozytischen Kräfte, wodurch die Empfindlichkeit gegenüber einer VVC erhöht wird [42], [43]. Die antidiabetisch wirksamen SGLT2-Hemmer, welche die Glykosurie erhöhen, erhöhen auch die Episoden einer VVC [44] – [46]. Bei wiederholt auftretenden Episoden einer VVC bei Diabetikerinnen ist jedenfalls auch die Kontrolle und Einstellung der antidiabetischen Medikation angebracht [47].

5.2  Antibiotika

Frauen, die bereits vaginal mit Candida kolonisiert sind, haben ein bis 33% höheres Risiko, nach einer antibiotischen Behandlung eine VVC zu entwickeln [48], [49], [50], [51]. Die am häufigsten verschriebene, wirksamste VVC-Prophylaxe stellt die Einnahme von 150 mg Fluconazol zusammen mit der Einnahme der Antibiotika dar, wobei diese zu Beginn und am Ende bzw. einmal wöchentlich verabreicht werden kann. Eine andere Möglichkeit besteht in der gleichzeitigen Einnahme von oralen oder vaginalen Probiotika [52].

5.3  Vaginale Mikrobiota

Es wurden niedrigere Zahlen von Laktobazillen bei Frauen mit VVC, gegenüber jenen ohne VVC, gefunden [53]. Es besteht eine antagonistische Wirkung einiger Laktobazillen gegen Candida [54], [55]. Diese antagonistische Wirkung betrifft spezielle Stämme, wie z. B. Lactobacillus rhamnosus [56], [57], [58], [59], [60]. Dieser Schutz durch Laktobazillen beruht hauptsächlich auf deren Fähigkeit, an Vaginalepithelzellen zu haften und das Wachstum von Krankheitserregern zu hemmen [61].

5.4  Hormonelle Faktoren

Das im Vaginalepithel unter Östrogeneinwirkung gespeicherte Glykogen dient Pilzen als Nährsubstrat [62]. Weiters sind Östrogene für die Bildung von Hemmstoffen durch die Epithelzellen verantwortlich, welche die antimykotische Funktion der Granulozyten behindern und somit eine Leukozytenanergie bewirken [23], [47], [63]. Aufgrund des Östrogenspiegels und dem hohen Glykogengehalt werden am häufigsten mitzyklisch bzw. in der lutealen Phase des Menstruationszyklus Symptome der VVC angegeben, während es zu einem raschen Rückgang der Symptome während der Menstruation kommt [62]. Postmenopausale Frauen sind signifikant häufiger von einer VVC betroffen, wenn sie eine Hormonersatztherapie erhalten [64].

5.5  Kontrazeptiva

Es scheint zu einer Zunahme von VVC unter Einnahme oraler Kontrazeptiva zu kommen, wobei dies von der Dosierung des Östrogenanteils abhängig zu sein scheint [65]. Gestagene alleine scheinen einen protektiven Effekt gegen VVC zu haben [47], [66]. Bezüglich der Anwendung von Hormonspiralen empfehlen Donders et al. [43] „Levonorgestrel releasing intrauterine systems“ (LNG-IUS) bei Frauen mit chronischer RVVC oder einem erhöhten Risiko für VVC zu meiden.

5.6  Genetische Faktoren

Für Rückfälle der VVC können auch genetische Faktoren verantwortlich sein, wie etwa Genpolymorphismen des mannosebindenden Lektins [67], [68] und ein Non-Sekretor-Phänotyp der AB0-Lewis-Blutgruppe [69]. Da Infektion gleich Kolonisation plus Disposition ist, leiden immunsupprimierte Menschen häufiger an VVC [70]. Ak-produzierende B-Zellen bei VVC werden als protektiv angesehen [71], [72], [73], [74], [75]. Frauen mit atopischer Diathese und Typ-I-Allergien entwickeln häufiger eine VVC als Gesunde [76].

5.7  Lebensstilfaktoren

Sexuelles Verhalten kann zu Rückfällen von VVC führen [48], [77], [78]. Psychosozialer Stress kann vermutlich über Immunsuppression eine chronische RVVC auslösen [79], [80]. Die Kandidose übt einen negativen Einfluss auf das Arbeits- und Sozialleben der Patientin aus. Ernährung wird von einigen FachexpertInnen als relevant für die Entstehung einer VVC angesehen [81], [82].

6  Klinische Symptomatik

Prämenopausale Frauen leiden meist unter einer vaginalen Kandidose, die sich auf das Vestibulum und die Vulva ausdehnen kann, während postmenopausale Frauen primär in der Leisten-/Inguinalregion sowie der Vulva betroffen sind. Es gibt keine Candida-Zervizitis. Bei prämenopausalen Frauen treten die Symptome typischerweise prämenstruell auf, da die von Östrogenen induzierte Zellproliferation und von Progesteron induzierte Zytolyse Glykogen freisetzt, das von Laktobazillen verstoffwechselt werden kann, sodass der Glukosespiegel im Gewebe erhöht ist [83].

Aus klinischer und therapeutischer Sicht ist eine Einteilung in komplizierte und unkomplizierte Fälle zu empfehlen [4]. In etwa 90% ist Juckreiz das wichtigste, jedoch nicht verlässliche Symptom, da nur 35 – 40% jener Frauen, die Juckreiz beklagen, tatsächlich eine VVC haben [8], [37], [84]. Vaginaler Fluor kann unterschiedlich sein. Von der Konsistenz ist dieser oft dünnflüssig zu Beginn einer VVC, meist weißlich flockig, und bei chronischer RVVC kann dieser auch gänzlich fehlen [42], [85]. Im Gegensatz zur bakteriellen Vaginose riecht Fluor bei VVC nicht unangenehm [42].

Neben Juckreiz in der Vulva und/oder der Vagina beklagen die meisten Patientinnen mit VVC eine vaginale Rötung, Wundheitsgefühl, Brennen, Dyspareunie und Dysurie [42]. Diese Symptome alleine erlauben es dem Kliniker allerdings oft nicht, verlässlich zwischen den Ursachen einer Vaginitis zu unterscheiden. Juckreiz und Rötung sind bei VVC nicht immer vorliegend [84]. Die kleinen Labien können ödematös sein und besonders bei RVVC kommen häufig brennende Rhagaden vor.

Neben den typischen Symptomen einer VVC durch C. albicans ist die C.-glabrata-Vaginitis selten und kommt gewöhnlich im späten prä- und perimenopausalen Lebensabschnitt vor [9], [17], [86], [87], [88]. Die C.-krusei-Vaginitis [19] und die C.-parapsilosis-Vaginitis [18] sind meist ähnlich wie jene durch C. glabrata mit nur milden klinischen Symptomen und Beschwerden verbunden. Saccharomyces cerevisiae ist als Verursacher einer Vaginitis unwahrscheinlich [20], [21], [89]. Die Kandidose der Vulva wird aus dermatologischer Sicht in eine vesikulöse, ekzematoide und follikuläre Form unterschieden. Frauen mit sekundärer Vestibulodynie berichten häufig über eine VVC vor Ausbruch der vestibulären Schmerzen.

