Aktuelle Urol 2007; 38(3): 237-242
DOI: 10.1055/s-2006-954982
Originalarbeit
© Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Mikrokalorimetrische Untersuchungen an bovinen Spermatozoen nach Percoll-Dichtegradienten-Zentrifugation - ein experimenteller Beitrag zum Einsatz in der Andrologie

A Thermodynamic Study on Bovine Spermatozoa by Microcalorimetry after Percoll Density-Gradient Centrifugation - Experimental Probe of its Utility in AndrologyC.  Fischer1 , V.  Scherfer-Brähler2 , F.  Müller-Schlösser3 , I.  Schröder-Printzen2 , W.  Weidner2
  • 1Klinik für Urologie und Kinderurologie, Klinikum Bayreuth GmbH, Bayreuth
  • 2Klinik und Poliklinik für Urologie und Kinderurologie, Universitätsklinikum Gießen und Marburg GmbH, Standort Gießen, Gießen
  • 3Zentralbesamungsstation e.G., Gießen
Further Information

Publication History

Publication Date:
22 May 2007 (online)

Zusammenfassung

Fragestellung: Mikrokalorimetrische Messungen werden bei einer Vielzahl biologischer Vorgänge zur Erfassung von exothermen oder endothermen Summationseffekten eingesetzt. Es sollte daher untersucht werden, ob die Mikrokalorimetrie prinzipiell geeignet ist, Spermiogrammparameter zu erfassen. Material und Methode: Dazu wurde das Wärmesignal von bovinem Nativ- und Kryosperma nach Percoll-Dichtegradienten-Zentrifugation in einem 4-Kanal-Mikrokalorimeter gemessen. Ermittelt werden sollten das optimale Untersuchungsvolumen, die ideale Zeit für die notwendige Vortemperierung des Mikrokalorimeters sowie die geeignete Spermienkonzentration für mikrokalorimetrische Messungen. Die Bestimmung der Spermienkonzentration erfolgte mittels automatisierter Spermaanalyse (CASA). Ergebnisse: Die Messungen ergaben einen charakteristischen Kurvenverlauf mit einem steilen Anstieg bzw. Abfall der Wärmeabgabe für Kryo- bzw. Nativsperma nach im Mittel 38,1 bzw. 39,5 Minuten in strenger Korrelation zur Spermienkonzentration bzw. zum Untersuchungsvolumen. Notwendig ist eine Äquilibrierungszeit von 15 Minuten im Mikrokalorimeter, um Artefakte bei der Messung zu vermeiden. Eine Spermienkonzentration von über 50 Mio/ml und ein Probenvolumen von 1,0 ml erwiesen sich als optimale Parameter, um das Wärmesignal verlässlich registrieren zu können. In diesen Fällen ergab sich eine signifikante Korrelation zwischen dem Wärmesignal und der Spermienkonzentration bzw. der Konzentration motiler Spermien (p < 0,05). Schlussfolgerung: Mit der Mikrokalorimetrie ist es daher möglich, den Stoffwechsel von Spermatozoen automatisiert zu untersuchen und zu quantifizieren. Inwieweit die Mikrokalorimetrie als summierendes Verfahren in der Lage ist, auch spezielle Eigenschaften der Spermien zu erfassen, muss in weiteren Versuchen geklärt werden.

Abstract

Purpose: Microcalorimetric measurements can be used for recording exothermic or endothermic summation effects of a great variety of biological processes. The aim of the present study was to examine the usefullness of the microcalorimetry method to characterise the biological activity of spermatozoa. Materials and Methods: The heat flow of bovine fresh sperm as well as cryosperm samples were measured after Percoll density-gradient centrifugation in a 4-channel microcalorimeter. Various calibration times, volumes of samples and sperm concentrations were tested and analysed. Sperm concentration was recorded by a computer-assisted, computer-aided software system method (CASA). Results: Using a calibration time of 15 minutes, the heat signal of the fresh and cryosperm samples showed a characteristic peak after 39.5 min and 38.1 min (mean), respectively, with a significant correlation to sample volume and sperm concentration (p < 0.05). For obtaining the best results, a sample volume of 1 ml and a sperm concentration of more than 50 × 106/mL was used. Conclusions: With microcalorimetric measurements the biological activity of spermatozoa could be recorded for reproducible results, thus opening the way to an automatised ejaculate analysis in the future. More investigations are necessary to correlate microcalorimetric parameters with semen function.