Insgesamt führt die Symptomatik der VVC zu einer Einschränkung der Lebensqualität, die vergleichbar mit jener von Patientinnen ist, die an Asthma bronchiale oder chronisch obstruktiver Bronchitis leiden. Die VVC ist daher auch mit einer signifikant reduzierten Produktivität im Berufs- und Alltagsleben vergesellschaftet [90].

7  Diagnostik

7.1  Notwendige Diagnostik

In der Diagnostik ist das Vorhandensein von (Pseudo-)Hyphen erforderlich, um eine Candida-bedingte Vaginitis nachzuweisen und von der asymptomatischen Kolonisation zu unterscheiden. Essenziell sind Anamnese, gynäkologische Untersuchung und mikroskopische Untersuchung von vaginalem Fluor mittels Kochsalzlösung (oder alternativ 10%iger KOH-Lösung) bei zumindest 400-facher Vergrößerung (10 × Okular plus 40 × Objektiv) im Licht- oder Phasenkontrastmikroskop [20], [91]. Gegebenenfalls kann auch eine pH-Messung erfolgen. Sprosszellen (Blastosporen) oder (Pseudo-)Hyphen können in etwa 50 – 80% der Fälle der akuten VVC im Mikroskop gefunden werden [4], [92]. Es können, müssen aber nicht, vermehrt Leukozyten im Fluor gefunden werden. Falls mikroskopisch keine Blastosporen oder (Pseudo-)Hyphen gefunden werden können, ist die Keimmenge vermutlich so gering, dass die Untersuchung mit geringer Sensitivität negativ bleibt. Da die Kultur sensitiver ist und da trotz geringer Pilzlast eine Entzündung ausgelöst werden kann, sollte z. B. bei einer chronischen RVVC die kulturelle Untersuchung mit Artbestimmung durchgeführt werden. Da Resistenzen nicht mit der MHK korrelieren, ist deren Bestimmung primär nicht notwendig [83], [93], [94].

Das typische Medium zur kulturellen Diagnostik der Candida-Arten ist der Sabouraud-2%-Glucose-Agar. Weiters gibt es den CHROMagar^™ oder Mikrostix-Candida. Chromogene Medien bieten die Möglichkeit, bestimmte Candida spp. aufgrund ihrer Pigmentierung sofort zu identifizieren und erleichtern den Nachweis von Mischkulturen bei gleichzeitigem Vorkommen von mehreren Hefearten. Die Patientin leidet in diesem Fall meist an einer C.-albicans-Vaginitis, während nach einer Behandlung die häufig resistente C. glabrata in situ verbleibt. Diese ist dann meistens nur kolonisierend vorhanden und muss bei Beschwerdefreiheit nicht erneut therapiert werden. Eine In-vitro-Empfindlichkeitstestung ist allenfalls bei Nachweis von Non-albicans-Arten und chronisch-rezidivierenden Verläufen anzudenken.

Unter Anwendung eines modernen DNA-Hybridierungstests des vaginalen Fluors vom Spekulum der gynäkologischen Untersuchung kann eine Sensitivität und Spezifität bei der Detektion von Candida spp. von bis zu 96,3% erreicht werden [95]. Die Detektion mittels Whole-Genome-Sequencing besitzt die höchste Sensitivität und Spezifität in der Candida-Diagnostik [96].

7.2  Unsinnige Diagnostik

8  Therapie

8.1  Therapie der akuten Candida-Vaginitis

Die asymptomatische vaginale Kolonisation bedarf selbst bei hoher Keimzahl keiner Therapie, falls die Patientin immunkompetent ist und nicht unter einer chronischen RVVC leidet. Im Falle einer Infektion besteht selbst bei niedriger Keimzahl eine Therapiebedürftigkeit, wobei zahlreiche Therapiemöglichkeiten existieren [97]. Die folgenden Wirkstoffe kommen zum Einsatz: Azole, welche die Bildung von Lanosterol zu Ergosterol der Hefezellmembran verändern [98]; Polyene, die Komplexe mit dem Ergosterol der Sprosspilzmembran bilden und so deren Permeabilität verändern [99]; Ciclopiroxolamin, das wichtige Enzyme, die Eisen benötigen, durch Chelatbildung behindert [100]. Im Falle einer chronischen RVVC kann eine dosisreduzierende Suppressionstherapie erwogen werden, etwa mittels eines Schemas mit Fluconazol 200 mg oral an 3 Tagen pro Woche (für 1 Woche), bei Beschwerde- bzw. Pilzfreiheit wöchentlich über 2 Monate, dann alle 2 Wochen über 4 Monate, anschließend einmal monatlich über 6 Monate.

Es existieren Vaginalsuppositorien und -cremes mit Dosierungen bzw. Zubereitungen für eine Behandlungsdauer zwischen 1 und 3 Tagen, sowie zwischen 6 und 7 Tagen [101]. Alternative Therapieoptionen bei der nicht schwangeren Frau sind orale Triazole (Fluconazol, Itraconazol, Posaconazol, Voriconazol), Polyene (Nystatin) [4], [102], [103], oder Ciclopiroxolamin ([Tab. 5]) [104].

Tab. 5 Therapieoptionen bei akuter Candida-Vaginitis.

Lokaltherapie (bei Erstmanifestation)
Clotrimazol	200 mg Vaginaltabletten 1 × tgl. für 3 Tage
	500 mg Vaginaltablette einmalig
Econazol	150 mg Vaginalzäpfchen 2 × tgl. alle 12 Stunden
	150 mg Vaginalzäpfchen 1 × tgl. für 3 Tage
Fenticonazol	600 mg Vaginalkapsel 1 × tgl.	bei Bedarf wiederholen
Isoconazol	150 mg Vaginalzäpfchen 2 × tgl. alle 12 Stunden
	150 mg Vaginalzäpfchen 1 × tgl. für 3 Tage
	600 mg Vaginalzäpfchen einmalig
alternative Therapien (bei massiver Erstmanifestation)
Fluconazol	150 mg oral einmalig
	50 mg oral 1 × tgl. für 7 – 14 Tage
	100 mg oral 1 × tgl. für 14 Tage	bei immunsupprimierten Patientinnen
Itraconazol	100 mg oral 2 × 2 Kapseln tgl. postprandial
	100 mg oral 1 × 2 Kapsel tgl. für 3 Tage
Nystatin	100 000 I. E. Vaginaltablette für 14 Tage
	200 000 I. E. Vaginaltablette für 6 Tage
Ciclopiroxolamin	50 mg (1 Applikatorfüllung) 1 × tgl. für 6 – 14 Tage	evtl. Bezug über internationale Apotheke

8.2  Nebenwirkungen

Alle gängigen vaginalen und topischen Antimykotika werden gut vertragen. Azole und Ciclopiroxolamin können in 1 – 10% der Fälle leichtes lokales Brennen verursachen [7], [103]. Lokale Irritationen führen leider zu einer reduzierten Compliance der Patientin und können als Resistenz gegen die Therapie fehlinterpretiert werden [105]. Allergische Reaktionen sind möglich, aber selten. Das hydrophile Fluconazol und das lipophile Itraconazol verursachen bei den üblichen Dosierungen selten Nebenwirkungen. Bei der systemischen Therapie verursacht Itraconazol jedoch deutlich mehr Nebenwirkungen als Fluconazol (z. B. anaphylaktoide Reaktionen, Kopfschmerzen, u. a.). Bei einer systemischen Azol-Therapie sollten jedoch auch Wechselwirkungen mit weiteren Therapeutika beachtet werden, insbesondere wenn diese über Cytochrom P450 3A4 verstoffwechselt werden. Bei der lokalen Anwendung von Azol-Antimykotika ist die Patientin darüber aufzuklären, dass die Funktionsfähigkeit und Zuverlässigkeit von Gummidiaphragmen sowie Latex-Kondomen beeinträchtigt sein kann.

8.3  Resistenzbildung

8.4  Therapie der Non-albicans-Vaginitis

Wiewohl der Nachweis von Candida glabrata häufig nur auf eine Kolonisation hindeutet, versagt bei tatsächlichen Candida-glabrata-Vaginitiden für gewöhnlich die übliche vaginale oder orale Behandlung. Im Falle einer Candida-glabrata-Vaginitis kann die lokale Gabe von Nystatin oder Ciclopiroxolamin erwogen werden.

Die Candida-krusei-Vaginitis ist gegen Fluconazol und Itraconazol, aber teilweise auch gegen Posaconazol und einige Imidazole resistent. Nach dem primären Therapieversuch mit topischem Clotrimazol 100 mg für 2 Wochen kann eine Therapie mit Ciclopiroxolamin [20] oder Nystatin [19] versucht werden. Aufgrund der Seltenheit solcher Fälle gibt es jedoch kaum Studienergebnisse.

C. dubliniensis ist zwar empfindlich auf Imidazole, entwickelt jedoch Resistenzen gegen Fluconazol, im Speziellen bei Patientinnen unter Langzeittherapie [106]. C. tropicalis und C. guilliermondii sollten, wie eine konventionelle C.-albicans-Vaginitis behandelt werden. C. kefyr ist apathogen und daher als Verursacher einer Vaginitis unwahrscheinlich.

8.5  Therapie der chronisch rezidivierenden Candida-Vaginitis

Während die Therapie einer akuten VVC 1 – 7 Tage dauert und aus einem kurzfristig verabreichten typischen Wirkstoff oder einer Einzeldosis besteht und damit Heilungsraten von über 80% erreicht werden können, kann dies bei der chronischen RVVC nicht berichtet werden. Da Infektion gleich Kolonisation plus Disposition ist und eine Therapie gegen die Disposition bisher nicht erprobt ist, werden lokale oder orale Erhaltungstherapien (Suppressionstherapien) bei chronischer RVVC empfohlen, um Rückfälle zu vermeiden [107], [108], [109], [110], [111].

Die Ergebnisse von Therapien mit Clotrimazol 500 mg lokal, Ketoconazol 100 mg oral und Fluconazol 150 mg oral sind vergleichbar, wobei Ketoconazol nicht mehr erhältlich ist. In einer randomisierten placebokontrollierten Studie mit 387 Frauen, die 150 mg Fluconazol wöchentlich für 6 Monate erhielten, waren 42,9% der Patientinnen mit Fluconazol und 21,9% der Patientinnen mit Placebo nach 12 Monaten krankheitsfrei [110]. Ebenso scheint lokales Nystatin bei der chronischen RVVC, insbesondere bei Non-albicans- und Fluconazol-resistenten Stämmen, wirksam zu sein [102].

Donders et al. [68], [112] empfehlen im Falle einer chronischen RVVC eine Initialdosis von 200 mg Fluconazol an 3 Tagen in der 1. Woche, gefolgt von einem Erhaltungsregime ab Beschwerde- bzw. Pilzfreiheit mit einmal 200 mg Fluconazol pro Monat über 1 Jahr ([Abb. 1]). Hierbei waren knapp 90% nach 6 Monaten und 77% nach 1 Jahr krankheitsfrei [68], [112]. Frauen mit familiärer Atopie, längerer Symptomdauer und schwerer vaginaler Exkoriation haben ein erhöhtes Risiko, nicht auf eine Fluconazol-Erhaltungstherapie anzusprechen [113]. Die Fluconazol-Suppressionstherapie scheint insgesamt jedoch hochwirksam bei der Vorbeugung von VVC-Symptomen zu sein, jedoch ist sie selten kurativ [114]. Ein Rückfall tritt häufig nach Absetzen der Erhaltungstherapie wieder auf.

Fig. 1 Erhaltungstherapie mit Fluconazol bei Patientinnen mit chronischer RVVC.

Das sexuelle Verhalten scheint kein Risikofaktor für das Nichtansprechen auf eine Fluconazol-Erhaltungstherapie bei Patientinnen mit einer chronischen RVVC zu sein [115]. Asymptomatische Sexualpartner von Patientinnen, die an einer chronischen RVVC leiden, benötigen keine Behandlung, um die Rezidivrate dieser Frauen zu verbessern [115]. Im Falle von Beschwerden oder beim Nachweis von Hefepilzen am Penis oder im Sperma kann eine Fluconazol-Therapie mit einmalig 150 mg für den Partner indiziert werden. Bei jenen Frauen, die an einer chronischen RVVC leiden, sollte in Erwägung gezogen werden, ein liegendes Intrauterinpessar zu entfernen, da erst nach Entfernen des Intrauterinpessars unter laufender Therapie betroffene Frauen rezidivfrei wurden.

8.6  Therapie während der Schwangerschaft

In mehreren retrospektiven Studien [116], [117], [118], [119] sowie in einer prospektiv randomisierten Studie [120] wurde eine signifikante Reduktion von Frühgeburten nach einer vaginalen Behandlung mit Clotrimazol im Falle einer VVC im 1. Trimester der Schwangerschaft berichtet. In einer australischen Studie mit relativ kleiner Fallzahl wurde eine Tendenz zur Reduktion von Frühgeburten nach Clotrimazol im 1. Trimester berichtet [121]. Eine weitere retrospektive Arbeit berichtete über eine erhöhte Frühgeburtenrate nach rezidivierender asymptomatischer Candida-Kolonisation in der Frühschwangerschaft [122].