Literatur

  • 1 Aziz D M. Assessment of bovine sperm viability by MTT reduction assay.  Anim Reprod Sci. 2006;  92 1-8
  • 2 Cantarelli M, Gallicchio D, Massari A, La Sala G B. Methods for preparing sperm for assisted reproduction technologies: increasing fertilizing capacity.  Acta Eur Fertil. 1991;  22 (6) 321-324
  • 3 Carr D W, Acott T S. Intracellular pH regulates bovine sperm motility and protein phosphorylation.  Biol Reprod. 1989;  41 (5) 907-920
  • 4 Chen Y, Obhrai M S, Chapman J, Cuthbert J L, Williams A, Tang L. Flow cytometric comparison between swim-up and Percoll gradient techniques for the separation of frozen-thawed human spermatozoa.  Int J Fertil. 1992;  37 (5) 315-319
  • 5 Cooper A, Johnson C M. Introduction to microcalorimetry and biomolecular energetics.  Methods Mol Biol. 1994;  22 109-124
  • 6 Criddle R S, Fontana A J, Rank D R, Paige D, Hansen L D. Simultaneous measurement of metabolic heat rate, CO2 production, and O2 consumption by microcalorimetry.  Anal Biochem. 1991;  194 (2) 413-417
  • 7 Davis R O, Katz D F. Computer-aided sperm analysis (CASA): Image digitization and processing.  Biomater Artif Cells Artif Organs. 1989;  17 (1) 93-116
  • 8 Davis R O, Katz D F. Standardization and comparability of CASA instruments.  J Androl. 1992;  13 81-86
  • 9 Davis R O, Rothmann S A, Overstreet J W. Accuracy and precision of computer-aided sperm analysis in multicenter studies.  Fertil Steril. 1992;  57 (3) 648-653
  • 10 Foote R H, Gray L C, Young D C, Dunn H O. Fertility of bull semen stored up to four days at 5 °C in 20 % egg yolic extenders.  J Dairy Sci. 1960;  43 330
  • 11 Hammerstedt R H, Volonte C, Racker E. Motility, heat, and lactate production in ejaculated bovine sperm.  Arch Biochem Biophys. 1988;  266 (1) 111-123
  • 12 Hioskins D D, Acott T S, Critchlow L, Vijayaraghavan S. Studies on the role of cyclic AMP and calcium in the development of bovine sperm motility.  J Submicrosc Cytol. 1983;  15 (1) 21-27
  • 13 Ijaz A, Hunter A G. Effect of washing and capacitatin media pH on bull sperm motility, acrosome integrity, and ability to penetrate zona-free hamster oocytes.  J Dairy Sci. 1989;  72 (10) 2691-2699
  • 14 Kolossa M, Möller G, Seibert H. Objective estimation of the motility of deep frozen cattle sperm by videomicrography and computer image analysis.  Dtsch tierärztl Wschr. 1989;  96 (5) 266-269
  • 15 Kolossa M, Seibert H. A chemically ‘defined’ diluent for cryopreservation of bovine spermatozoa.  Andrologia. 1990;  22 (5) 445-454
  • 16 Krause D, Weitze K F, Waberski D. Untersuchungen zur Spermienverträglichkeit von LincospectinR im Rahmen des in der Bundesrepublik Deutschland üblichen Rindersperma-Konservierungsverfahrens unter Verwendung eines TRIS-Eidotter-Verdünners (Klinische Kurzmitteilung).  Dtsch tierärztl Wschr. 1989;  96 (19) 508-509
  • 17 Leidl W, Kato H, Hollerrieder J, Braun J. Analysis of sperm motility by computer assisted methods, with special consideration of in vitro fertilization.  Mol Reprod Dev. 1993;  36 (2) 224-228
  • 18 Müller-Schlösser F, Hinsch E, Böhm J, Schill W B, Hinsch K D. Untersuchungen an einem eidotterfreien Verdünnungsmedium für die Tiefgefrier-Konservierung von Bullensperma.  Tierärztl Prax. 1995;  23 363-366
  • 19 Parrish J J, Foote R H. Quantification of bovine sperm separation by a swim-up method. Relationship to sperm motility, integrity of acrosomes, sperm migration in polyacrylamide gel and fertility.  J Androl. 1987;  8 (4) 259-266
  • 20 Schönhärl G, Krause W. Die automatisierte Spermaanalyse.  Dt Derm. 1991;  39 (4) 432-436
  • 21 Seibert H, Kolossa M, Wassermann O. Bovine spermatozoa as an in vitro model for studies on the cytotoxicity of chemicals: effects of chlorophenols.  Cell Biol Toxicol. 1989;  5 (3) 315-330
  • 22 Slott V L, Suarez J D, Poss P M, Linder R E, Strader L F, Perreault S D. Optimization of the Hamilton-Thorn computerized sperm motility analysis system for use with rat spermatozoa in toxicological studies.  Fundam Appl Toxicol. 1993;  21 (3) 298-307
  • 23 Soderquist L, Stalhammar E M. Relationship between ATP content and motility in bovine spermatozoa with reference to the effects of the bull and the A.I. centre.  Acta Vet Scand. 1991;  32 (3) 353-359
  • 24 Soderquist L. ATP content and sperm motility of extended bovine semen under different storage conditions.  Acta Vet Scand. 1991;  32 (4) 511-518
  • 25 Tartaglione C M, Ritta M N. Prognostic value of spermatological parameters as predictors of in vitro fertility of frozen-thawef bull semen.  Theriogenology. 2004;  62 1245-1252

PD Dr. C. Fischer

Klinik für Urologie und Kinderurologie, Klinikum Bayreuth GmbH

Hohe Warte 8

95445 Bayreuth

Phone: 0921-4004500

Fax: 0921-4004509

Email: claus.fischer@chiru.med.uni-giessen.de

    >