Fast alle der gesunden reifen Neugeborenen, die während der vaginalen Geburt von der mütterlichen Vagina mit C. albicans kolonisiert worden sind, bekommen während des 1. Lebensjahres mit einem Gipfel in der 2. – 4. Lebenswoche einen Mundsoor und/oder eine Windeldermatitis [123], [124]. Es gibt daher eine Empfehlung zur topischen Therapie für 6 – 7 Tage im Falle einer Candida-Kolonisation in den letzten Wochen der Schwangerschaft, um beim Neugeborenen während der vaginalen Geburt die Kolonisation und nachfolgende Infektionen zu verhindern.

Die Einnahme von Fluconazol in der gynäkologisch üblichen Dosis von 150 – 300 mg/Tag galt während der Schwangerschaft lange als unbedenklich, wiewohl nicht für Schwangere zugelassen. Bei geringen Dosen von ≤ 150 mg scheint auch kein embryopathisches Risiko zu bestehen [125]. Bei einer kumulativen Dosis von 150 – 6000 mg Fluconazol im 1. Trimenon wurde jedoch ein höheres Auftreten der fetalen Fallot-Tetralogie berichtet [126]. Dieselbe Arbeitsgruppe berichtete über ein erhöhtes Abortrisiko nach oraler Fluconazol-Therapie während der Frühschwangerschaft [127]. Eine alternative Therapieoption während der Schwangerschaft stellt die Anwendung von Dequaliniumchlorid dar [128], [129], [130].

8.7  Selbstmedikation

Die Selbstmedikation oder OTC-Therapie (OTC, over-the-counter) der VVC mit Clotrimazol oder Fluconazol wird mittlerweile in weit mehr als 80% der Fälle betrieben [38], [131]. Laut einer Studie litten allerdings nur ein Drittel der Frauen, die vaginale Antimykotika zur Selbsttherapie angewendet hatten, tatsächlich an einer VVC [132]. Daher sollte nur nach einer korrekt durchgeführten, ärztlich gesicherten Diagnose behandelt werden, um Resistenzbildung und Nebenwirkungen zu vermeiden.

8.8  Bedeutung der Probiotika

Aufgrund der antagonistischen Wirkung mancher Laktobazillen bei der durch Candida verursachten Vulvovaginitis werden Probiotika als natürlicher Ansatz zur Vorbeugung und Behandlung von Infektionen angesehen. Extragenitale Lokalisationen wie der Darm dienen als Reservoir für die Rekolonisation bei Frauen mit chronischer RVVC [133], weshalb etwa orale Probiotika bei Frauen mit chronischer RVVC, aber auch bei jenen mit Kontraindikationen gegen Antimykotika in Erwägung gezogen werden können [134], [135]. Probiotika könnten eine wirksame Strategie zur Vorbeugung einer VVC sein, etwa auch bei der Candida-glabrata-Vaginitis [136]. Probiotika sind auch direkt fungizid wirksam, da sie das Candida-Wachstum hemmen und die Adhäsion an Epithelzellen behindern [137].

8.9  Alternative und komplementäre Medizin

Borsäure besitzt antibakterielle, antimykotische und antivirale Aktivität sowie antiseptische und adstringierende Eigenschaften. Sie wird als topisches Pulver eingesetzt und hilft, das Wachstum von Candida spp. zu kontrollieren. Es werden Juckreiz und Entzündungen gelindert und die Heilung beschleunigt. Deren Einsatz sollte auf den „Off-label-use“ in Ausnahmefällen limitiert sein. Jodpovidon (PVP-I) besitzt keimtötende Wirkungen gegen Bakterien, Pilze und Viren, da es die Biofilmbildung hemmt. Daher bewirkt PVP-I eine meist relativ rasche Linderung der VVC-Symptome [134]. Propolis wird als eine vielversprechende Alternative in der Therapie der VVC beschrieben. Es weist antimikrobielle, entzündungshemmende, antiseptische, hepatoprotektive, antitumorale, immunmodulatorische, wundheilende, anästhetische und antioxidative Eigenschaften auf [134], [138]. Salvina officinalis ist eine weitere Therapiealternative [139], ebenso wie die Therapie mit Gestagenen [66], [140].

9  Ausblick

9.1  Immuntherapien

9.2  Zukünftige Forschung

Funding

Die Erstellung der Leitlinie wurde von der Deutschen Gesellschaft für Gynäkologie und Geburtshilfe (DGGG) finanziell gefördert.

Conflict of Interest/Interessenkonflikt

The conflicts of interest of the authors are listed in the long version of the guideline./Die Interessenkonflikte der Autoren sind in der Langfassung der Leitlinie aufgelistet.

Danksagung

Die Autoren bedanken sich bei Valentina Sustr, Monika Nothacker, Simone Bucher, Susanne Blödt, Ulrike Weber und Paul Gaß für die freundliche Unterstützung bei der Erstellung dieser Leitlinie.

• References/Literatur

• 1 Odds FC, Arai T, Disalvo AF. et al. Nomenclature of fungal diseases: a report and recommendations from a Sub-Committee of the International Society for Human and Animal Mycology (ISHAM). J Med Vet Mycol 1992; 30: 1-10
• 2 Loeffler W. Terminology of human mycoses. Nomenclature of mycotic diseases of man. List of accepted German terms translated, arranged and published, together with comments, for the International Society for Human and Animal Mycology (ISHAM). Mykosen 1983; 26: 346-384
• 3 Mendling W. Vaginose, Vaginitis, Zervizitis und Salpingitis. 2. Aufl.. Berlin, Heidelberg: Springer Verlag; 2006
• 4 Sobel JD. Vulvovaginal candidosis. Lancet 2007; 369: 1961-1971
• 5 Romeo O, Criseo G. Candida africana and its closest relatives. Mycoses 2011; 54: 475-486
• 6 Sharma C, Muralidhar S, Xu J. et al. Multilocus sequence typing of Candida africana from patients with vulvovaginal candidiasis in New Delhi, India. Mycoses 2014; 57: 544-552
• 7 Mendling W, Krauss C, Fladung B. A clinical multicenter study comparing efficacy and tolerability of topical combination therapy with clotrimazole (Canesten, two formats) with oral single dose fluconazole (Diflucan) in vulvovaginal mycoses. Mycoses 2004; 47: 136-142
• 8 Mendling W, Niemann D, Tintelnot K. Die vaginale Kolonisation durch Candidaarten unter besonderer Berücksichtigung von Candida dubliniensis. Geburtshilfe Frauenheilkd 2007; 67: 1132-1137
• 9 Hettiarachchi N, Ashbee HR, Wilson JD. Prevalence and management of non-albicans vaginal candidiasis. Sex Transm Infect 2010; 86: 99-100
• 10 Vermitsky JP, Self MJ, Chadwick SG. et al. Survey of vaginal-flora Candida species isolates from women of different age groups by use of species-specific PCR detection. J Clin Microbiol 2008; 46: 1501-1503
• 11 Goswami R, Dadhwal V, Tejaswi S. et al. Species-specific prevalence of vaginal candidiasis among patients with diabetes mellitus and its relation to their glycaemic status. J Infect 2000; 41: 162-166
• 12 Goswami D, Goswami R, Banerjee U. et al. Pattern of Candida species isolated from patients with diabetes mellitus and vulvovaginal candidiasis and their response to single dose oral fluconazole therapy. J Infect 2006; 52: 111-117
• 13 de Leon EM, Jacober SJ, Sobel JD. et al. Prevalence and risk factors for vaginal Candida colonization in women with type 1 and type 2 diabetes. BMC Infect Dis 2002; 2: 1
• 14 Corsello S, Spinillo A, Osnengo G. et al. An epidemiological survey of vulvovaginal candidiasis in Italy. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2003; 110: 66-72
• 15 Paultisch A, Weger W, Ginter-Hanselmayer G. et al. A 5-year (2000–2004) epidemiological survey of Candida and non-Candida yeast sepcies causing vulvovaginal candidiasis in Graz. Austria Mycoses 2006; 49: 471-475
• 16 Odds F. Candida and Candidosis. 2nd ed.. ed. London: Bailliere Tindall (WB Saunders); 1988
• 17 Spinillo A, Capuzzo E, Egbe TO. et al. Torulopsis glabrata Vaginitis. Obstet Gynecol 1995; 85: 993-998
• 18 Nyirjesy P, Alexander AB, Weitz MV. Vaginal Candida parapsilsosis: Pathogen or bystander?. Infect Dis Obstet Gynecol 2005; 13: 37-41
• 19 Singh S, Sobel JD, Bhargava P. et al. Vaginitis due to candida krusei: Epidemiology, Clinical aspects, and therapy. Clin Infect Dis 2002; 35: 1066-1070
• 20 Mendling W. Vaginose, Vaginitis, Zervizitis und Salpingitis. 2. Aufl.. Heidelberg: Springer; 2006
• 21 Sobel JD, Vazquez J, Lynch M. et al. Vaginitis due to Saccharomyces cerevisiae: epidemiology, clinical aspects, and therapy. Clin Infect Dis 1993; 16: 93-99
• 22 Fidel PL. Immunity in vaginal candidiasis. Curr Opin Infect Dis 2005; 18: 107-111
• 23 Yano J, Peters BM, Noverr MC. et al. Novel Mechanism behind the Immunopathogenesis of Vulvovaginal Candidiasis: “Neutrophil Anergy”. Infect Immun 2018; 86: e00684-17
• 24 Farrell SM, Hawkins DF, Ryder TA. Scanning electron microscope study of Candida albicans invasion of cultured human cervical epithelial cells. Sabouraudia 1983; 21: 251-254
• 25 Trumbore DJ, Sobel JD. Recurrent vulvovaginal candidiasis: vaginal epithelial cell susceptibility to Candida albicans adherence. Obstet Gynecol 1986; 67: 810-812
• 26 Sobel JD, Myers PG, Kaye D. et al. Adherence of Candida albicans to human vaginal and buccal epithelial cells. J Infect Dis 1981; 143: 76-82
• 27 De Bernardis F, Agatensi L, Ross IK. et al. Evidence for a role for secreted aspartate proteinase of Candida albicans in vulvovaginal candidiasis. J Infect Dis 1990; 161: 1276-1283
• 28 Naglik J, Albrecht A, Bader O. et al. Candida albicans proteinases and host/pathogen interactions. Cell Microbiol 2004; 6: 915-926
• 29 Ruchel R, Tegeler R, Trost M. A comparison of secretory proteinases from different strains of Candida albicans. Sabouraudia 1982; 20: 233-244
• 30 Ghannoum MA. Potential role of phospholipases in virulence and fungal pathogenesis. Clin Microbiol Rev 2000; 13: 122-143
• 31 Cassone A, De Bernardis F, Mondello F. et al. Evidence for a correlation between proteinase secretion and vulvovaginal candidosis. J Infect Dis 1987; 156: 777-783
• 32 Meinhof W. [Hydrochloric acid tolerance of Candida albicans]. Mykosen 1974; 17: 339-347
• 33 Lattif AA, Prasad R, Banerjee U. et al. The glyoxylate cycle enzyme activities in the pathogenic isolates of Candida albicans obtained from HIV/AIDS, diabetic and burn patients. Mycoses 2006; 49: 85-90
• 34 Cunha C, Carvalho A, Esposito A. et al. DAMP signaling in fungal infections and diseases. Front Immunol 2012; 3: 286
• 35 Zhao X, Malloy PJ, Ardies CM. et al. Oestrogen-binding protein in Candida albicans: antibody development and cellular localization by electron immunocytochemistry. Microbiology 1995; 141 (Pt 10): 2685-2692
• 36 Dennerstein G, Ellis DH. Oestrogen, glcogen and vaginal candidiasis. Obstet Gynecol 2001; 41: 326
• 37 Weissenbacher T, Witkin SS, Ledger WJ. et al. Relationship between clinical diagnosis of recurrent vulvovaginal candidiasis and detection of Candida species by culture and polymerase chain reaction. Arch Gynecol Obstet 2009; 279: 125-129
• 38 Beigi RH, Meyn LA, Moore DM. et al. Vaginal yeast colonization in nonpregnant women: a longitudinal study. Obstet Gynecol 2004; 104: 926-930
• 39 Mendling W, Gutschmidt J, Gantenberg R. Vergleich der Stammspezifität von Hefepilzen verschiedener Lokalisation bei Frauen mit Vaginalcandidosen. Mycoses 1998; 41: 23-25
• 40 Ruhnke M, Grosch-Worner I, Lischewski A. et al. Genotypic relatedness of yeast isolates from women infected with human immunodeficiency virus and their children. Mycoses 1999; 42: 385-394
• 41 Bohannon NJ. Treatment of vulvovaginal candidiasis in patients with diabetes. Diabetes Care 1998; 21: 451-456
• 42 Yano J, Sobel JD, Nyirjesy P. et al. Current patient perspectives of vulvovaginal candidiasis: incidence, symptoms, management and post-treatment outcomes. BMC Womens Health 2019; 19: 48
• 43 Donders GGG, Bellen G, Ruban K. et al. Short- and long-term influence of the levonorgestrel-releasing intrauterine system (Mirena(R)) on vaginal microbiota and Candida. J Med Microbiol 2018; 67: 308-313
• 44 Denning DW, Kneale M, Sobel JD. et al. Global burden of recurrent vulvovaginal candidiasis: a systematic review. Lancet Infect Dis 2018; 18: e339-e347
• 45 Unnikrishnan AG, Kalra S, Purandare V. et al. Genital infections with sodium glucose cotransporter-2 inhibitors: Occurrence and management in patients with type 2 diabetes mellitus. Indian J Endocrinol Metab 2018; 22: 837-842
• 46 Nyirjesy P, Sobel JD, Fung A. et al. Genital mycotic infections with canagliflozin, a sodium glucose co-transporter 2 inhibitor, in patients with type 2 diabetes mellitus: a pooled analysis of clinical studies. Curr Med Res Opin 2014; 30: 1109-1119
• 47 Willems HME, Ahmed SS, Liu J. et al. Vulvovaginal Candidiasis: A Current Understanding and Burning Questions. J Fungi (Basel) 2020; 6: 27
• 48 Eckert LO, Hawes SE, Stevens CE. et al. Vulvovaginal Candidiasis: clinical manifestations, risk factors, management algorithm. Obstet Gynecol 1998; 92: 757-765
• 49 Pirotta MV, Gunn JM, Chondros P. “Not thrush again!” Womenʼs experience of post-antibiotic vulvovaginits. Med J Aust 2003; 179: 43-46
• 50 Pirotta MV, Garland SM. Genital Candida species detected in samples from women in Melbourne, Australia, before and after treatment with antibiotics. J Clin Microbiol 2006; 44: 3213-3217
• 51 Xu J, Schwartz K, Bartoces M. et al. Effect of antibiotics on vulvovaginal candidiasis: a MetroNet study. J Am Board Fam Med 2008; 21: 261-268
• 52 Shukla A, Sobel JD. Vulvovaginitis Caused by Candida Species Following Antibiotic Exposure. Curr Infect Dis Rep 2019; 21: 44
• 53 Auger P, Joly J. Microbial flora associated with Candida albicans vulvovaginitis. Obstet Gynecol 1980; 55: 397-401
• 54 Aagaard K, Riehle K, Ma J. et al. A metagenomic approach to characterization of the vaginal microbiome signature in pregnancy. PLoS One 2012; 7: e36466
• 55 Hummelen R, Macklaim JM, Bisanz JE. et al. Vaginal microbiome and epithelial gene array in post-menopausal women with moderate to severe dryness. PLoS One 2011; 6: e26602
• 56 De Seta F, Parazzini F, De Leo R. et al. Lactobacillus plantarum P17630 for preventing Candida vaginitis recurrence: a retrospective comparative study. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2014; 182: 136-139
• 57 Mailander-Sanchez D, Wagener J, Schaller M. Potential role of probiotic bacteria in the treatment and prevention of localised candidosis. Mycoses 2012; 55: 17-26
• 58 Martinez RC, Seney SL, Summers KL. et al. Effect of Lactobacillus rhamnosus GR-1 and Lactobacillus reuteri RC-14 on the ability of Candida albicans to infect cells and induce inflammation. Microbiol Immunol 2009; 53: 487-495
• 59 Pendharkar S, Brandsborg E, Hammarstrom L. et al. Vaginal colonisation by probiotic lactobacilli and clinical outcome in women conventionally treated for bacterial vaginosis and yeast infection. BMC Infect Dis 2015; 15: 255
• 60 Ismail AM, Abbas AM, Shams AH. et al. The effect of use of vaginal Lactobacillus rhamnosus for prevention of recurrence of vulvovaginal candidiasis: a randomized controlled trial. Thai J Obstet Gynaecol 2017; 25: 62-68
• 61 Santos CMA, Pires MCV, Leao TL. et al. Selection of Lactobacillus strains as potential probiotics for vaginitis treatment. Microbiology 2016; 162: 1195-1207
• 62 Dennerstein GJ, Ellis DH. Oestrogen, glycogen and vaginal candidiasis. Aust N Z J Obstet Gynaecol 2001; 41: 326-328
• 63 Naglik JR, Gaffen SL, Hube B. Candidalysin: discovery and function in Candida albicans infections. Curr Opin Microbiol 2019; 52: 100-109
• 64 Fischer G, Bradford J. Vulvovaginal candidiasis in postmenopausal women: the role of hormone replacement therapy. J Low Genit Tract Dis 2011; 15: 263-267
• 65 van de Wijgert JHHM, Verwijs MC, Turner AN. et al. Hormonal contraception decreases bacterial vaginosis but oral contraception may increase candidiasis: implications for HIV transmission. AIDS 2013; 27: 2141-2153
• 66 Spacek J, Kestranek J, Jilek P. et al. Comparison of two long-term gestagen regimens in the management of recurrent vulvovaginal candidiasis: A pilot study. Mycoses 2017; 60: 260-265
• 67 Babula O, Lazdāne G, Kroica J. et al. Frequency of interleukin-4 (IL-4) − 589 gene polymorphism and vaginal concentrations of IL-4, nitric oxide, and mannose-binding lectin in women with recurrent vulvovaginal candidiasis. Clin Infect Dis 2005; 40: 1258-1262
• 68 Donders GG, Babula O, Bellen G. et al. Mannose-binding lectin gene polymorphism and resistance to therapy in women with recurrent vulvovaginal candidiasis. BJOG 2008; 115: 1225-1231
• 69 Chaim W, Foxman B, Sobel JD. Association of recurrent vaginal candidiasis and secretory ABO and Lewis phenotype. J Infect Dis 1997; 176: 828-830
• 70 Nyman GSA, Tang M, Inerot A. et al. Contact allergy to beeswax and propolis among patients with cheilitis or facial dermatitis. Contact Dermatitis 2019; 81: 110-116
• 71 Cassone A, Casadevall A. Recent progress in vaccines against fungal diseases. Curr Opin Microbiol 2012; 15: 427-433
• 72 Holland SM, Vinh DC. Yeast infections – Human genetics on the rise. N Engl J Med 2009; 361: 1798-1801
• 73 de Jong MA, Vriend LE, Theelen B. et al. C-type lectin Langerin is a beta-glucan receptor on human Langerhans cells that recognizes opportunistic and pathogenic fungi. Mol Immunol 2010; 47: 1216-1225
• 74 Romani L. Immunity to fungal infections. Nat Rev Immunol 2004; 4: 1-23
• 75 Vecchiarelli A, Pericolini E, Gabrielli E. et al. New approaches in the development of a vaccine for mucosal candidiasis: progress and challenges. Front Microbiol 2012; 3: 294
• 76 Neves NA, Carvalho LP, De Oliveira MA. et al. Association between atopy and recurrent vaginal candidiasis. Clin Exp Immunol 2005; 142: 167-171
• 77 Reed BD, Zazove P, Pierson CL. et al. Candida transmission and sexual behaviors as risks for a repeat episode of Candida vulvovaginits. J Womens Health (Larchmt) 2003; 12: 979-989
• 78 Rylander E, Berglund AL, Krassny C. et al. Vulvovaginal candida in a young sexually active population: prevalence and association with oro-genital sex and frequent pain at intercourse. Sex Transm Infect 2004; 80: 54-57
• 79 Ehrstrom SM, Kornfeld D, Thuresson J. et al. Signs of chronic stress in women with recurrent candida vulvovaginitis. Am J Obstet Gynecol 2005; 193: 1376-1381
• 80 Meyer H, Goettlicher S, Mendling W. Stress as a cause of chronic recurrent vulvovaginal candidosis and the effectiveness of the conventional antimycotic therapy. Mycoses 2006; 49: 202-209
• 81 Cruickshank R. Acquired Immunity: Bacterial Infections. Mod Trends Immunol 1963; 1: 107-129
• 82 Donders GG, Prenen H, Verbeke G. et al. Impaired tolerance for glucose in women with recurrent vaginal candidiasis. Am J Obstet Gynecol 2002; 187: 989-993
• 83 Eckert LO, Hawes SE, Stevens CE. et al. Vulvovaginal candidiasis: clinical manifestations, risk factors, management algorithm. Obstet Gynecol 1998; 92: 757-765
• 84 Anderson MR, Klink K, Cohrssen A. Evaluation of vaginal complaints. JAMA 2004; 291: 1368-1379
• 85 Spacek J, Jilek P, Buchta V. The serum levels of calcium, magnesium, iron and zinc in patients with recurrent vulvovaginal candidosis during attack, remission and in healthy controls. Mycoses 2005; 48: 391-395
• 86 Fidel jr. PL, Vazquez JA, Sobel JD. Candida glabrata: Review of epidemiology, pathogenesis, and clincal disease with comparison to C. albicans. Clin Microbiol Rev 1999; 12: 80-96
• 87 Sobel JD. Vulvovaginitis due to Candida glabrata. An emerging problem. Mycoses 1998; 41: 18-22
• 88 Mendling W. [Torulopsis in gynecology]. Geburtshilfe Frauenheilkd 1984; 44: 583-586
• 89 Savini V, Catavitello C, Manna A. et al. Two cases of vaginitis caused by itraconazole-resistant Saccharomyces cerevisiae and a review of recently published studies. Mycopathologia 2008; 166: 47-50
• 90 Aballéa S, Guelfucci F, Wagner J. et al. Subjective health status and health-related qualitiy of life among women with Recurrent Vulvovaginal Candidosis (RVVC) in Europe and the USA. Health Qual Life Outcomes 2013; 11: 169
• 91 Mylonas I, Bergauer F. Diagnosis of vaginal discharge by wet mount microscopy: a simple and underrated method. Obstet Gynecol Surv 2011; 66: 359-368
• 92 Müller J, Nold B, Kubitza D. et al. Quantitative Untersuchungen über die Döderlein-Flora gesunder sowie mykosekranker Probandinnen unter lokaler Isoconazol-Nitrat-Therapie. In: Seeliger HPR. Hrsg. Gyno – Travogen, Monographie Excerpta Medica. Amsterdam: Oxford Princeton; 1981: 81-93
• 93 Nyirjesy P, Seeney SM, Grody MH. et al. Chronic fungal vaginitis: the value of cultures. Am J Obstet Gynecol 1995; 173 (3 Pt 1): 820-823
• 94 Hoffstetter SE, Barr S, LeFevre C. et al. Self-reported yeast symptoms compared with clinical wet mount analysis and vaginal yeast culture in a specialty clinic setting. J Reprod Med 2008; 53: 402-406
• 95 Mulhem E, Boyanton BL, Robinson-Dunn B. et al. Performance of the Affirm VP-III using residual vaginal discharge collected from the speculum to characterize vaginitis in symptomatic women. J Low Genit Tract Dis 2014; 18: 344-346
• 96 Bradford LL, Chibucos MC, Ma B. et al. Vaginal Candida spp. genomes from women with vulvovaginal candidiasis. Pathog Dis 2017; 75: ftx061
• 97 Wilson C. Recurrent vulvovaginitis candidiasis; an overview of traditional and alternative therapies. Adv Nurse Pract 2005; 13: 24-29 quiz 30
• 98 Plempel M. [Pharmacokinetics of imidazole-antimycotics]. Mykosen 1980; 23: 16-27
• 99 Scheklakow ND, Delektorski WW, Golodova OA. [Ultrastructural changes in Candida albicans caused by polyene antibiotics (authorʼs transl)]. Mykosen 1981; 24: 140-152
• 100 Niewerth M, Kunze D, Seibold M. et al. Ciclopirox olamine treatment affects the expression pattern of Candida albicans genes encoding virulence factors, iron metabolism proteins, and drug resistance factors. Antimicrob Agents Chemother 2003; 47: 1805-1817
• 101 Ritter W. Pharmacokinetics of Azole Compounds. In: Berg D, Plempel M. eds. Sterol Biosynthesis Inhibitors. Chichester: Ellis Horwood; 1988: 397-429
• 102 Fan S, Liu X, Liang Y. Miconazole nitrate vaginal suppository 1,200 mg versus oral fluconazole 150 mg in treating severe vulvovaginal candidiasis. Gynecol Obstet Invest 2015; 80: 113-118
• 103 Mendling W. Azoles in the Therapy of vaginal Candidosis. In: Berg D, Plempel M. eds. Sterol Biosynthesis Inhibitors. Chichester: Ellis Horwood; 1988: 480-506
• 104 Wajnberg M, Wajnberg A. [A comparative double blind trial with vaginal creams of cyclopyroxolamine and miconazole in vulvovaginal candidosis (authorʼs transl)]. Mykosen 1981; 24: 721-730
• 105 das Neves J, Pinto E, Teixeira B. et al. Local treatment of vulvovaginal candidosis: general and practical considerations. Drugs 2008; 68: 1787-1802
• 106 Moran GP, Sanglard D, Donnelly SM. et al. Identification and expression of multidrug transporters responsible for fluconazole resistance in Candida dubliniensis. Antimicrob Agents Chemother 1998; 42: 1819-1830
• 107 Sobel JD. Management of recurrent vulvovaginal candidiasis with intermittent ketokonazole prophylaxis. Obstet Gynecol 1985; 65: 435-440
• 108 Davidson F, Mould RF. Recurrent genital candidosis in women and the effect of intermittent prophylactic treatment. Br J Vener Dis 1978; 54: 176-183
• 109 Roth AC, Milsom I, Forssman L. et al. Intermittent prophylactic treatment of recurrent vaginal candidiasis by postmenstrual application of a 500 mg clotrimazole vaginal tablet. Genitourin Med 1990; 66: 357-360
• 110 Sobel JD, Wiesenfeld H, Martens M. Maintenance fluconazole therapy for recurrent vulvovaginal candidiasis. N Engl J Med 2004; 35: 875-883
• 111 Sobel JD. Recurrent vulvovaginal candidiasis. Am J Obstet Gynecol 2016; 214: 15-21
• 112 Donders G, Bellen G, Byttebier G. et al. Individualized decreasing-dose maintenance fluconazole regimen for recurrent vulvovaginal candidiasis (ReCiDiF trial). Am J Obstet Gynecol 2008; 199: 613.e1-613.e9
• 113 Donders GGG, Grinceviciene S, Bellen G. et al. Is non-response to fluconazole maintenance therapy for recurrent Candida vaginitis related to sensitization to atopic reactions?. Am J Reprod Immunol 2018; 79: e12811
• 114 Ho J, Wickramasinghe DN, Nikou S-A. et al. Candidalysin Is a Potent Trigger of Alarmin and Antimicrobial Peptide Release in Epithelial Cells. Cells 2020; 9: 699
• 115 Grinceviciene S, Ruban K, Bellen G. et al. Sexual behaviour and extra-genital colonisation in women treated for recurrent Candida vulvo-vaginitis. Mycoses 2018; 61: 857-860
• 116 Czeizel AE, Tóth M, Rockenbauer M. No teratogenic effect after clotrimazole therapy during pregnancy. Epidemiology 1999; 10: 437-440
• 117 Czeizel AE, Fladung B, Vargha P. Preterm birth reduction after clotrimazole treatment during pregnancy. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol 2004; 116: 157-163
• 118 Czeizel AE, Puhó EH, Kazy Z. The use of data set of the Hungarian case-control surveillance of congenital abnormalities for evaluation of birth outcomes beyond birth defects. Cent Eur J Public Health 2007; 15: 147-153
• 119 Hay P, Czeizel AE. Asymptomatic trichomonas and candida colonization and pregnancy outcome. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol 2007; 21: 403-409
• 120 Kiss H, Petricevic L, Husslein P. Prospective randomised controlled trial of an infection screening programme to reduce the rate of preterm delivery. BMJ 2004; DOI: 10.1136/bmj.3869.519653.EB.
• 121 Roberts CL, Rickard K, Kotsiou G. et al. Treatment of asymptomatic vaginal candidiasis in pregnancy to prevent preterm birth: an open-label pilot randomized controlled trial. BMC Pregnancy Childbirth 2011; 11: 18
• 122 Farr A, Kiss H, Holzer I. et al. Effect of asymptomatic vaginal colonization with Candida albicans on pregnancy outcome. Acta Obstet Gynecol Scand 2015; 94: 989-996
• 123 Blaschke-Hellmessen R. Subpartale Übertragung von Candida und ihre Konsequenzen. Mycoses 1998; 41: 31-36
• 124 Blaschke-Hellmessen R. [Epidemiological studies of the occurrence of yeasts in children and their mothers]. Mykosen 1968; 11: 611-616
• 125 Howley MM. Using meta-analyses to improve risk estimates of specific birth defects. BJOG 2019; 126: 1553
• 126 Molgaard-Nielsen D, Pasternak B, Hviid A. Use of oral fluconazole during pregnancy and the risk of birth defects. N Engl J Med 2013; 369: 830-839
• 127 Molgaard-Nielsen D, Svanstrom H, Melbye M. et al. Association Between Use of Oral Fluconazole During Pregnancy and Risk of Spontaneous Abortion and Stillbirth. JAMA 2016; 315: 58-67
• 128 Della Casa V, Noll H, Gonser S. et al. Antimicrobial activity of dequalinium chloride against leading germs of vaginal infections. Arzneimittel-Forschung 2002; 52: 699-705
• 129 Frey Tirri B. Antimicrobial topical agents used in the vagina. Curr Probl Dermatol 2011; 40: 36-47
• 130 Mendling W, Weissenbacher ER, Gerber S. et al. Use of locally delivered dequalinium chloride in the treatment of vaginal infections: a review. Arch Gynecol Obstet 2016; 293: 469-484
• 131 Walker PP, Reynolds MT, Ashbee HR. et al. Vaginal yeasts in the era of “over the counter” antifungals. Sex Transm Infect 2000; 76: 437-438
• 132 Ferris DG, Nyirjesy P, Sobel JD. et al. Over-the-counter antifungal drug misuse associated with patient-diagnosed vulvovaginal candidiasis. Obstet Gynecol 2002; 99: 419-425
• 133 Mardh PA, Novikova N, Stukalova E. Colonisation of extragenital sites by Candida in women with recurrent vulvovaginal candidosis. BJOG 2003; 110: 934-937
• 134 Felix TC, de Brito Röder DVD, Dos Santos Pedroso R. Alternative and complementary therapies for vulvovaginal candidiasis. Folia Microbiol (Praha) 2019; 64: 133-141
• 135 Russo R, Superti F, Karadja E. et al. Randomised clinical trial in women with Recurrent Vulvovaginal Candidiasis: Efficacy of probiotics and lactoferrin as maintenance treatment. Mycoses 2019; 62: 328-335
• 136 Chew SY, Cheah YK, Seow HF. et al. Probiotic Lactobacillus rhamnosus GR-1 and Lactobacillus reuteri RC-14 exhibit strong antifungal effects against vulvovaginal candidiasis-causing Candida glabrata isolates. J Appl Microbiol 2015; 118: 1180-1190
• 137 Kosgey JC, Jia L, Fang Y. et al. Probiotics as antifungal agents: Experimental confirmation and future prospects. J Microbiol Methods 2019; 162: 28-37
• 138 Capoci IR, Bonfim-Mendonça Pde S, Arita GS. et al. Propolis Is an Efficient Fungicide and Inhibitor of Biofilm Production by Vaginal Candida albicans. Evid Based Complement Alternat Med 2015; 2015: 287693
• 139 Ahangari F, Farshbaf-Khalili A, Javadzadeh Y. et al. Comparing the effectiveness of Salvia officinalis, clotrimazole and their combination on vulvovaginal candidiasis: A randomized, controlled clinical trial. J Obstet Gynaecol Res 2019; 45: 897-907
• 140 Huang Y, Merkatz RB, Hillier SL. et al. Effects of a One Year Reusable Contraceptive Vaginal Ring on Vaginal Microflora and the Risk of Vaginal Infection: An Open-Label Prospective Evaluation. PLoS One 2015; 10: e0134460

Publication History

Received: 21 December 2020

Accepted after revision: 23 December 2020

Article published online:
14 April 2021